Una especie incrustante nueva de Nymphon (Arthropoda: Pycnogonida) de la bahía de La Paz, golfo de California, México
Angel de León-Espinosa, Jesús Angel de León-González *
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Zoología de Invertebrados No Artrópodos, Av. Pedro de Alba s/n, Cd. Universitaria, 66451 San Nicolás de los Garza, Nuevo León, Mexico
*Corresponding author: jesus.deleongn@uanl.edu.mx (J.A. de León-González)
A new species of pycnogonid belonging to the genus Nymphon is described and illustrated from specimens collected at Bahía de La Paz (Gulf of California), where it is part of the dock fouling community. The new species is morphologically similar to Nymphon littus, both species can be separated based on the dentition of the oviger terminal claw, strigilis formula, the relative size of palp segments and chela ornamentation. An identification key for the species reported from the Eastern Pacific is included.
Se describe e ilustra una especie nueva de picnogónido perteneciente al género Nymphon a partir de especímenes recolectados en la bahía de La Paz (golfo de California), donde forma parte de la comunidad de incrustantes en andadores de muelles náuticos. La especie nueva es morfológicamente similar a Nymphon littus; ambas especies pueden distinguirse según la dentición de la uña terminal del ovígero, la fórmula de la strigilis, el tamaño relativo de los segmentos del palpo y la ornamentación de la quela. Se incluye una clave de identificación para las especies reportadas en el Pacífico oriental.
Palabras clave: Picnogónido; Nymphonidae; Nymphon childi; Mar de Cortés; Araña marina; Incrustantes
Introduction
Nymphon Fabricius, 1794 is the most diverse genus of the class Pycnogonida. Currently the genus includes 269 accepted species (Bamber et al., 2026) but a large number of species are poorly described, making difficult its study (Bamber, 1982; Takahashi et al., 2012). Four species of Nymphon have been recorded, so far, in Mexico (Munilla-León, 2002; de León-Espinosa et al., 2021; Ramírez-Tello et al., 2022): N. apheles Child, 1979, described from Panama City, reported also in Bahía de La Paz, Gulf of California (de León-Espinosa et al., 2021), N. floridanum Hedgpeth, 1948 described from Florida and reported in the Yucatán Channel (Stock, 1986); N. lituus Child, 1979 described from the northeastern Gulf of California, with records in the Pacific coast of Panama (Child, 1979), Ojo de Liebre Lagoon on the western coast of Baja California Peninsula (de León-Espinosa & de León-González, 2015), as well as Bahía Banderas, Nayarit (Villatoro-Ortiz & Salazar-Silva, 2022); and N. pixellae Scott, 1912 described from Vancouver, Canada and reported in the Gulf of California by Child (1979).
During a sampling effort carried out at public and private nautical marinas along the west coast of the Gulf of California, specimens of a new species of the genus Nymphon were collected inhabiting with the algae Padina caulescens Thivy, 1945, and the barnacles Tetraclita stalactifera (Lamarck, 1818) fixed to floating docks not deeper than 0.50 m. Type material was deposited in the Colección Carcinológica de la Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Nuevo León (UANL-FCB-PYCNO).
Materials and methods
Samples of Nymphon were collected from 3 marine docks located in Bahía de La Paz, Baja California Sur, Mexico (La Paz, Palmira and Cantamar) (Fig. 1). Each encrusting faunal sample was obtained by scraping an area of 400 cm² (20 × 20 cm) located immediately below the sea surface from the edges of the platform and floating docks. The scraping of encrusted fauna was done with a carpenter’s chisel or a spatula following a standard technique (Pech et al., 2023). The encrusted fauna detached from the dock were deposited in plastic bags (Ziploc®) labeled with the date, time and geographic location information for each collection site. The biological samples were later placed in a cooler with seawater obtained from the collection site to transfer to the processing site. At the processing site, specimens from each biological sample were identified and sorted in situ into large taxonomic groups.
Figure 1. Area of study showing the marine docks located [in] Bahía de La Paz, Gulf of California, Mexico: 1 = La Paz; 2 = Palmyra; 3 = Cantamar.
The pycnogonid specimens, sorted from the encrusted fauna, were fixed with a 10% formaldehyde solution in 2 mL cryovials. The pycnogonids were then washed a week later with distilled water to remove the excess formalin and salt and then preserved in 70% non-denatured ethanol.
Morphological observations were conducted using a stereomicroscope Olympus SZ, and an Olympus BX51 microscope with differential interference contrast (DIC). The figure backgrounds were cleaned and lightened as necessary, and final figures were assembled on a plate using Paint Shop Pro7. Description of the species is based on the morphology of the holotype.
Description
Class Pycnogonida Latreille, 1810 Order Pantopoda Gerstäcker, 1863 Family Nymphonidae Wilson, 1878 Genus Nymphon Fabricius, 1794 Type species: Nymphon grossipes (O. Fabricius, 1780)
Diagnosis. Trunk usually segmented and elongate. Lateral processes in general are well separated. Ocular tubercle is inserted at the posterior end of the cephalic segment. Abdomen is usually short. Proboscis variable in shape, cylindrical. Cheliphore robust, the scape formed by 1 segment, chelae complete and functional, fingers are long and have teeth of various shape and size. Palps 5-segmented, first one always short; the second one usually longest. The 10-segmented ovigers are present in both sexes, with a strigilis formed by the last 4 segments. They have denticulate spines and usually a toothed terminal claw. Propodus is heelless, main claw usually has auxiliary claws of various sizes. Cement glands, when present, are only present in males and open on the ventral side of the femur.
Remarks. Nymphon the most diverse genus within Pycnogonida, early descriptions are very brief, and type materials are unavailable, making its study very difficult. Traditionally, its species have been placed in artificial groups; however, most species have not been able to be placed in such groups for study.
Nymphon childi sp. nov. (Fig. 2)
Description. Male holotype (UANL-FCB-PYCNO-0055), trunk slender, fully segmented, neck in front of oviger bases, half the width of trunk, 4.5 times longer than its width, cylindrical, widening in the form of a calyx, with pair of conical, short anterior projections (Fig. 2A, B); lateral processes between first and second pairs separated by 2 times their own diameters, second and third pairs separated by 2.5 times their own diameters, third and fourth pairs separated by their own diameters (Fig. 2A). Ocular tubercle as high as basal width, inserted between first pair of lateral processes and bases of ovigers, cone-shaped, with 2 small papilliform projections, with 2 pigmented pairs of eyes (Fig. 2A, B).
Proboscis cylindrical, longer than wide, horizontal to body (Fig. 2A, B), with 3 smooth lips.
Chelifore scape over-reaching proboscis, chela fingers curved inwards, crossing at tips, 20-21 needle-like teeth of uniform size on each finger, slender, longer than basal part, which is inflated and rectangular, with 5 median ventral spines and 3 large dorsal setae in a row at distal end, next to articulation with movable finger (Fig. 2C).
Abdomen narrowing distally, length over 2 times greatest width, as long as lateral processes of fourth pair of legs, elevated from body at an angle of about 30° (Fig. 2B).
Palps 5-segmented, first segment very short. Second segment longest, with 1 medio-dorsal seta and a large dorso-distal 1. Third segment about 2/3 length of segment 2 with line of 3 ventral setae and latero-distal one; with medio-dorsal small seta. Fourth segment 4.5 times as long as segment 1, with ventral row of 7 setae. Fifth segment 1.1 times as long as fourth segment, with 9 long ventral setae, medio-dorsal small seta, terminal end with cluster of 4 setae (Fig. 2D).
Oviger 10-segmented, inserted in distal half of first lateral processes (Fig. 2B). First 3 segments short, first segment half size of second one, second and third segments subequal. Fourth segment with dorsal seta and ventro-distal one. Fifth segment 1.6 times longer than fourth, with ventral row of 11 setae, dorsal surface bare. Sixth segment as long as first and second segments together, with ventral row of 14 setae. Last 4 segments compose the strigilis, armed with compound ovigerous leg spines, each with the following formula: 12: 7: 5: 8. Compound spines with 3-6 pairs of lateral teeth depending upon the size of the spine. Terminal claw long, curved, with 6 teeth (Fig. 2G). First segment of strigilis with transverse row of 4 distal setae, second one with 2 dorsal isolated setae and distal row with 4 setae, in both dorsal setae longest; third segment with 3 dorsal setae and group of 4 dorso-distal setae; fourth strigilis segment with row of 8 dorsal setae (Fig. 2F, G).
Third leg (Fig. 2E), coxa 1 short, without setae. Coxa 2, 3.3 times longer than coxa 1, with 3 ventral setae. Coxa 3 slightly longer than coxa 1, with row of 6 small ventral setae. Femur long, with 10 scattered ventral setae. Tibia 1 with row of 6 long median-dorsal chaetae and distal spine, ventral row of 10 smaller setae. Tibia 2, 1.3 longer than tibia 1, with row of 17 dorsal setae and 3 median and distal spines, 24 small ventral setae and 1 distal spine. Tarsus with dorsal row of 4 setae, and 7 ventral setae and distal spine. Propodus 2.2 times longer than tarsus, slightly curved, with dorsal row of 13 spines and setae, and row of 22 ventral setae. Main claw short, less than ¼ length of propodus, auxiliary claws nearly as long as main claw.
Female paratype (UANL-FCB-PYCNO-0056). Gonopores oval-shaped, present on ventrodistal end of coxa 2 in all leg pairs.
Taxonomic summary
Etymology. This species is named in honor of Dr. C. Allan Child (Department of Invertebrate Zoology, National Museum of Natural History, Smithsonian Institution, Washington) in recognition of his life dedicated to the study of Pycnogonida. The species-group name is a noun in the genitive case (ICZN 1999, Art. 31.1.2).
Type material. Holotype (1 male), (UANL-FCB-PYCNO-0055), paratypes (1 male and 4 females), (UANL-FCB-PYCNO-0056), Marina La Paz, La Paz, Baja California Sur, Mexico, 24°07’29.3” N, 110°20’47.3” W, 3 September 2013.
Additional material. One specimen (female), (UANL-FCB-PYCNO-0059), Marina La Paz, La Paz, Baja California Sur, Mexico, 24°07’29.3” N, 110°20’47.3” W, 14 August 2011. One specimen (male), (UANL-FCB-PYCNO-0057), Marina Palmira, La Paz, Baja California Sur, Mexico, 24°11’05.3” N, 110°18’12.7” W, 3 April 2011; 10 specimens (male), (UANL-FCB-PYCNO-0058), same locality, 15 August 2011. Two specimens (1 male and 1 female), (UANL-FCB-PYCNO-0060), Marina Cantamar, La Paz, Baja California Sur, Mexico, 24°16’44” N, 110°19’49” W, 26 June 2017.
Figure 2. Nymphon childi sp. nov. Holotype. A) Trunk, dorsal view; B) trunk, lateral view; C) chela, lateral view; D) palp, lateral view; E) third leg, lateral view; F) oviger, lateral view; G) oviger, terminal end, lateral view. Scale bars: A, B, D, F = 0.5 mm; C, G = 0.1 mm; E = 1 mm.
Remarks
From the current Nymphon species known in the world, 21 have been reported from both coasts of America, 10 of these from the Eastern Pacific: N. aculeatum Child, 1994 (California, Oregon); N. apheles Child, 1979 (Panama); N. duospinum (Hilton, 1942) (Alaska); N. heterodenticulatum Hedgpeth, 1941 (Santa Catalina Island, California); N. hirsutum Child, 1995 (Bering Sea); N. lituus Child, 1979 (Gulf of California and Panama); N. longicollum Hoek, 1881 (Chile); N. pixellae Scott, 1912 (Vancouver, Oregon, Gulf of California); P. simulare Child, 1992 (Ecuador) and N. stipulum Child, 1990 (California).
Nymphon childi sp. nov. is morphologically similar to N. lituus Child, 1979 and N. simulare Child, 1992, all have a slender body, the third metamere of the body is longer than wide, the neck is 4 or more times longer than wide, and the tarsus is less than 50% of the length of the propodus. Nymphon childi sp. nov. differ from these species in the following characteristics: 1) the anterior tubercle over insertion of chelifores, conical in N. childi sp. nov., and as low anteriorly curved tubercle in N. lituus, N. simulare does not present anterior tubercles; 2) strigilis formula, of 12: 7: 5: 8 in N. childi sp. nov., 15: 10: 10: 11 in N. littus, and 11:10:10:10 in N. simulare; 3) second segment of the palp is shorter than third and fourth together in N. childi sp. nov. and N. simulare, and sligthly longer in N. littus; 4) third segment of the palp is 1.5 times longer than the fifth in N. childi sp. nov. and N. simulare and subequal to the fifth one in N. littus; 5) chela fingers, with 23 teeth in both chelae in N. childi sp. nov, immovable finger has 29 teeth, movable finger with 33 teeth in N. littus, and 27-28 teeth in N. simulare.
Another closer species to Nymphon childi sp. nov. is N. heterodenticulatum, both have the same structural body plan, proboscis horizontal to body, with a long cylindrical neck longer than wide ending in a structure with calyx shape, similar lateral processes separation, and abdomen shape. However, N. heterodenticulatum presents the ocular tubercle sharply pointed, ending in a cone shaped structure, chelifores with slender chela, fixed finger with 17 teeth, movable finger with 19 teeth; oviger with strigilis with a formula of 9: 9: 7: 7.
This species is currently known only from the type locality: Bahía de La Paz, Baja California Sur, Mexico, attached to dock fouling not deeper than 0.5 m.
Key to Nymphon species from Eastern Pacific
1. Tarsus longer than propodus … 2 — Tarsus shorter than propodus … 4 2. Ocular tubercle well developed; auxiliary claw present; fourth and fifth segment of palp equal in size … 3 — Ocular tubercle and eyes lacking; auxiliary claws absent; fourth segment of palp shorter than the fifth one … N. aculeatum Child, 1994 (California) 3. Auxiliary claws less than half the length of the main claw; strigilis of oviger as follow 20:9:14:12; terminal claw of oviger with 15-17 teeth; movable finger of chela with 35 thin teeth; immovable finger with 20 teeth … N. pixellae Scott, 1912 (Vancouver, Canada) — Auxiliary claws slightly longer than the main claw; strigilis of oviger as follow 10: 9: 8: 10; terminal claw of oviger with 8 teeth; movable finger of chela with 19 teeth; immovable finger with 17 teeth … N. heterodenticulatum Hedgepeth, 1941 (Santa Catalina Island, California) 4. Short neck, less than twice own width … 5 — Long neck, more than twice own width … 7 5. Auxiliary claws less than half the length of the main claw; cheliphore with long and thin scape … 6 — Auxiliary claws longer than half the length of the main claw; cheliphore with short and robust scape … N. apheles Child, 1979 (Panama) 6. Palp with third segment longer than second one, with a group of long distal chaetae; tarsus longer than half the size of the propodus … N. stipulum Child, 1990 (California) — Palp with third segment shorter than second one, with short chaetae along surface; tarsus shorter than half the size of the propodus … N. duospinum (Hilton, 1942) (Alaska) 7. Auxiliary claws thin and small, less than ¼ the size of the main claw; chelae with few teeth on both fingers, movable finger with 8 teeth, immovable finger with 5 teeth … N. longicollum Hoek, 1881 (Chile) — Auxiliary claws equal to, or longer than half the size of the terminal claw … 8 8. Fingers of the chelae shorter than palm, movable finger with 34 teeth, immovable finger with 26 teeth; oviger with strigilis as follow 11: 6: 6: 6; oviger claw with 20 teeth … N. hirsutum Child, 1995 (Bering Sea) — Fingers of the chelae longer than palm … 9 9. Oviger with strigilis as follow 12: 7: 5: 8; movable finger of chelae with 20 teeth, immovable finger with 20-21 teeth … N. childi sp. nov. (Bahía de La Paz, Gulf of California) — Last 3 segments of the strigilis with 10 or more compound spines; chelae fingers with more than 20 teeth each … 10 10. Third segment of the palp similar in size of the second one; distal end of neck without distal tubercules … N. simulare Child, 1992 (El Viejo Island, Ecuador) — Third segment of the palp ½ the size of the second one; distal end of neck with anteriorly curved low tubercle over insertion of chelifores … N. lituus Child, 1979 (Puerto Peñasco, Gulf of California)
Acknowledgements
This work was financially supported by the Universidad Autónoma de Nuevo León (grant number PAICYT 0235). Many thanks to Jesús Flores and Jesús Mendieta for their technical help with the collections and sorting out the specimens from the samples. This work could not be completed without the support of Claudia Arango, Lyudmila Slucheusky and Isabell Clasen who sent us some relevant scientific literature. We thank Mariana Tovar-Hernández for her review of the manuscript, and an anonymous reviewer.
References
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Supervivencia, crecimiento y dimorfismo sexual del cangrejo terrestre Cardisoma guanhumi en condiciones semicontroladas de cautiverio
Karla Verónica Santana-Aguayo, Carlos Iván Pérez-Rostro *, Martha Patricia Hernández-Vergara
Instituto Tecnológico de Boca del Río, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Laboratorio de Mejoramiento Genético y Producción Acuícola, Km. 12 Carretera Veracruz–Córdoba, 94290 Boca del Río, Veracruz, Mexico
Received: 21 April 2025; accepted: 23 February 2026
Abstract
This study evaluated the survival, growth, and reproductive performance of Cardisoma guanhumi maintained for 12 months under semi-controlled conditions. A total of 341 adult crabs were collected from mangrove habitats and housed in a naturalized enclosure equipped with buried PVC shelters, freshwater and saltwater basins, and automated sprinklers to maintain humidity. Crabs were fed a plant-based diet supplemented with tilapia muscle and monitored monthly. Final survival reached 76%, and 68.6% of females became ovigerous, supporting the species’ reproductive viability under captive conditions. Morphometric growth was recorded in 170 intact individuals. Notably, carapace width increased by approximately 1 mm/month despite the near absence of visible molting, particularly among smaller crabs (< 100 g), which gained over 150% in total weight. Seasonal patterns were detected, with greater somatic gains in warmer months. No significant differences were observed between sexes overall, although some interactions were noted in specific morphometric traits. These findings suggest the potential occurrence of hypertrophic tissue expansion or mineral recycling in the absence of ecdysis, which merits further investigation. This study provides the first long-term physiological baseline for C. guanhumi under ex-situ conditions and supports its potential use in conservation and aquaculture programs.
Este estudio evaluó la supervivencia, el crecimiento y el desempeño reproductivo de Cardisoma guanhumi durante 12 meses en condiciones semicontroladas. Se recolectaron 341 cangrejos adultos en manglares y se mantuvieron en un recinto naturalizado con refugios de PVC enterrados, estanques de agua dulce y salada, y rociadores automatizados para mantener la humedad. Los organismos fueron alimentados con una dieta vegetal suplementada con músculo de tilapia y monitoreados mensualmente. La supervivencia final fue de 76 y 68.6% de las hembras se volvieron ovígeras, evidenciando viabilidad reproductiva en cautiverio. Se registró crecimiento morfométrico en 170 individuos con apéndices intactos; el ancho del caparazón aumentó aproximadamente 1 mm por mes, pese a la casi ausencia de mudas visibles. Los organismos más pequeños (< 100 g) incrementaron su peso en más de 150%. Se observaron patrones estacionales, con mayores ganancias somáticas en meses cálidos. No se detectaron diferencias significativas entre sexos, salvo algunas interacciones en rasgos específicos. Los resultados sugieren posibles mecanismos de expansión tisular o reciclaje mineral sin muda. Este estudio aporta una línea base fisiológica a largo plazo y respalda el potencial de la especie para conservación y acuicultura.
Coastal ecosystems provide critical services for biodiversity, food production, and human livelihoods. However, increasing anthropogenic pressures —including urban expansion, agriculture, and coastal infrastructure— have led to widespread loss and degradation of mangroves and wetlands (Alvarez & Briquets, 1983). This environmental decline directly threatens terrestrial crab species of the family Gecarcinidae, including Cardisoma guanhumi, a large land crab distributed from Florida to Brazil (Anger, 2013; Botelho et al., 2001).
Cardisoma guanhumi plays a key ecological role in mangrove ecosystems as a detritivore and sediment bioturbator. Its burrowing behavior enhances sediment oxygenation and stimulates microbial decomposition, contributing to nutrient cycling and substrate balance (Kristensen, 2008). Economically, it is highly valued in several Caribbean countries for its large chelipeds and meat content (Watson-Zink, 2021). In Mexico, although C. guanhumi is not currently listed under NOM-059 as endangered (Semarnat, 2020), its inclusion in local management programs reflects growing concern over population decline, and has been subject to seasonal fishing bans in regions such as Veracruz (Semarnat, 2020). Despite its ecological and commercial relevance, scientific knowledge on C. guanhumi is still limited, especially under captive conditions. Most available studies on C. guanhumi are over 2 decades old and focus primarily on natural history and reproductive cycles, with very limited data on captive performance or aquaculture potential (Diele et al., 2005; Smith & Smith, 2001).
Given the ongoing degradation of coastal habitats and the absence of recent biological data, understanding the growth and reproductive performance of C. guanhumi in captivity is essential. This study aimed to evaluate the feasibility of maintaining this species under semi-controlled conditions, describing seasonal growth patterns and reproductive output. The findings provide foundational data for conservation strategies and offer the first long-term evidence of physiological plasticity in captivity, supporting future aquaculture development for this native land crab. Such species are vital for coastal productivity and food web integrity (Gifford, 1963).
Materials and methods
The experiment was conducted at the Aquaculture Genetics and Production Laboratory of the Instituto Tecnológico de Boca del Río (ITBOCA), Veracruz, Mexico. A total of 341 adult specimens of C. guanhumi (132 males and 209 females; cephalothorax width > 50 mm) were manually collected during July and August 2022 from mangrove habitats along the Boca del Río-Antón Lizardo-Alvarado corridor (19°03’08” N, 96°00’27” W). Collection was performed under environmental authorization in compliance with national regulations and with minimal handling stress. Ovigerous females were excluded to avoid interference with growth and reproductive monitoring. Crabs were weighed (165.11 ± 50.19 g) and measured (CW: 6.80 ± 0.81 cm; CL: 5.06 ± 0.79 cm) before transport in 60-L plastic containers (15 individuals per container) to the laboratory facilities.
Crabs were maintained for 12 months in a semi-controlled, custom-built habitat designed to simulate key structural and microclimatic features of their natural environment. The enclosure measured 7 × 6 m, delimited by concrete perimeter walls 1.2 m high, and was installed directly over natural soil. A 30-cm-deep layer of fine sand was distributed across the entire area to allow natural burrowing behavior.
Eighty cylindrical PVC shelters, ranging from 2.5” to 6” in diameter, were buried diagonally into the substrate. Each tube was partially exposed at one end and fully embedded at the other, mimicking natural burrow structures and providing refuge. These shelters were distributed evenly across the enclosure. A young red mangrove (Rhizophora sp.) tree was planted at the center of the habitat to provide shading and promote environmental heterogeneity.
Two shallow basins were integrated at ground level to simulate aquatic access points: one freshwater basin (0.80 × 0.40 m) and one saltwater basin (0.60 × 0.50 m). These allowed the crabs to access both water types to mimic the species’ natural osmoregulatory behavior. The enclosure was protected with plastic mesh netting to prevent escapes and exclude predators.
A sprinkler system powered by a ½ HP submersible pump was installed to automatically maintain ambient humidity at 70 ± 10% and simulate rainfall events. This system operated intermittently throughout the day, creating a microclimatic regime resembling that of natural coastal mangroves. Environmental parameters including temperature and salinity were monitored daily using a YSI 556 multiparameter probe. Crabs were stocked at low density (< 1.0 ind/m²) to minimize territorial stress and promote natural behavior. A 5-day acclimation period was provided before experimental measurements commenced. The layout of the semi-controlled habitat and individual crab marking strategy are illustrated (Fig. 1).
Crabs were fed ad libitum with a rotating mixture of fruits and vegetables, supplied daily. Each individual received approximately 30-40 g/day of plant matter, including chopped papaya (10 g), mango (8 g), banana (5 g), coconut (3 g), watermelon (5 g), pumpkin (5 g), radish (2 g), and carrot (2 g), provided in alternating combinations to ensure dietary variety and stimulate natural foraging behavior.
In addition, each crab was offered 5 g of fresh tilapia (Oreochromis sp.) muscle every 2 days as a source of animal protein. All food items were weighed prior to distribution using a digital scale, and uneaten remnants were removed within 24 hours to prevent microbial proliferation and maintain substrate hygiene. Feeding was performed in the early morning to take advantage of natural crab activity rhythms. Food was distributed uniformly across the enclosure to reduce competition and ensure equal access among individuals.
A total of 170 crabs that retained all appendages throughout the experiment were selected for monthly morphometric monitoring. Each individual was permanently identified by engraving a unique mark on the dorsal carapace using a Dremel® rotary tool, a method shown to be effective and non-lethal for individual identification in crustaceans, followed by a dot of red nail polish to facilitate visual recognition during handling.
Figure 1. Experimental enclosure for Cardisoma guanhumi under semi-controlled conditions. The system included a central mangrove tree, freshwater and saltwater basins embedded at ground level, diagonally buried PVC pipes for shelter, and overhead sprinklers to maintain humidity. Inset: dorsal view of a marked crab with engraved ID and red nail polish.
Nine morphometric parameters were recorded: total weight (TW), cephalothorax width (CW), cephalothorax length (CL), and bilateral measurements of the chelipeds, including: chelae (RCh, LCh), carpi (RCa, LCa), and meri (RM, LM). All linear dimensions were measured to the nearest 0.01 cm using a digital caliper (Autotec™), and weight was recorded to the nearest 2 g using an Ohaus Scout Pro SPU2001 electronic scale. Measurements were conducted at 30-day intervals for a total of 12 months. Handling was performed with care to minimize stress and avoid damage to limbs or exoskeleton. Data were logged immediately into individual digital records for subsequent statistical analysis. All measurements were performed by a single trained observer to reduce operator error.
Survival was assessed as the proportion of live individuals at the end of the 12-month experimental period relative to the initial number of crabs introduced into the habitat (n = 341). Daily inspections were conducted to detect mortalities, which were immediately removed to prevent deterioration and potential contamination of the enclosure. Causes of mortality were not determined but monitored for frequency to identify potential trends.
Reproductive activity was evaluated based on the presence of ovigerous females. Identification was performed by visual inspection of the ventral abdomen to detect external egg masses attached to the pleopods. Females were not handled unnecessarily to avoid detachment or disturbance of egg clutches. The number of ovigerous females was recorded seasonally, and reproductive peaks were determined based on their frequency during each sampling period. Although no copulation events were directly observed, the appearance of ovigerous females was interpreted as evidence of successful mating or possible sperm storage, as reported in other decapods. No interventions (e.g., hormone induction) were performed to stimulate reproduction.
Statistical analysis
Only crabs that retained all appendages throughout the entire experimental period (n = 170) were included in the statistical analyses. Data were first tested for normality using the Kolmogorov-Smirnov and Lilliefors tests, and for homogeneity of variances using Levene’s test. Sex-related differences across all morphometric variables were analyzed using one-way multivariate analysis of variance (MANOVA). To evaluate the effects of season and sex on specific traits, a two-way ANOVA was conducted for each morphometric variable independently. When significant differences were detected, Tukey’s HSD post hoc test was applied to identify specific group differences. Additionally, to assess growth performance by initial body size, crabs were grouped into 4 weight classes (0-99 g, 100-199 g, 200-299 g, > 300 g), and a two-way ANOVA (sex × weight class) was performed. Statistical analyses were performed using Statistica version 7.0 (StatSoft Inc., Tulsa, OK, USA), and differences were considered statistically significant at p < 0.05. Statistical procedures followed standard biometric methodology (Sokal & Rohlf, 2003).
Results
Cardisoma guanhumi was successfully maintained for 12 consecutive months in the semi-controlled habitat, showing a final survival rate of 76.25%. Males exhibited slightly higher survival than females. These values are comparable to those reported in similar experimental setups for other land or semi-terrestrial brachyurans, such as Gecarcinus lateralis and Ucides cordatus, where survival ranged between 70-85% under laboratory or mesocosm conditions (Greenaway, 2003; Hartnoll, 1982). However, published data on long-term captive maintenance of C. guanhumi remain scarce, with most available studies limited to short observational trials or reproductive monitoring under field conditions (Gifford, 1963; Shinozaki-Mendes et al., 2013). Sex-specific survival percentages are presented in Table 1.
Ovigerous females were recorded in all seasons, with the highest occurrence observed during summer and early autumn. A total of 68.6% of the females became ovigerous at least once throughout the year, consistent with historical accounts of reproductive periodicity in this species. Although no copulation events were directly observed during the trial, the consistent appearance of externally egg-bearing females suggests that successful mating occurred prior to or during the initial weeks of captivity. This observation supports the hypothesis of sperm storage capacity in C. guanhumi, a reproductive trait widely documented in decapod crustaceans and associated with multiple spawning events and temporal reproductive flexibility (Bauer, 1986; Taissoun, 1974).
On average, C. guanhumi exhibited a monthly morphometric gain of approximately 1 mm in cephalothorax width under captive conditions, despite the absence of molting in all but one individual. All morphometric variables showed significant seasonal increases over the 12-month period. The most pronounced gains occurred in cephalothorax width (CW) and total weight (TW), with maximum values recorded during spring and summer. These seasonal trends are illustrated in Figure 2. Two-way ANOVA indicated a significant effect of weight class on TW gain (p < 0.001), but no effect of sex (p > 0.05) nor sex × weight class interaction. Crabs in the lowest weight class (0-99 g) showed the highest relative TW gain (> 150%), whereas those above 300 g gained less than 3% (Fig. 2). Multivariate analysis of variance (MANOVA) did not detect overall differences between sexes across the 9 morphometric variables. However, a significant interaction was found for cephalothorax length (CL) between sex and season (p = 0.02).
Figure 2. Seasonal and size-class growth patterns of Cardisoma guanhumi after 12 months in captivity. a, Total weight (TW) gain by season; b, cephalothorax width (CW) and length (CL) growth by season; c, relative TW gain by initial weight class. Bars represent mean ± standard deviation (n = 170). Different superscript letters denote significant differences (Tukey’s HSD, p < 0.05).
Discussion
The relatively high survival rate can be attributed to the design of the artificial habitat, which included multiple buried shelters, regulated humidity through simulated rainfall, access to both freshwater and saltwater, and low stocking density. These conditions have been recognized as critical factors for terrestrial crab survival under controlled environments (Herreid, 1963; Oliveira et al., 2020), likely contributing to reduced stress, enhanced shelter availability, and overall behavioral stability.
Importantly, no signs of cannibalism or excessive agonistic behavior were observed during the experimental period. This contrasts with other decapods in captivity where confinement and competition for space often lead to significant mortality, as reported by Bauer (1986) and Fox (1975). The lack of mortality peaks during the reproductive season also suggests that the species can tolerate environmental manipulation and semi-controlled conditions without major physiological stress.
To our knowledge, this is one of the first experimental reports documenting long-term survival of C. guanhumi under captive conditions with ecological elements resembling natural mangrove habitats. Previous studies on this species have primarily been limited to short-term reproductive monitoring or natural history observations (Hartnoll, 1982; Smith & Smith, 2001).
Table 1
Summary of survival by sex in Cardisoma guanhumi after 12 months under semi-controlled conditions.
Sex
Initial number
Final number
Survival (%)
Male
132
106
80.3
Female
209
154
73.7
Combined
341
260
76.25
No statistical comparisons were performed, as crabs were maintained in a single habitat. However, survival rates by sex are reported for descriptive purposes.
The reproductive performance observed under semi-controlled conditions confirms that C. guanhumi is capable of adapting its reproductive cycle to artificial environments with minimal intervention. The presence of mangrove vegetation, natural soil substrate, and controlled humidity may have played a key role in maintaining environmental cues necessary for ovarian development and spawning behavior, as shown in studies on similar species (Mariappan et al., 2000; Silva & Oshiro, 2002). Unlike studies performed under purely laboratory conditions, where reproductive inhibition is common in terrestrial crabs, this setup offered a more ecologically relevant habitat, favoring reproductive success. The relatively high frequency of ovigerous females obtained without hormonal induction or photoperiod manipulation highlights the potential of C. guanhumi for captive broodstock development. Given the limited number of experimental studies on reproductive ecology in this species, these findings contribute novel evidence for its suitability in aquaculture and conservation-based culture systems.
The observed growth pattern in C. guanhumi under captive conditions may reflect a typical crustacean molting mechanism, in which the inner layer of the old exoskeleton is reabsorbed prior to ecdysis and a new cuticle is secreted and later calcified. This process allows size increase while maintaining structural stability of the carapace in adults. The reabsorption of calcium and other minerals, and their temporary storage in gastroliths or the hepatopancreas, has been well documented in decapods (Chang, 1995; Greenaway, 1985; Skinner, 1985), and is particularly relevant in land crabs due to limited environmental calcium availability.
Although somatic growth in decapod crustaceans is typically associated with molting events, the sustained morphometric increases observed in this study, in the apparent absence of clearly detectable ecdysis, may reflect subtle molting events, mineral recycling dynamics, or cuticular remodeling processes not externally observed. Similar mechanisms have been discussed in other decapods under stable environmental conditions (Chang, 1995; Greenaway, 1985; Skinner, 1985).
This physiological flexibility may represent an adaptive response of semi-terrestrial crabs to fluctuating environmental constraints (Anger, 2013; Zimmer et al., 2019). Further studies incorporating histological and endocrine approaches would help clarify the mechanisms underlying the morphometric patterns recorded here (Hartnoll, 2001). Similar sex-based morphometric assessments have been conducted in other brachyurans such as Menippe mercenaria, where cheliped development is linked to territorial behavior and reproductive strategies (Bauer, 1986; Savage & Sullivan, 1978).
Cardisoma guanhumi can be maintained under semi-controlled conditions with high survival and reproductive performance. The sustained morphometric growth recorded during the study provides a baseline for understanding its physiological responses in captivity and supports its potential for ex situ conservation and aquaculture applications.
Acknowledgments
The authors are grateful to Andrés Cabrera Muñoz from the Aquaculture Genetics and Production Laboratory (ITBOCA) for his technical assistance throughout the study.
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Modern and fossil pollen assemblages in the Sierra Occidental of Jalisco; ~ 1,500 years of history of the vegetation and environmental change
Ana Patricia del Castillo-Batistaa, *, Blanca Lorena Figueroa-Rangela, Socorro Lozano-Garcíab, Ramón Cuevas-Guzmána, Miguel Olvera-Vargasa y Lia Hueso-Vidrioc
a Universidad de Guadalajara, Laboratorio de Paleoecología y Cambio Climático, Departamento de Ecología y Recursos Naturales, Centro Universitario de la Costa Sur, Av. Independencia Nacional Núm. 151, 48900 Autlán de Navarro, Jalisco, México
b Universidad Nacional Autónoma de México, Instituto de Geología, Laboratorio de Paleoecología, Paleoclimatología y Cambio Climático, Departamento de Dinámica Terrestre Superficial, Ciudad Universitaria, Coyoacán, 02376 Ciudad de México, México
c Universidad de Guadalajara, Ingeniería en Recursos Naturales y Agropecuarios, Departamento de Ecología y Recursos Naturales, Centro Universitario de la Costa Sur, Av. Independencia Nacional Núm. 151, 48900 Autlán de Navarro, Jalisco, México
*Autor para correspondencia: ana.delcastillo@academicos.udg.mx (A.P. del Castillo-Batista)
Recibido: 15 agosto 2025; aceptado: 30 octubre 2025
Resumen
La sierra de Cacoma, Jalisco, es una región de alta diversidad florística y endemismo situada en una zona de transición biogeográfica (2,119 m snm), donde convergen elementos templados y tropicales. Analizamos la relación entre la composición taxonómica del polen moderno y fósil, así como los cambios ambientales en un bosque de Pinus–Quercus–Abies de La Cumbre de Guadalupe (Talpa de Allende, Jalisco, México). Se analizaron 22 muestras de polen moderno, 62 de polen fósil y la estructura de la vegetación en 14 parcelas de 500 m2. Aplicamos los índices de asociación palinológica de Davis, la diversidad de Hill y una similitud basada en la distancia cordal. Los últimos ~ 1,580 años muestran un intervalo de mayor similitud (~ 850 y 400 años cal AP) intercalado por episodios de cambio (~ 1,500, 1,000 y 300 años cal AP), congruentes con transiciones climáticas del Holoceno tardío. En el periodo reciente, incendios y deforestación han favorecido la homogeneización de la vegetación. Estos resultados documentan las respuestas de bosques templados a forzamientos climáticos y antrópicos a escala centenaria y resaltan el valor de integrar lluvia de polen moderno, registros fósiles y métricas de diversidad.
The Sierra de Cacoma, Jalisco is a region of high floristic diversity and endemism located in a biogeographic transition zone (2,119 m asl), where temperate and tropical elements converge. We analyzed the relationship between the taxonomic composition of modern and fossil pollen and environmental changes in a Pinus-Quercus-Abies forest at La Cumbre de Guadalupe (Talpa de Allende, Jalisco, Mexico). We analyzed 22 modern pollen samples, 62 fossil pollen samples, and vegetation structure in 14 plots (500 m² each). We applied Davis palynological association indices, Hill diversity, and a dissimilarity analysis based on chord distance. The past ~ 1,580 years show an interval of greater similarity (~ 850-400 cal yr BP) interspersed with episodes of change (~ 1,500, 1,000, and 300 cal yr BP), consistent with Late Holocene climatic transitions. In the recent period, fires and deforestation have promoted vegetation homogenization. Overall, these results document the response of temperate forests to climatic and anthropogenic forcing at centennial scales and highlight the value of integrating modern pollen rain, fossil records, and diversity metrics to interpret vegetation and environmental history.
Keywords: Anthropogenic activity; Temperate forests; Late Holocene; Pollen rain
Introducción
Las comunidades vegetales actuales incorporan señales del cambio climático acumuladas a múltiples escalas temporales que son evidentes en la distribución, fenología, dinámica demográfica y composición florística, pero su estructura y trayectoria también responden a otros motores de cambio, como el uso de suelo, régimen de incendios, especies invasoras, perturbaciones antrópicas y variabilidad natural (Jackson y Overpeck, 2000). Estos forzamientos configuran patrones contemporáneos, en los que el clima es determinante. En este contexto, el análisis de polen fósil preservado en sedimentos de hondonadas forestales es una herramienta robusta para reconstruir la historia de la vegetación y su ambiente (Calcote, 1995; Figueroa-Rangel et al., 2020). Los registros polínicos documentan cambios en la composición taxonómica a través del tiempo (Figueroa-Rangel et al., 2016) y mediante un enfoque espacio-temporal, la paleoecología permite interpretar la dinámica de los ecosistemas y las respuestas de la vegetación frente a variaciones y perturbaciones ambientales (Trivi de Mandri et al., 2006).
La reconstrucción paleoecológica se basa en el supuesto de que existe una estrecha relación entre las especies de plantas presentes en el bosque y el polen que éste produce (Erdtman, 1943; Faegri e Iversen, 1989). El polen se libera y se dispersa durante la maduración y apertura de los sacos polínicos y es depositado como sedimento en capas del suelo donde se preserva en condiciones ambientales adecuadas (húmedas y anóxicas). Al analizar los conjuntos de polen fósil presentes en estos sedimentos, es posible inferir la composición de la vegetación que existió en el pasado. Así mismo, la lluvia de polen moderno desempeña un papel importante para comprender la representación del polen en las secuencias sedimentarias y calibrar la interpretación basada en estos registros. El análisis de los conjuntos de polen moderno permite establecer la relación entre la abundancia relativa del polen y la presencia de diferentes especies de plantas en la vegetación actual (Rodríguez-Pérez et al., 2025). Lo que contribuye a mejorar la interpretación de los conjuntos de polen fósil y una comprensión más precisa de los cambios de la vegetación a lo largo del tiempo (Lozano-García et al., 2014).
La abundancia de polen en los sedimentos resulta de la interacción de factores biológicos de las especies fuente como la productividad, modo de dispersión y preservación a través del tiempo (Davis, 1984), además de factores ecológicos locales que integran la estructura de la vegetación desde el rodal hasta su entorno inmediato (diámetro y altura de los árboles, área basal, densidad, frecuencia, composición y fenología), modulando el transporte y la deposición del polen (Davies y Fall, 2001; Faegri e Iversen, 1989), y así mismo de las condiciones físicas de los sedimentos del sitio como el tamaño y morfología del sustrato, oxidación y frecuencia de inundación (Davies y Fall, 2001; Faegri y van der Pijl, 1979; Proctor et al., 1996); finalmente, de las características climáticas y la calidad de la identificación palinológica (Escarraga-Paredes et al., 2014). Por lo tanto, el análisis del polen fósil y el estudio de las lluvias de polen moderno son herramientas complementarias que permiten reconstruir la historia de la vegetación y su ambiente, especialmente en regiones donde no se dispone de información sobre la producción y dispersión de polen (Wright, 1967).
Para comprender mejor la dinámica de la vegetación, es necesario abordarla desde una perspectiva espacio-temporal, donde diferentes procesos físicos y biológicos influyen en los patrones observados en cada escala temporal. Las respuestas de la vegetación a corto plazo se pueden interpretar a través de eventos como incendios, huracanes, enfermedades y extracción de madera, mientras que a largo plazo están involucrados los mecanismos de perturbación ambiental y el desarrollo evolutivo (Delcourt et al., 1983). La escala espacial permite comprender cómo los diferentes tipos de vegetación cercanos geográficamente responden de forma diferenciada en eventos de corto o largo plazo, tales como los regímenes de perturbación y fluctuaciones climáticas (Figueroa-Rangel y Olvera-Vargas, 2018). En este sentido, se han realizado diversos estudios con el uso de polen fósil para reconstruir la historia de la vegetación y el clima en el occidente de México, durante el Holoceno tardío (Figueroa-Rangel et al., 2008; Lozano-García et al., 2021). Estos estudios han proporcionado herramientas para evaluar la paleovegetación y los escenarios climáticos en las regiones de alta montaña y en las regiones tropicales. Sin embargo, se ha prestado poca atención a la comprensión de las relaciones cuantitativas entre la lluvia de polen y la vegetación moderna para la interpretación de la historia de la vegetación y el clima con base en datos de polen fósil.
Un área de gran importancia para realizar estudios que combinen registros de polen fósil y moderno es la región de la sierra de Cacoma, ubicada en el occidente de México. Esta región se destaca por su alta diversidad biológica y endemismo de flora y fauna (Conabio, 2010). Se encuentra en una zona de transición biogeográfica con un rango altitudinal de 650 a 2,740 m, con zonas de transición entre tipos de vegetación templada y tropical (INEGI, 2015). Las zonas de mayor elevación comprenden topografías abruptas, con valles y barrancas profundas que forman microclimas que han servido de refugio para varias comunidades de plantas (Amador-Cruz et al., 2024). Por lo tanto, el presente estudio tiene como objetivo evaluar, mediante el análisis de ensambles de polen moderno y su correspondencia con la estructura de la vegetación, si el espectro de polen fósil refleja los patrones de la distribución actual de la vegetación. Para ello, se plantean los siguientes objetivos: 1) caracterizar la composición taxonómica y la representatividad de la lluvia de polen moderno en el bosque de Pinus–Quercus–Abies en la localidad de La Cumbre de Guadalupe en el municipio de Talpa de Allende, Jalisco, identificando los principales taxones y su relación con la vegetación fuente, 2) analizar la correspondencia entre la estructura de la vegetación actual y la señal polínica mediante análisis cuantitativos de la abundancia del polen moderno y 3) comparar la similitud taxonómica entre los ensambles de polen moderno y fósil de los últimos ~ 1,580 años. Este enfoque permitirá fortalecer la interpretación de los registros paleoecológicos en la región y contribuir al conocimiento sobre las relaciones entre la vegetación actual y la señal polínica moderna en los ecosistemas de alta montaña.
Materiales y métodos
El área de estudio se localiza en la sierra de Cacoma al occidente de Jalisco, México, en la localidad denominada La Cumbre de Guadalupe, una región de confluencia entre la cordillera del Eje Neovolcánico Transversal y la sierra Madre del Sur (fig. 1). Corresponde a una elevación de 2,119 m y se extiende hasta el litoral del Pacífico y la costa del occidente de México (INEGI, 2015). Es una zona de gran complejidad geomorfológica y litológica con afloramientos rocosos formados a partir de procesos tectónicos durante el Cretácico (Conabio, 2010). En el área de estudio domina el tipo de roca ígnea extrusiva, donde la unidad geomorfológica comprende laderas de montaña con pendientes de mediana a muy fuertemente inclinadas (Rodríguez-González, 2015). Los tipos de suelo dominantes son Cambisol y Regosol (INEGI, 2015). Presenta un clima templado subhúmedo, con una temperatura media anual de 14.2 °C. La temperatura media del mes más cálido (mayo y junio) es de 16.7 °C, mientras que la temperatura media del mes más frío es 10.8 (enero y febrero), con una precipitación promedio anual de 2,003 mm con lluvias en verano. La precipitación está concentrada entre mayo a septiembre (Estación 14271, Servicio Meteorológico Nacional, Conagua, 2025). Las principales actividades productivas son la agricultura de temporal, con apertura de áreas para el establecimiento de pastizales, la minería y la extracción de madera (Vargas-Rodríguez et al., 2010).
El bosque de Pinus–Quercus–Abies es una asociación vegetal con distribución restringida cerca del límite altitudinal de la vegetación arbórea (Cuevas-Guzmán et al., 2011; del Castillo-Batista et al., 2018). En diversos estudios florísticos de la zona se ha encontrado una alta diversidad florística para numerosas formaciones vegetales de alta montaña, entre ellas el bosque de Pinus con diferentes asociaciones vegetales (Cuevas-Guzmán et al., 2011; Guerrero-Hernández et al., 2014, 2019). Los tipos de bosque de alta montaña son representados principalmente por bosques de coníferas, donde los géneros representativos son Pinus, Abies, Cupressus, Juniperus y algunas latifoliadas como Quercus, Alnus y Arbutus (Perry et al., 1998).
La diversidad florística del área de estudio corresponde a un tipo de vegetación dominado en el estrato arbóreo por Abies jaliscana, A. religiosa, Alnus acuminata, A. jorullensis, Arbutus xalapensis, Carpinus tropicalis, Clethra fragrans, Pinus devoniana, P. douglasiana, P. oocarpa, P. jaliscana, P. herrerae, P. pseudostrobus, Podachaenium eminens, Quercus castanea, Q. calophylla, Q. scytophylla, Q. magnoliifolia, Q. obtusata y Ternstroemia lineata. Se encuentran algunos arbustos dominantes como Archibaccharis serratifolia, Baccharis heterophylla, B. pteronioides, Fuchsia microphylla, Mimosa albida, Monnina ciliolata y Salvia iodantha. El componente herbáceo es diverso, como Amaranthuspalmeri, Chenopodiumambrosoides, Iresine diffusa, Antigononflavescens, Eryngium alternatum, Bidens odorata, B. aurea, Dahlia coccinea, Ageratina choricephala, Fuchsia fulgens, Rumfordia floribunda, Melampodium perfoliatum, Piqueria triflora, Tagetes filifolia, T. lucida, Crotalaria filifolia, C. mollicula, Dalea obreniformis. Por lo que en este estudio nos referimos a este tipo de vegetación como bosque de Pinus–Quercus–Abies (BPQA) por ser los taxones dominantes.
Figura 1. Área de estudio donde se muestran las parcelas en el bosque de Pinus-Quercus-Abies en la sierra de Cacoma, en la localidad de la Cumbre de Guadalupe, en Talpa de Allende, Jalisco, México.
Se realizó un inventario de la vegetación leñosa en 14 parcelas circulares de 500 m2 cada una, siguiendo el protocolo estándar de Olvera-Vargas y Figueroa-Rangel (2023). Cada parcela se ubicó a una distancia mínima de 50 m respecto de las demás. En cada una se registraron datos ambientales y de localización (localidad, coordenadas, elevación, exposición y pendiente) (material suplementario: tabla S1). Para todos los taxones leñosos con diámetros ≥ 2.5 cm arriba de 1.30 m del nivel del suelo (DN). Con estas mediciones se estimaron indicadores estructurales a nivel de parcela, incluyendo densidad (individuos ha-1) y área basal (m2 ha-1). Se recolectaron ejemplares de herbario para confirmar la determinación taxonómica de las especies. La clasificación de familias siguió el sistema Angiosperm Phylogeny Group IV (2016) y la actualización nomenclatural se verificó en la base de datos Tropicos (www.tropicos.org). Este diseño y conjunto de métricas permiten caracterizar de manera comparable la estructura y composición de la vegetación en el área de estudio.
Se recolectaron 22 muestras de polen moderno dentro de las parcelas para evaluar la relación polen-vegetación a escala local (tabla S1). En cada parcela se establecieron subparcelas de 1 m2, dentro de las cuales se obtuvieron muestras de sedimento superficial (suelo y musgo) a una profundidad de 0-5 cm (Hjelle, 1999). Cada muestra se almacenó para su posterior extracción y análisis. Dado que los ambientes de depósito reciben polen de fuentes locales y regionales, el espectro palinológico está condicionado por procesos tafonómicos modulados por el clima y las propiedades del suelo, lo que afecta la relación polen-vegetación observada (Jacobson y Bradshaw, 1981). En este contexto, asumimos que la señal obtenida es representativa del ecosistema fuente a la escala de captura de nuestros sustratos. Si bien superficies extensas como lagos y humedales maximizan el componente regional y facilitan el vínculo con paleorregistros (Markgraf et al., 2002; Ortuño et al., 2011), el muestreo de sedimento superficial aporta la resolución local necesaria para calibrar e interpretar esa señal más integrada en el sitio de estudio.
Con la finalidad de comparar la relación entre el polen moderno y fósil, se extrajo un núcleo de sedimento que abarca los últimos 1,580 años en el BPQA (del Castillo-Batista et al., 2018). El muestreo consistió en la extracción de un núcleo de sedimento de 62 cm de profundidad con un taladro Eijelkamp (“forest hollow”, sensu Calcote 1995, 1998), en un área abierta del bosque a 2,119 m de elevación en la localidad de La Cumbre de Guadalupe (20°10’17.82” N, 104°42’42.32” O) (fig. 1). Se tomaron muestras de sedimento cada 1 cm para su análisis. La cronología se determinó con base en 4 fechados radiocarbono 14C por medio de la técnica AMS (por sus siglas en inglés, accelerator mass spectrometer) en el laboratorio Beta Analytic, Miami, Florida. Para la calibración en años calendáricos fueron utilizados los programas INCAL04.14 y CALIB v.5.02 de Stuiver y Reimer (Stuiver y Reimer, 1993). Para elaborar la cronología se obtuvo un modelo edad-profundidad por interpolación lineal de acuerdo con el método de Bennett (1994), con el apoyo del software Psimpoll (v. 4.25), lo que permitió estimar la tasa de sedimentación promedio de 25 años/cm.
Para la extracción de polen moderno y el polen fósil de las secuencias sedimentarias, se siguió un protocolo estándar de acetólisis Bennett y Willis (2001). Se agregó una pastilla de Lycopodium clavatum L. (Batch 3862) a cada muestra con el fin de estimar la concentración de granos de polen por cm3 (Stockmarr, 1971). Para obtener el tamaño de muestra estadísticamente significativo, se contabilizaron 400 granos de polen por muestra (Maher, 1972). La determinación de polen y esporas se realizó utilizando la colección de referencia palinológica “The Mexican reference collection of Global Pollen Project” (Figueroa-Rangel, 2017), además de claves palinológicas y bibliografía especializada. Para armonizar la resolución taxonómica entre los ensambles de polen fósil y moderno (en los que no siempre es posible asignar el nivel taxonómico de especie) se elaboró una tabla de equivalencias (material suplementario: tabla S2) que vincula cada tipo de polen moderno con sus especies vegetales potencialmente representadas, agrupadas por forma biológica. Los conteos de polen se expresaron como la suma total en porcentaje del polen de árboles, arbustos, herbáceas y esporas de Pteridophyta sensu lato, consideradas en este trabajo como abundancia de polen (Bennett y Willis, 2001). El polen desconocido se contó, pero fue excluido de la suma total de polen en ambos ensambles. El diagrama de polen fósil se elaboró en Psimpoll (v. 4.25) (Bennett, 2005), mientras que, el de polen moderno en el programa Tilia Graph (Grimm, 2020).
La contribución de cada una de las especies encontradas en la vegetación se estimó utilizando el índice de valor de importancia (IVI) para árboles (Matteucci y Colma, 1982; Whittaker, 1967). Este índice es un valor ponderado de la estructura del bosque, se calcula sumando las variables estructurales de la densidad relativa (número de árboles del taxón dividido entre el número total de árboles de todos los taxones), la frecuencia relativa (número de muestras en las que el taxón aparece dividido entre el número total de muestras) y el área basal relativa (área basal total del taxón dividida entre el área basal total de todos los taxones) (Cottam y Curtis, 1956). De esta manera, el IVI proporciona una medida de la importancia relativa de cada especie en el rodal. Así mismo, para el componente arbóreo se estimó la media de diámetro y altura por especie de todas las parcelas muestreadas.
Para describir la distribución de los diámetros y las alturas de las especies arbóreas en las parcelas muestreadas, se estimó la media del diámetro a la altura de 1.30 m (DN) y la altura total por especie. Se utilizaron diagramas de caja y bigote para identificar la mediana, los cuartiles (Q1 y Q3), el rango intercuartílico y la presencia de valores atípicos, proporcionando información sobre la variabilidad y la tendencia central de cada variable. El análisis fue realizado mediante el software estadístico R Project 3.6.1 (Ihaka y Gentleman,1993).
Para analizar la relación entre las especies y las parcelas basados en el método de Olvera-Vargas y Figueroa-Rangel (2023) se realizó un Análisis de Conglomerados. Es una técnica estadística multivariada que tiene como objetivo agrupar elementos o variables para lograr la máxima homogeneidad dentro de cada grupo y la mayor diferencia entre los grupos. Se trata de una clasificación jerárquica aglomerativa (Clarke y Gorley, 2015). Se utilizó la matriz de densidad de las especies, la cual fue transformada con una doble raíz cuadrada para mejorar la ponderación de las especies raras y abundantes. El análisis se realizó utilizando la medida de distancia Bray-Curtis y como método de unión de grupos de los promedios ponderados, con el apoyo del software PRIMER V.7 (Clarke y Gorley, 2015).
Utilizando datos de presencia-ausencia del polen moderno y de la vegetación, se calcularon 3 índices de asociación R (Davis, 1984), el índice de asociación (A), el índice de sobrerrepresentación (O) y el índice de subrepresentación (U). Estos índices permiten determinar si los taxones están presentes de manera simultánea, tanto en el conjunto de polen como en la vegetación (León-Carreño et al., 2019). Se calcularon con las fórmulas que se describen a continuación:
A = B0 / P0 + P1 + B0
O = P0 / P0 + B0
U = P1 / P1 + B0
Donde B0 corresponde al número de parcelas en las que tanto el tipo polínico como el grupo vegetal asociado están presentes, P0 representa el número de parcelas en las que se registra el polen, pero la planta que lo produce no está presente en la vegetación, y P1 es el número de parcelas en las que el tipo de polen está ausente pero el taxón vegetal se encuentra presente en la vegetación. Los valores del índice de asociación varían entre 0 y 1; donde A = 1 indica que el tipo polínico y el taxón vegetal están siempre presentes y si A = 0, alguno de los 2 elementos se encuentra ausente en todos los levantamientos. Posteriormente, los valores de los índices de cada taxón se agruparon en las siguientes categorías: 1) tipo fuertemente asociado “TFA” cuando A > 0.65; 2) tipo asociado “TA”, cuando A varía entre 0.65 y 0.5; 3) tipo débilmente asociado “TDA”, donde A < 0.5 y además O y U son positivos; 4) tipo sobrerrepresentado “TOR”, cuando A < 0.5 y U = 0; 5) tipo subrepresentado “TUR”, con A < 0.5 y O = 0, y 6) tipo no asociado “TNA”, en donde A = 0, además O y U son positivos (Fjordheim et al., 2018).
La diversidad de taxones de los datos de polen moderno y fósil se estimó mediante la diversidad de Hill N0 sumando el número de taxones identificados en cada conjunto (Hill, 1973). Se calcularon los valores de diversidad de Hill N1 para obtener más información sobre las características de diversidad del polen. Esta métrica considera la riqueza de taxones en cada muestra y pondera cada taxón según su abundancia relativa. Asimismo, se seleccionó el número de Hill N2 para representar el número de taxones de polen fósil que son muy abundantes (dominantes) (Figueroa-Rangel et al., 2020). Estos cálculos se realizaron utilizando la librería “vegan” (Oksanen et al., 2010), disponible en el paquete estadístico R-v3.4.3 (R Core Team, 2019).
Con el propósito de comparar la composición taxonómica entre los ensambles de polen fósil con los de polen moderno, se aplicó la función de comparación de análogos múltiples (analog.mult), que calcula índices de distancia o disimilitud entre las muestras de polen fósil con el moderno. Para ello se utilizó la distancia cordal (square chord distance en inglés) mediante la librería “paleoMAS” (Correa-Metrio et al., 2015) disponible en R (R Core Team, 2019).
Resultados
Se registraron 6 familias, 8 géneros y 17 especies en las 14 parcelas analizadas. Las familias con más riqueza de especies fueron Pinaceae y Fagaceae. Los géneros más frecuentes presentes en las parcelas fueron: Pinus–Quercus–Abies. Pinus pseudostrobus fue la especie dominante en el dosel del rodal por su IVI (tabla 1), seguida por Abies jaliscana, Pinus devoniana, Quercus castanea y P.herrerae, todos ellos identificados como elementos importantes de acuerdo con su IVI. Por otro lado, Q. scytophylla, Q. magnoliifolia y P. douglasiana presentan los valores más bajos de IVI.
El análisis de cuartiles de los diámetros normales de las especies arbóreas muestra que la mayoría de los individuos presentan diámetros inferiores a 60 cm (fig. 2a). Se observa una notable dispersión en la mediana de Vachellia farnesiana, lo que indica una alta variabilidad en el diámetro de esta especie. En contraste, Baccharis pteronioides, Monnina ciliolata y Rumfordia floribunda presentan diámetros más bajos y menos dispersos. Además, Pinus devoniana, P. douglasiana y P. pseudostrobus concentran los valores de diámetros más altos entre las especies analizadas. En cuanto a las alturas, la mayoría de las especies registran valores inferiores a los 30 m (fig. 2b). Quercus calophylla se destaca por su variabilidad en la distribución de alturas, mientras que Baccharis pteronioides, Monnina ciliolata y Rumfordia floribunda presentan alturas significativamente menores y con menor dispersión.
La clasificación de las parcelas generó 4 grupos, mismos que se formaron para la clasificación de las especies. Cuando se presenta el resultado a través del dendrograma de sombras, se observó que algunas especies como Pinuspseudostrobus y P. devoniana se encuentran en los 4 grupos de parcelas, pero en general, hay coincidencia de grupos de especies con los grupos de parcelas. Abiesreligiosa, Rumfordiafloribunda, Monninaciliolata y Arbutusxalapensis presentaron sus mayores abundancias en la parcela P10 y P11, mientras que Quercusherrerae, Q. magnolifolia y Q. castanea tienen su mayor expresión en abundancias en las parcelas P01, P02, P07 y P08 (fig. 3).
En el espectro polínico del bosque se identificaron 41 taxones, pertenecientes a 31 familias y 40 géneros, que incluyen árboles, arbustos, herbáceas y helechos (material suplementario: tabla S3). Pinus se registró como el taxón dominante en el estrato arbóreo, con más de 60% del espectro polínico. De manera similar, los taxones de Quercus (< 20%) y Abies (< 15%) se encontraron en todo el espectro polínico con porcentajes considerables. En el estrato herbáceo, Poaceae se registró como la más abundante, se encontró en todas las muestras con un porcentaje superior a 5%. Los taxones de Eupatorium (> 5%) y Baccharis (> 5%) se registraron con porcentajes bajos en el componente herbáceo. Polypodiaceae prevaleció con un porcentaje mayor a 5%. No obstante, el grupo de los helechos no alcanzó una representación importante en el espectro polínico (fig. 4).
Figura 2. Diagramas que expresan los cuartiles de los diámetros y las alturas de las especies arbóreas del bosque de Pinus-Quercus-Abies.Figura 3. Dendrograma de sombras que incluye las parcelas CUM1-CUM14 y las especies que aportan al menos 5% en una o más parcelas. La escala de blanco a negro representa la abundancia transformada mediante doble raíz cuadrada. Los espacios en blanco indican ausencia de la especie en la parcela.Figura 4. Diagrama de porcentajes de polen moderno del bosque de Pinus-Quercus-Abies en La Cumbre de Guadalupe.
El índice de Davis revela que la mayoría de los taxones polínicos se adscriben al grupo de tipo asociado (TOR); los taxones de polen de Pinus, Quercus, Abies, Arbutusxalapensis, Baccharispteronioides y Rumfordiafloribunda, pertenecen al grupo de tipo asociado (TA), mientras que Monninaciliolata es el único que se encuentra en el tipo subrepresentado (TUR). Ningún taxón demostró ser fuertemente asociado (TFA) (tabla 2).
Tabla 1
Valores relativos para densidad (Dr), área basal (ABr) y frecuencia (Fr) en árboles del BPQA. Índice de valor de importancia (IVI) para árboles y arbustos.
Familias
Especies
Dr (%)
ABr (%)
Fr (%)
IVI (%)
Asteraceae
Baccharis pteronioides (Bacpte)
1.02
0.02
4.23
1.86
Rumfordia floribunda (Rumflo)
15.90
0.39
4.23
6.84
Ericaceae
Arbutus xalapensis (Axal)
0.76
4.12
4.05
8.94
Fabaceae
Vachellia farnesiana (Vacfar)
0.76
2.80
1.41
1.66
Fagaceae
Quercus calophylla (Quecal)
1.53
3.48
5.63
3.54
Quercus castanea (Quecas)
5.98
12.84
9.72
9.51
Quercus magnoliifolia (Quemag)
1.91
1.10
4.23
2.41
Quercus obtusata (Queobt)
5.60
6.65
8.45
6.9
Quercus scytophylla (Quescy)
0.89
0.34
1.41
0.87
Pinaceae
Abies jaliscana (Abijal)
14.89
12.97
12.16
13.33
Abies religiosa (Abirel)
7.38
2.13
4.23
4.58
Pinus devoniana (Pindev)
9.29
14.61
11.27
11.72
Pinus douglasiana (Pindou)
1.65
3.08
2.82
2.51
Pinus herrerae (Pinher)
5.47
11.45
8.45
8.46
Pinus oocarpa (Pinooc)
4.20
2.80
5.63
4.21
Pinus pseudostrobus (Pinpse)
22.14
21.19
11.27
19.19
Polygalaceae
Monnina ciliolata (Moncil)
0.64
0.02
1.41
0.69
El diagrama polínico del bosque fue dividido en 3 zonas palinológicas mediante un análisis de conglomerados (CONISS) (fig. 5). A lo largo de toda la secuencia del ensamble de polen fósil, se observó un patrón heterogéneo caracterizado por la oscilación de los taxones leñosos herbáceos y helechos. La primera zona palinológica (C-1) corresponde al periodo de 1,580-1,550 años cal AP y muestra una mayor abundancia de taxones leñosos como Alnus, Pinus y Quercus. En cuanto a los taxones herbáceos, los más abundantes fueron Asteraceae, Cyperaceae y Poaceae. La segunda zona (C-2) corresponde al periodo de 1,550-740 años cal AP, abarca el periodo más extenso, presenta un patrón similar al anterior, con la adición de taxones de Fabaceae y Rosaceae. La tercera zona (C-3a) corresponde al año 740-700 años cal AP, se observa un patrón divergente caracterizado por una disminución de Aspleniaceae y Bromeliaceae. En los últimos 700-100 años cal AP (zona C-3b) se aprecia un patrón heterogéneo con oscilaciones en los porcentajes de Pinus, Quercus y Alnus en el grupo de los taxones leñosos, así como en los de Asteraceae, Cyperaceae y Poaceae en el grupo de las herbáceas. En contraste, las esporas como Hymenophyllaceae, Polypodiaceae y Sphagnum disminuyen considerablemente sus porcentajes (fig. 5).
La diversidad de Hill para los conjuntos de polen moderno para el orden N0, indicó que la riqueza es de aproximadamente 16 taxones (con un intervalo de confianza de 95%). Para el orden N1 y N2 obtuvo valores de 3.79-4.76 y 2.4-2.9, respectivamente. Para el conjunto de polen fósil, N0 indicó que la riqueza es de alrededor de 34 taxones (con un intervalo de confianza de 95%), mientras que para N1 y N2 fueron de 14.4-15.8 y 9.4-10.5, respectivamente (figs. 4, 5).
La comparación entre los ensambles de polen moderno y la secuencia de polen fósil de La Cumbre de Guadalupe (fig. 6) mostró distancias cordales al cuadrado que variaron aproximadamente de 0.30 a 0.72. A lo largo de la cronosecuencia predominaron valores intermedios (≈ 0.45-0.60). Se identificaron mínimos locales de disimilitud (˂ 0.40) en intervalos temporales estrechos, destacando un pulso centrado alrededor de ~ 850 años cal AP. En contraste, se observaron franjas con mayor disimilitud (≥ 0.65) especialmente después de ~ 1,000 años cal AP y hacia los extremos de la secuencia. El mejor análogo moderno por nivel fósil rara vez presentó distancias ≤ 0.35 y no se registraron valores cercanos a 0; por lo tanto, no se detectaron análogos modernos muy cercanos para los niveles analizados.
Discusión
El análisis de la vegetación actual en la sierra de Cacoma, Jalisco, muestra que la composición florística está dominada por especies de Pinus–Quercus-Abies como los elementos estructurales más importantes según el IVI. Estos resultados coinciden con estudios previos que han identificado a estos taxones como dominantes en los bosques templados del occidente de México (Cuevas-Guzmán et al., 2011; Guerrero-Hernández et al., 2014, 2019). La estructura diamétrica de la comunidad sugiere una comunidad vegetal joven, con la mayoría de los individuos de diámetros menores de 60 cm, lo que coincide con patrones observados en otras regiones montañosas donde la explotación selectiva ha modificado la distribución diamétrica de las especies arbóreas (Guerrero-Hernández et al., 2022).
Tabla 2
Índice de Davis. La columna de taxones muestra el nombre científico de las especies. (A) significa la asociación, (O) sobrerrepresentación y (U) subrepresentación de los taxones registrados en los ensambles polínicos, basados en datos de presencia/ausencia, tanto de lluvia de polen como de la vegetación del BPQA. Los índices de asociación se clasificaron en: TFA = tipos fuertemente asociados, TA = tipos asociados, TDA = tipos débilmente asociados, TOR = tipos sobrerrepresentados, TUR = tipos subrepresentados y TNA = tipos no asociados.
Taxones
A
O
U
Tipo
Pinus
0.50
0.33
0.33
TA
Quercus
0.50
0.33
0.33
TA
Abies
0.50
0.35
0.32
TA
Alnus acuminata
0.50
0.50
0.00
TOR
Alnus jorullensis
0.50
0.50
0.00
TOR
Arbutus xalapensis
0.50
0.40
0.25
TA
Cestrum
0.50
0.50
0.00
TOR
Cornus disciflora
0.50
0.50
0.00
TOR
Eugenia
0.50
0.50
0.00
TOR
Ficus
0.50
0.50
0.00
TOR
Fraxinus uhdei
0.50
0.50
0.00
TOR
Juglans major
0.50
0.50
0.00
TOR
Magnolia pacifica
0.50
0.50
0.00
TOR
Ostrya-carpinus
0.50
0.50
0.00
TOR
Ternstroemia lineata
0.50
0.50
0.00
TOR
Tilia mexicana
0.50
0.50
0.00
TOR
Zinowiewia concinna
0.00
0.00
0.00
–
Cupressaceae
0.00
0.00
0.00
–
Vachellia farnesiana
0.50
0.50
0.00
TOR
Baccharis pteronioides
0.50
0.38
0.27
TA
Rumfordia floribunda
0.50
0.25
0.40
TA
Monnina ciliolata
0.50
0.00
0.50
TUR
El análisis del dendrograma de sombras identificó 4 grupos de especies y 4 de parcelas, evidenciando patrones de distribución diferenciados dentro del paisaje forestal. La estructura de los grupos sugiere coexistencia mediada por diferencias fisiológicas y ambientales. El género Pinus domina en la mayoría de los conjuntos en congruencia con su especialización en hábitats de fertilidad baja a moderada y en condiciones abiertas impuestas por aridez, frío o disturbio, así como con historias evolutivas asociadas con altas frecuencias de perturbación, en particular el fuego (Keeley y Zedler, 1998). En contraste, Quercus y Abies conforman subgrupos bien definidos que reflejan preferencias por microambientes más fríos y húmedos (Cuevas-Guzmán et al., 2011; Guerrero-Hernández et al., 2022). La alta similitud florística entre algunas parcelas sugiere que existen factores ambientales y de manejo forestal que han promovido la homogeneización de la vegetación en ciertas áreas, fenómeno que ha sido documentado en otros estudios de dinámica de bosques templados mexicanos (Guerrero-Hernández et al., 2019).
La composición del ensamble polínico moderno refleja la estructura y composición del bosque montano dominado por Pinus–Quercus–Abies. La alta representación de Pinus en el espectro polínico (> 60%) es consistente con estudios previos que han demostrado su alta producción polínica y dispersión anemófila en ecosistemas templados (Castro-López et al., 2020), y coinciden con estudios de lluvia polínica en bosques del occidente y centro de México (Figueroa-Rangel et al., 2016; Lozano-García et al., 2014), los cuales reportan estos elementos con porcentajes superiores a 40% en Pinus y Quercus, mientras que Abies oscila entre 10 y 20%. Estos resultados se explican por los mecanismos de dispersión anemófila y por la gran cantidad de granos de polen que producen (Faegri e Iversen, 1989). La presencia de Quercus y Abies con valores inferiores a Pinus, pero aún representativos (< 20% y < 15%, respectivamente), coincide con su menor producción polínica y las características de dispersión de estos géneros, factores que afectan su representatividad en los registros polínicos modernos (Rodríguez-Pérez et al., 2025).
Figura 5. Diagrama de polen fósil del núcleo de sedimento CUM-N2 representando ~ 1,580 años de tasas de acumulación de especies del bosque de Pinus-Quercus-Abies. Se muestra la división de 3 zonas palinológicas mediante CONISS. La franja de color gris claro corresponde la Pequeña Edad de Hielo (PEH). La franja de color gris oscuro representa la Anomalía Climática Medieval (ACM). La escala muestra la profundidad en centímetros y la edad del sedimento en años calibrados antes del presente (años cal AP) (modificado de del Castillo-Batista et al., 2018).Figura 6. Índices de disimilitud de la distancia cordal en la secuencia de polen fósil y moderno a lo largo de ~ 1,580 años. La edad del sedimento en años calibrados antes del presente (años cal AP).
En cuanto a la vegetación herbácea, el predominio de Poaceae (> 5%) indica su importancia en los espacios abiertos del bosque y su alta eficiencia en la producción y dispersión del polen (Hjelle, 1998). La baja representación de Eupatorium y Baccharis (< 5%) sugiere que estas especies, aunque presentes en la vegetación actual, tienen una menor contribución al espectro polínico debido a sus estrategias reproductivas y mecanismos de dispersión, como la entomofilia (Faegri e Iversen, 1989). De manera similar, las esporas de Polypodiaceae, aunque registradas con valores > 5%, no alcanzaron una representación dominante en el espectro polínico, lo que puede atribuirse a que a medida que aumenta la altitud, la representación del polen de la vegetación herbácea disminuye (Markgraf, 1980).
El análisis de representación polínica a través del índice de Davis confirma que los taxones dominantes en el bosque se encuentran principalmente en el grupo de tipo asociado (TA), lo que sugiere una correspondencia adecuada entre la vegetación y el espectro polínico. El predominio del grupo sobrerrepresentado (TOR) para la mayoría de los taxones indica que ciertos elementos del bosque reproducen y dispersan polen en proporciones superiores a su biomasa real en el ecosistema (Jackson y Overpek, 2000). Monnina ciliolata, identificado como tipo subrepresentado (TUR), refleja una producción polínica baja por sus mecanismos de dispersión especializados, lo que puede dificultar su identificación en registros fósiles (Faegri, 1966). La ausencia de taxones en el grupo fuertemente asociado (TFA) sugiere que ningún elemento arbóreo o herbáceo presenta una correspondencia entre su presencia en el bosque y su representación polínica. Este patrón puede explicarse por síndromes de polinización especializados, bajas abundancias locales (León-Carreño et al., 2019) una estructura poblacional dominada por individuos juveniles con pocos adultos reproductivos, como sugiere la distribución de diámetros y alturas (fig. 2).
El ensamble polínico fósil refleja la dinámica de la vegetación durante los últimos ~ 1,580 años, que evidencia cambios en la composición florística asociados a variaciones climáticas y potenciales impactos antrópicos. El diagrama polínico muestra 3 zonas diferenciadas, que sugiere una transición en la estructura del bosque, desde una composición dominada por taxones leñosos hasta un escenario más heterogéneo en los últimos siglos. En la primera zona palinológica (C-1), la dominancia de Alnus, Pinus y Quercus sugiere la prevalencia de un bosque templado de montaña con condiciones húmedas, lo que concuerda con estudios previos en la región del occidente de México (Figueroa-Rangel et al., 2016, 2020). La alta representación de Asteraceae, Cyperaceae y Poaceae indica la presencia de claros en el dosel forestal y espacios abiertos con vegetación herbácea.
Durante la segunda fase, que abarca el periodo más extenso (zona C-2), se mantiene la estructura del bosque, pero con la incorporación de taxones como Fabaceae y Rosaceae, lo que podría indicar una diversificación de la vegetación secundaria y la posibilidad de fluctuaciones climáticas que favorecieron la heterogeneidad del ecosistema (Arellano, 2024). La estabilidad relativa de los elementos leñosos indica que, bajo condiciones climáticas favorables que sostienen la cobertura forestal, el bosque mantiene su estructura y composición con cambios mínimos, evidenciando una alta capacidad de persistencia frente a posibles perturbaciones de baja a moderada intensidad.
El cambio más significativo ocurre en la tercera zona (C-3a), donde se observa una disminución de Aspleniaceae y Bromeliaceae, lo que podría estar vinculado a un enfriamiento o a una reducción en la humedad ambiental, en concordancia con el evento de la Pequeña Edad de Hielo documentado en bosques de alta montaña del occidente de México (Figueroa-Rangel et al., 2019, 2020). Posteriormente, en los últimos 700 años (zona C-3b), la heterogeneidad en las oscilaciones de Pinus, Quercus y Abies sugiere periodos de regeneración y disturbio en el bosque, posiblemente por influencia de actividad humana (del Castillo et al., 2018). La disminución de Cyperaceae, Hymenophyllaceae, Polypodiaceae y Sphagnum podría estar relacionada con una menor disponibilidad de ambientes húmedos o la alteración de los suelos debido a disturbios naturales o inducidos.
El análisis polínico moderno confirma la composición arbórea identificada en campo, con la dominancia de Pinus, Quercus y Abies. Sin embargo, la diversidad de Hill indica una riqueza relativamente baja en el polen moderno (N0 = 16, fig. 4) en comparación con el registro fósil (N0 = 34, fig. 5), lo que sugiere una composición más diversa de la vegetación en el pasado. Esta diferencia podría atribuirse a la dispersión diferencial del polen, a sesgos tafonómicos en la preservación en el sedimento y a la representatividad desigual de ciertos taxones en el espectro polínico (Birks et al., 2011; Xiao et al., 2016). Estudios similares han reportado una disminución de la diversidad arbórea en el Holoceno tardío en otras zonas templadas y tropicales de México, vinculada a eventos de cambio climático y actividades antrópicas (Lozano-García et al., 2021; Ortega-Rosas et al., 2008).
El análisis de los ensambles polínicos modernos y fósiles revela patrones temporales de similitud y disimilitud que sugieren cambios en la composición y estructura de la vegetación a lo largo de los últimos ~ 1,580 años. La mayor similitud entre los registros modernos y fósiles se presenta entre ~ 850 y 400 años cal AP, lo que es congruente con lo reportado en la sierra de Manantlán alrededor de ~ 850 años cal AP, caracterizado por la disminución de Pinus y el aumento de Quercus y Alnus, lo que pareciera una contracción del bosque dominado por Pinus y la expansión relativa de latifoliadas (Figueroa-Rangel et al., 2016). Este intervalo coincide con la Anomalía Climática Medieval (ACM) (800-1200 d.C.), caracterizada regionalmente por condiciones más cálidas y en diversos registros, mayor aridez estacional congruentes con otras secuencias polínicas del occidente y centro de México (Lachniet et al., 2012; Metcalfe et al., 2010), donde Quercus y Alnus se han propuesto como taxones indicadores de sequía (Lozano-García et al., 2021).
La similitud observada hacia ~ 400 años cal AP se acompaña de una expansión relativa de Poaceae y Asteraceae, familias típicamente pioneras y asociadas a ambientes abiertos o recientemente perturbados. Este intervalo coincide con la Pequeña Edad de Hielo (LIA) (1300 y 1850 d.C.), un periodo más frío que el actual que pudo reducir la productividad del bosque, favoreciendo claros y paisajes abiertos propicios para el establecimiento de pastizales (Bradley y Jones, 1993; Mann et al., 2009). Adicionalmente, las perturbaciones antrópicas de los últimos siglos (cambios de uso de suelo, tala y fuego) posiblemente reforzaron esa apertura del paisaje, lo que incrementó la representación polínica de Poaceae y Asteraceae (Lozano-García et al., 2021).
Por otro lado, los periodos de mayor disimilitud identificados hace ~ 1,500, 1,000 y 300 años cal AP, sugieren episodios de cambio ambiental y posibles alteraciones en la vegetación local. Estos periodos de disimilitud se relacionan estrechamente con las 3 zonas identificadas previamente mediante CONISS. La disimilitud hace ~ 1,500 años cal AP coincide con la transición entre las zonas más antiguas de la secuencia, caracterizada por una menor representación de Pinus y un mayor aporte de taxones leñosos y herbáceos indicativos de condiciones más húmedas, lo que significa mayor heterogeneidad ambiental y cambios en la dinámica del bosque (Lachniet et al., 2012). Asimismo, la disimilitud hace ~ 1,000 años cal AP se asocia con un incremento de Abies y una reducción de taxones de ambientes abiertos, lo cual lleva a una reorganización en la composición del bosque, posiblemente asociada a variaciones climáticas durante la Anomalía Climática Medieval; estos episodios han sido relacionados con fluctuaciones de humedad y temperatura que afectaron la distribución de especies arbóreas (Figueroa-Rangel et al., 2016; Metcalfe et al., 2010). En el intervalo más reciente, aproximadamente los últimos 300 años cal AP, se observa un aumento de la disimilitud que marca la transición hacia una señal polínica moderna claramente diferenciada de los ensambles fósiles. Esta modificación puede estar asociada, por un lado, con la variabilidad climática vinculada a la Pequeña Edad de Hielo y por otro lado, con cambios de origen antropogénico posteriores a la colonización española, que implicaron modificaciones del uso del suelo y una mayor presión sobre los ecosistemas como los incendios y procesos de deforestación, que alteraron la estructura y composición del bosque y generaron ensambles polínicos distintos respecto de las condiciones previas (Lozano-García et al., 2021). Estos hallazgos resaltan la interconexión entre los procesos ecológicos y climáticos en la configuración de los ecosistemas forestales, y proporcionan evidencia sobre la sensibilidad de estos ecosistemas a los cambios ambientales pasados.
El análisis de los ensambles polínicos modernos y fósiles en la sierra de Cacoma, Jalisco en particular en la Cumbre de Guadalupe, ha permitido reconstruir la dinámica de la vegetación durante los últimos ~ 1,580 años, que evidencian cambios en la composición y estructura del bosque en respuesta a factores climáticos y antrópicos. Los resultados mostraron que la vegetación actual está dominada por Pinuspseudostrobus y Abies jaliscana, los elementos estructurales más relevantes. Esta composición coincide con la representación polínica moderna, donde Pinus–Quercus–Abies fueron los taxones dominantes, lo que refleja la relación entre el ensamble polínico y la estructura del bosque. Sin embargo, el registro polínico fósil indica que la vegetación del pasado presentaba una mayor diversidad de especies, lo que sugiere una mayor heterogeneidad de la vegetación en el pasado. La disminución de la diversidad efectiva en los últimos siglos podría estar relacionada con el impacto de eventos climáticos, como la Pequeña Edad de Hielo (~ 850-400 AP), así como la influencia de actividades antrópicas, como el cambio en el uso de suelo, los incendios y la explotación forestal.
El análisis de disimilitud entre ensambles de polen moderno y fósil identificó intervalos de mayor similitud estructural del bosque (~ 850 y 400 cal AP), intercalados con episodios de cambio (~ 1,500, ~ 1,000 y ~ 300 cal AP). Estos periodos coinciden con transiciones climáticas del Holoceno tardío, incluida la Anomalía Climática Medieval y la Pequeña Edad de Hielo, que modularon la composición de las comunidades vegetales. Asimismo, la evidencia indica que en los últimos siglos, la actividad humana (incendios, deforestación) ha alterado la estructura forestal y ha favorecido la homogeneización de la vegetación en algunas zonas.
Los hallazgos señalan la relevancia del análisis palinológico en la reconstrucción de la historia ambiental y ecológica de los bosques montanos del occidente de México. Futuros estudios podrían integrar un análisis multiproxy, como datos isotópicos y modelado climático, para mejorar la resolución temporal de los cambios en la vegetación y su relación con la variabilidad climática. Asimismo, se podrían desarrollar análisis de correspondencia entre los conjuntos de polen moderno y la vegetación actual para identificar los factores que explican la ausencia de ciertos taxones esperados, a pesar de la evidencia que indica una correspondencia entre la composición de polen local y la vegetación del bosque.
Agradecimientos
Agradecemos el apoyo financiero de los proyectos Conahcyt CB-2008-106435 y UDG-PTC-1403. Asimismo, agradecemos al Laboratorio de Paleoecología y Cambio Climático del Departamento de Ecología y Recursos Naturales del Centro Universitario de la Costa Sur, Universidad de Guadalajara, y al Laboratorio de Paleoecología, Paleoclimatología y Cambio Climático del Departamento de Dinámica Superficial del Instituto de Geología, UNAM, por las facilidades, el apoyo logístico y la infraestructura brindados para el desarrollo del estudio. El acceso a la zona de estudio fue brindado por los habitantes de la comunidad de la Cumbre de Guadalupe. También expresamos nuestro reconocimiento a quienes colaboraron en el trabajo de campo, así como a Carlos Armando Pacheco Contreras por la elaboración del mapa y el trabajo de campo. Finalmente, agradecemos a los revisores anónimos por sus observaciones y sugerencias que contribuyeron a mejorar este trabajo.
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c Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Ciencias, Departamento de Biología Evolutiva, Museo de Zoología Alfonso L. Herrera, Circuito Exterior s/n, Ciudad Universitaria, Coyoacán, 04510 Ciudad de México, México
* Autor para correspondencia: nxitl00@gmail.com (U. López-Mora)
Recibido: 30 julio 2025; aceptado: 04 octubre 2025
Resumen
Pseudosermyle es el género de insectos palo con mayor riqueza en América del Norte; muestra una distribución desde el sur de los EUA hasta América Central, desafortunadamente ha sido poco estudiado. En el presente trabajo se realiza la primera aproximación en extenso a la morfología del huevo en Pseudosermyle respecto a su microestructura, con el empleo de microscopía electrónica de barrido (MEB), así como el análisis de componentes principales para determinar la utilidad de las medidas estandarizadas que se utilizan en la descripción de huevos, además de su ornamentación. Se encontraron 4 patrones en el huevo de Pseudosermyle, entre los que se incluyen 3 tipos de oviposición: liberación, adheridos al sustrato y formación de ooteca. Esto sugiere que podría tratarse de géneros distintos bajo una posible subtribu. Además, la ornamentación del huevo es lo suficientemente distinta para reconocer diferentes especies. Por lo tanto, se debe analizar la importancia de estos caracteres en la descripción de especies de Pseudosermyle.
Pseudosermyle is the genus of stick insects with the greatest diversity in North America, with a range extending from the southern USA to Central America; unfortunately, it has been poorly studied. In this work, we present the first comprehensive analysis of the egg morphology in Pseudosermyle in relation to ultrastructure, using scanning electron microscopy, along with principal component analysis to evaluate the effectiveness of the standardized measurements used in the egg descriptions, as well as the ornamentation. We identified 4 general patterns in Pseudosermyle eggs corresponding to 3 different oviposition techniques: dropping, attaching to substrate and forming oothecae. These patterns suggest the possibility of recognizing different genera within a putative subtribe. Additionally, the ornamentation is sufficiently distinct to differentiate among species. Thus, we emphasize the importance of these characters in the description of species of Pseudosermyle.
El orden Phasmatodea comprende organismos denominados insectos palo, hoja o corteza. Por lo general se reconocen por su cuerpo alargado y cilíndrico o deprimido; es menos frecuente encontrar formas más robustas (Bradler y Buckley, 2018). Su coloración varía en distintos matices del castaño al verde, aunque existen algunos con coloraciones aposemáticas (rojo, amarillo o azul). En la etapa adulta ninguno de estos insectos mide menos de 2 cm de longitud (Seiler et al., 2006). Una característica notoria es su cripsis con la vegetación, que en conjunto con comportamientos especializados, como la catalepsia e imitación del balanceo de las hojas y el follaje durante el día (Bradler y Buckley, 2018), les permiten pasar inadvertidos frente a sus depredadores. Sus huevos se asemejan a semillas de las plantas donde habitan (Severin, 1910).
La ootaxonomía de Phasmatodea se estandarizó con los trabajos de Clark (1976a, b, 1979) y Sellick (1994, 1997a, b, 1998). A partir de entonces, el huevo se ha incluido en las descripciones de sus especies (Allred et al., 1986; Conle et al., 2007; López-Mora y Llorente-Bousquets, 2023) y también se han efectuado trabajos utilizando el microscopio electrónico de barrido (MEB) para el análisis de las microestructuras y la textura de la cápsula en especies pertenecientes a los géneros Agathemera Stål, 1875, Anisomorpha Gray, 1835, Bacillus Berthold, 1827, Burria Brunner von Wattenwyl, 1900, Carausius Stål, 1875, Clonopsis Pantel, 1915, Heteronemia Gray, 1835, Lonchodes Gray, 1835, Megaphasma Caudell, 1903, Orxines Stål, 1875, Paraprisopus Redtenbacher, 1906, Ramulus Saussure, 1862, Sipyloidea Brunner von Wattenwyl, 1893, Timema Scudder, 1895 y Xeropsis Redtenbacher, 1906 (Allred et al., 1986; Camousseight y Bustamante, 1991; Jintsuet al., 2010; Mazzini y Scali, 1977, 1980, 1983; Mazzini et al., 1982, 1984, 1992; Scali y Mazzini, 1977, 1981, 1982, 1983; Stark y Lentz, 1986). En particular, la textura de la cápsula y la ornamentación del opérculo han resultado ser muy útiles en la diferenciación de especies cercanamente relacionadas (Mazzini et al., 1982, 1992; Scali y Mazzini, 1981), incluso para diferenciar híbridos (Mazzini et al., 1984). En suma, los trabajos previos han concluido en la importancia de los estudios con MEB y microscopia óptica para la diferenciación entre especies cercanamente relacionadas en Phasmatodea y posibles híbridos.
Pseudosermyle Caudell, 1903 es el género más diverso en México y América del Norte, con 26 especies en total (de Luna, 2022; López-Mora y Llorente-Bousquets, 2018). Sin embargo, solo se conocen 4 ilustraciones, que no son de microestructura del huevo, para 3 especies: Pseudosermyle tridens (Burmeister, 1838), ilustrada por Kaup (1871) y Zompro (2001); P. truncata Caudell, 1903, por Caudell (1914) y P. phalangiphora Conle, Hennemann et Fontana, 2007, por ellos mismos. Al observar las imágenes de estas 3 especies se advierten diferencias significativas en las formas de la cápsula y la lámina micropilar, que no han sido evaluadas en su microestructura y son relevantes para distinguir especies.
Nuestro objetivo fue realizar una exploración más extensa sobre la morfología coriónica a nivel de microestructura utilizando MEB, incorporando 11 especies más de Pseudosermyle, así como analizar su empleo a nivel genérico y específico al reconocer jerarquías entre los caracteres que se utilizan para describir a las especies.
Materiales y métodos
Los acrónimos y abreviaturas de las colecciones son: CNIN = Colección Nacional de Insectos, Instituto de Biología, UNAM; MZFC = Museo de Zoología Alfonso L. Herrera, Facultad de Ciencias, UNAM. Estructuras coriónicas: H = altitud de la cápsula; L = longitud de la cápsula; mpi = lámina micropilar interna; mpl = longitud de la lámina micropilar; mpw = amplitud de la lámina micropilar, NM = lámina micropilar interna abierta con línea media; oph = altura del opérculo, opw = amplitud del opérculo; PO = lámina micropilar interna paralela sin línea media; W = amplitud de cápsula; %h/l = índice de elongación, %w/h = índice de compresión.
Se recolectaron 44 machos y 61 hembras en distintas localidades (fig. 1, tabla 1) y se depositaron en la CNIN y MZFC (tabla 2), Nooxapty isabelae se revisó de los ejemplares tipos depositados en las colecciones por López-Mora y Llorente-Bousquets (2023) (tabla 2). Los ejemplares que se obtuvieron de crianza aún no se depositan en colección alguna, pues se están utilizando para otro tipo de estudios. Los puntos de recolecta se muestran en un mapa (fig. 1) obtenido con QGIS 3.8.1-Zanzibar (QGIS, 2019). Para obtener los huevos, se seleccionaron 22 hembras de distintas especies (tabla 3), el número de hembra varió entre las especies pues algunas no sobrevivieron al traslado, se mantuvieron en cautiverio y aisladas entre sí (dentro de diferentes contenedores) con las siguientes condiciones: temperatura de 20-22 °C, humedad relativa 60-80%, alimentación con base en Galinsoga sp. (Asteraceae) que se colocó en frascos con agua. Estuvieron bajo ciclos de luz y oscuridad correspondientes a los presentados en la CDMX durante el lapso que estuvieron cautivas; se intentaron replicar las condiciones de temperatura y humedad tomadas en campo con un termohigrómetro digital PEAKMETER PM6508. Los organismos se identificaron comparando la morfología de adultos (machos y hembras) y el tipo de oviposición, en particular con las fotografías e ilustraciones de Brock et al. (2019), estos datos fueron cualitativos y no se incluyeron en el análisis de componentes principales (PCA). Para Nooxaptyisabelae López-Mora et Llorente-Bousquets, 2023 se examinaron los huevos de la serie tipo y se usó como grupo externo. Se observaron y midieron en total 255 huevos de 22 hembras de 12 especies (tabla 3) bajo un microscopio Olympus SZX12, con ocular de reglilla micrométrica y un objetivo Olympus DF PL 1.5 X-4. Se efectuaron las mediciones de los huevos acorde con Sellick (1997b); los datos se presentan en las tablas 4-9 y en las diagnosis se expresan las cifras bajo los siguientes parámetros estadísticos: n = tamaño de la muestra, promedio ± desviación estándar (valor mínimo-valor máximo) en las descripciones.
Tabla 1
Localidades de recolecta de las distintas especies de insectos palo, el orden es alfabético por estado.
Localidad
Longitud
Latitud
Especies
REPSA, Coyoacán, Ciudad de México, México
19.317634
-99.184854
Pseudosermyle sp. 2
Arriba cueva, Valle de Bravo, Estado de México
19.09248
-100.07218
Pseudosermyle sp. 1
Bajo mesa, Valle de Bravo, Estado de México, México
19.0861
-100.07665
Pseudosermyle carinulata
Villa Esmeralda, Silao, Guanajuato, México
20.95367
-101.43361
Pseudosermyle sp. 4
EBCH, La Huerta, Jalisco, México
19.49931
-105.04484
Pseudosermyle sp. 3
Cruz Verde, Ayala, Morelos, México
18.760174
-98.976098
Pseudosermyle tridens
Curva Choápam-Latani, Santiago Choápam, Oaxaca, México
17.377754
-95.916254
Pseudosermyle sp. 6
Curva 1 Amatepec-Chinantequilla, Totontepec Villa de Morelos, Oaxaca, México
17.28485
-95.988362
Nooxapty isabelae
Camino a Tzinacapan, Cuetzalan, Puebla, México
20.016558
-97.53983
Pseudosermyle striatusPsudosermyle sp. 5
EBTLT, San Andrés Tuxtla, Veracruz, México
18.5860833
-95.0755
Pseudosermyle phalangiphoraPseudosermyle procera
Tabla 2
Organismos revisados y depositados en las colecciones por especie, sexo y huevos indicando el voucher. Para Nooxapty isabelae se indican los ejemplares revisados. En Núm. de especímenes se separan los ejemplares depositados y revisados (primera cifra) de los revisados (segunda cifra) por un símbolo de más “+”.
Especie
CNIN
MZFC
Machos
Hembras
Huevos
Machos
Hembras
Huevos
Pseudosermyle sp. 1
PHMX351-354, 356-358
PHMX26
PHMX125
PHMX349-350, 355, 426
Tabla 2. Continúa
Especie
CNIN
MZFC
Machos
Hembras
Huevos
Machos
Hembras
Huevos
Pseudosermyle sp. 2
PHMX307-308, 311, 314-322
PHMX72-75, 78-79
PHMX76-77, 80
PHMX304-306, 309-310, 312-313
Pseudosermyle sp. 3
PHMX467-468
PHMX469-471
PHMX324, 327-328
PHMX323, 325-326
P. tridens
PHMX678
PHMX679-680
PHMX332-337, 341, 343-348, 616-618
PHMX329-331, 338-340, 342
Pseudosermyle sp. 4
PHMX91, 93
PHMX94-100
PHMX362-365, 367-373, 423-425
PHMX54-56, 90, 92
PHMX57-62
PHMX359-361, 366
P. carinulata
PHMX160-163
PHMX164-165, 168, 653
PHMX420-421
PHMX416-419, 422
P. striata
PHMX81-85
PHMX86-89
PHMX262-270, 272-273, 277-288, 292-300, 302-303
PHMX463
PHMX462, PHMX464-465
PHMX259-261, 271, 274-276, 289-291, 301
Pseudosermyle sp. 5
PHMX27
PHMX378-388
PHMX1-2, 11-12
PHMX4-6, 13
PHMX374-377
P. phalangiphora
PHMX101-102, 135, 148, 155
PHMX103-107, 146-147, 149
PHMX172-183, 188-198, 203-213
PHMX169-171, 184-187, 199-202
P. procera
PHMX108-110, 136-137, 151, 156-157
PHMX111-114, 150, 152-154,
PHMX217-228, 232-243, 248-258
PHMX214-216, 229-231, 244-247
Pseudosermyle sp. 6
PHMX681
PHMX405-415
PHMX401-404
Nooxapty isabelae
PHMX117, 119
PHMX115
PHMX389-393, 399-400
PHMX118
PHMX116
PHMX394-398
Núm. especímenes
27+2
38+1
179+7
17+1
23+1
70+5
Tabla 3
Especies de Phasmatodea revisadas, número de hembras por especie tentativamente bajo el género Pseudosermyle y número de huevos por hembra revisados.
Especies de Phasmatodea revisadas
Clave
Huevos por hembra
Nombre
Clave de ♀
Núm. de ♀
Pseudosermyle sp. 1
PtgVB
U
1
11
Pseudosermyle sp. 2
PtgDF
G1 G2
1 2
5 14
Pseudosermyle sp. 3
Pch
F1 F2
1 2
3 3
P. tridens
PtrMor
T1 T2
1 2
10 10
Tabla 3. Continúa
Especies de Phasmatodea revisadas
Clave
Huevos por hembra
Nombre
Clave de ♀
Núm. de ♀
Pseudosermyle sp. 4
PtrGto
U
1
15
P. carinulata
Pca
C1 C2
1 2
5 2
P. striata
Pst
S1 S2 S3
1 2 3
15 15 15
Pseudosermyle sp. 5
PspF
U
1
15
P. phalangiphora
Pph
H1 H2 H3
1 2 3
15 15 15
P. procera
Ppr
P1 P2 P3
1 2 3
15 15 15
Pseudosermyle sp. 6
Poax
U
1
15
N. isabelae
Nisa
U
1
12
Total: 12 spp.
—
—
22
255
Figura 1. Sitios de recolecta en México de las especies analizadas.
Para asociar machos con hembras que no se encontraban en cópula en el campo, se realizaron los siguientes pasos: a) se observaron los machos con los cuales copulaban las hembras en cautiverio; b) se separaron los huevos por morfología y hembra; c) éstos se incubaron por separado; d) cuando eclosionaron, las ninfas se mantuvieron en terrarios separados; e) se obtuvieron adultos y se comparó la morfología con la presentada por los parentales; f) cuando se obtienen machos y hembras de la misma hembra se corrobora si la morfología que presentan es similar a la de los parentales y se deduce qué machos parentales coinciden; g) se observa que los machos copulen con las hembras correspondientes con la morfología materna; y h) se compara la morfología coriónica de los huevos de las hembras hijas con las parentales para corroborar la correspondencia. Estos pasos permiten discernir cuando hay especies del mismo género que se encuentran en el mismo sitio, o cuando desconocemos la correspondencia entre sexos en los insectos palo de una localidad.
Se tomaron micrografías con una cámara de 8MP LEICA DFC490 adaptada a un microscopio LEICA Z16 AP0A y obtenidas con Leica Application Suite. Éstas se procesaron con GIMP 2.8.22 (GNU). Se llevaron a cabo observaciones bajo el MEB, los huevos se procesaron modificando el método de Nieves-Uribe et al. (2021) de la siguiente manera: serie descendente de etanol, 10 min en cada uno (96% → 70% → 50% → 30% → 10%) → H2O destilada (10 min) → jabón biológico (agitación manual constante) → Sonicar por 10 seg en 2 lapsos de 5 seg (con un sonicador modelo: Bronson 200) → enjuagar en agua destilada → agua destilada (10 min) → serie ascendente de etanol, 10 min en cada uno (10% → 30% → 50% → 70% → 96%) → dejar evaporar el alcohol (30 min. aprox.) → montar la muestra → dejar secar por 2 días en un recipiente hermético con una bolsita de silica gel (2 días). Las muestras se cubrieron en la ionizadora 19Quorum 150R ES en 2 ciclos de 20 min cada uno y se observaron bajo un microscopio Hitachi SU3500. Las abreviaturas en las medidas del huevo siguen la nomenclatura de Sellick (1997b, c, 1998). Las estructuras descritas y propuestas para el huevo se ilustran en la figura 2. Se siguió la nomenclatura de texturas de Harris (1979) para las descripciones de microestructura, en este caso solo se midieron las estructuras de 1 huevo por especie por el costo elevado de la técnica; éste corresponde con el huevo ilustrado en las micrografías obtenidas con el microscopio estereoscópico Leica. Es importante señalar que el nivel de detalle que obtuvimos permite documentar que las estructuras (v. gr. arrugas, espinas, gránulos) presentan textura, que se describe en ocasiones con frases que parecen contradictorias (v. gr. arrugas lisas, gránulos con espinas), pero se acompañan de imágenes.
Figura 2. Partes de un huevo sin capítulo de Phasmatodea adaptado de Clark (1978) a las especies de Pseudosermyle. A, P. striata vista dorsal; B, P. procera vista lateral. El relieve micropilar solo está presente en P. procera y se observa de una vista lateral. El tubérculo micropilar es apreciable en vista dorsal. La línea media solo la presenta P. striata; en ocasiones es apreciable en vista lateral.
Tabla 4
Medidas en micras (μm) de cada huevo de P. phalangiphora utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PphH1-1
2,774
1,752
1,971
876
474.5
1,423.5
1,131.5
PphH1-2
2,737.5
1,752
1,898
912.5
474.5
1,350.5
1,058.5
PphH1-3
2,664.5
1,533
1,788.5
912.5
511
1,350.5
1,095
PphH1-4
2,701
1,715.5
1,898
876
474.5
1,460
1,131.5
PphH1-5
2,628
1,679
1,861.5
949
511
1,460
1,095
PphH1-6
2,847
1,715.5
1,898
766.5
511
1,460
1,204.5
PphH1-7
2,737.5
1,679
1,861.5
766.5
511
1,496.5
1,095
PphH1-8
2,847
1,788.5
1,861.5
912.5
438
1,423.5
1,168
PphH1-9
2,774
1,642.5
1,861.5
803
511
1,460
1,204.5
PphH1-10
2,774
1,679
1,861.5
876
547.5
1,350.5
1,095
PphH1-11
2,810.5
1,679
1,934.5
839.5
438
1,460
1,168
PphH1-12
2,847
1,752
1,861.5
803
474.5
1,460
1,168
PphH1-13
2,737.5
1,715.5
1,861.5
766.5
474.5
1,460
1,131.5
PphH1-14
2,664.5
1,642.5
1,861.5
839.5
474.5
1,387
1,058.5
PphH1-15
2,920
1,788.5
1,934.5
912.5
511
1,496.5
1,168
PphH2-1
2,372.5
1,387
1,496.5
839.5
474.5
1,350.5
1,058.5
PphH2-2
2,555
1,679
1,752
803
438
1,715.5
1,387
PphH2-3
2,555
1,569.5
1,642.5
912.5
438
1,533
1,314
PphH2-4
2,591.5
1,898
1,861.5
766.5
438
1,752
1,387
PphH2-5
2,555
1,606
1,825
766.5
401.5
1,606
1,277.5
PphH2-6
2,591.5
1,606
1,825
766.5
438
1,642.5
1,387
PphH2-7
2,664.5
1,642.5
1,825
766.5
438
1,642.5
1,387
PphH2-8
2,555
1,679
1,861.5
803
438
1,642.5
1,277.5
PphH2-9
2,591.5
1,642.5
1,825
949
547.5
1,606
1,241
PphH2-10
2,628
1,642.5
1,788.5
693.5
438
1,533
1,314
PphH2-11
2,628
1,496.5
1,679
839.5
511
1,460
1,168
PphH2-12
2,591.5
1,606
1,752
839.5
438
1,606
1,314
PphH2-13
2,591.5
1,496.5
1,715.5
839.5
401.5
1,460
1,277.5
PphH2-14
2,591.5
1,679
1,788.5
730
438
1,423.5
1,350.5
PphH2-15
2,664.5
1,715.5
2,007.5
912.5
438
1,715.5
1,423.5
PphH3-1
2,774
1,642.5
1,898
803
474.5
1,387
1,095
PphH3-2
2,664.5
1,642.5
1,825
803
474.5
1,387
1,095
PphH3-3
2,664.5
1,642.5
1,788.5
839.5
511
1,314
1,058.5
PphH3-4
2,737.5
1,642.5
1,825
766.5
547.5
1,387
1,095
PphH3-5
2,628
1,679
1,788.5
803
511
1,350.5
1,058.5
PphH3-6
2,737.5
1,642.5
1,788.5
803
511
1,314
1,095
PphH3-7
2,774
1,642.5
1,825
803
511
1,387
1,095
Tabla 4. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PphH3-8
2,737.5
1,679
1,825
876
511
1,460
1,095
PphH3-9
2,701
1,679
1,861.5
803
547.5
1,350.5
1,022
PphH3-10
2,701
1,642.5
1,788.5
766.5
438
1,350.5
1,095
PphH3-11
2,701
1,606
1,898
839.5
547.5
1,496.5
1,131.5
PphH3-12
2,701
1,642.5
1,861.5
876
547.5
1,496.5
1,095
PphH3-13
2,664.5
1,606
1,825
839.5
438
1,350.5
1,204.5
PphH3-14
2,737.5
1,642.5
1,752
803
474.5
1,350.5
1,095
PphH3-15
2,774
1,679
1,788.5
876
438
1,168
1,058.5
Tabla 5
Medidas en μm de cada huevo de Pseudosermyleprocera utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PprP1-1
2,737.5
1,825
1,934.5
693.5
292
1,496.5
1,241
PprP1-2
2,774
1,788.5
1,934.5
730
292
1,460
1,241
PprP1-3
2,737.5
1,788.5
1,934.5
657
255.5
1,423.5
1,168
PprP1-4
2,737.5
1,679
1,861.5
693.5
292
1,423.5
1,168
PprP1-5
2,555
1,606
1,788.5
730
328.5
1,314
1,095
PprP1-6
2,664.5
1,642.5
1,861.5
657
292
1,350.5
1,204.5
PprP1-7
2,737.5
1,752
1,934.5
730
255.5
1,387
1,131.5
PprP1-8
2,737.5
1,788.5
1,934.5
730
292
1,314
1,131.5
PprP1-9
2,737.5
1,715.5
1,934.5
730
292
1,460
1,204.5
PprP1-10
2,737.5
1,752
1,971
693.5
255.5
1,387
1,131.5
PprP1-11
2,664.5
1,715.5
1,898
693.5
255.5
1,387
1,095
PprP1-12
2,810.5
1,788.5
1,898
693.5
292
1,387
1,095
PprP1-13
2,701
1,752
1,934.5
657
255.5
1,350.5
1,095
PprP1-14
2,810.5
1,752
1,934.5
766.5
292
1,460
1,168
PprP1-15
2,810.5
1,679
1,934.5
693.5
292
1,460
1,131.5
PprP2-1
2,774
1,715.5
1,861.5
693.5
365
1,350.5
1,204.5
PprP2-2
2,664.5
1,788.5
2,044
657
365
1,423.5
1,095
PprP2-3
2,737.5
1,679
1,971
584
328.5
1,569.5
1,131.5
PprP2-4
2,737.5
1,715.5
1,898
620.5
365
1,387
1,131.5
PprP2-5
2,737.5
1,752
1,898
693.5
365
1,496.5
1,131.5
PprP2-6
2,701
1,679
1,861.5
693.5
328.5
1,387
1,204.5
PprP2-7
2,774
1,715.5
1,898
620.5
365
1,460
1,095
PprP2-8
2,737.5
1,715.5
1,934.5
730
365
1,460
1,168
Tabla 5. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PprP2-9
2,701
1,715.5
1,934.5
657
328.5
1,460
1,168
PprP2-10
2,774
1,752
1,934.5
657
365
1,423.5
1,241
PprP2-11
2,737.5
1,715.5
1,898
730
401.5
1,460
1,168
PprP2-12
2,810.5
1,715.5
1,898
730
328.5
1,423.5
1,131.5
PprP2-13
2,664.5
1,679
1,861.5
620.5
292
1,460
1,131.5
PprP2-14
2,664.5
1,679
1,861.5
657
365
1,387
1,131.5
PprP2-15
2,810.5
1,679
1,898
693.5
365
1,387
1,168
PprP3-1
2,737.5
1,788.5
2,007.5
730
401.5
1,569.5
1,241
PprP3-2
2,628
1,788.5
1,898
730
401.5
1,460
1,204.5
PprP3-3
2,737.5
1,825
2,007.5
657
438
1,569.5
1,277.5
PprP3-4
2,701
1,788.5
1,971
730
401.5
1,533
1,241
PprP3-5
2,628
1,825
2,007.5
657
365
1,569.5
1,241
PprP3-6
2,701
1,788.5
1,934.5
657
401.5
1,496.5
1,204.5
PprP3-7
2,701
1,788.5
1,934.5
657
401.5
1,533
1,241
PprP3-8
2,591.5
1,788.5
1,971
620.5
365
1,496.5
1,168
PprP3-9
2,701
1,788.5
1,971
693.5
438
1,569.5
1,168
PprP3-10
2,591.5
1,788.5
1,971
620.5
401.5
1,642.5
1,241
PprP3-11
2,737.5
1,752
1,934.5
657
438
1,569.5
1,241
PprP3-12
2,774
1,825
2,007.5
730
401.5
1,569.5
1,277.5
PprP3-13
2,701
1,715.5
2,044
620.5
401.5
1,533
1,277.5
PprP3-14
2,628
1,825
2,007.5
693.5
401.5
1,533
1,204.5
PprP3-15
2,664.5
1,825
2,007.5
657
401.5
1,642.5
1,277.5
Tabla 6
Medidas en μm de cada huevo de Pseudosermylestriata utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PstS1-1
2,263.8
1,470
1,675.8
1,234.8
529.2
1,029
882
PstS1-2
2,352
1,587.6
1,734.6
1,234.8
529.2
1,146.6
1,029
PstS1-3
2,293.2
1,528.8
1,705.2
1,205.4
529.2
1,087.8
940.8
PstS1-4
2,352
1,558.2
1,646.4
1,205.4
529.2
1,087.8
1,029
PstS1-5
2,116.8
1,528.8
1,705.2
1,058.4
529.2
1,176
999.6
PstS1-6
2,175.6
1,499.4
1,705.2
1,087.8
588
1,117.2
970.2
PstS1-7
2,234.4
1,470
1,646.4
1,117.2
558.6
1,146.6
970.2
PstS1-8
2,263.8
1,528.8
1,646.4
1,058.4
558.6
1,176
1029
Tabla 6. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PstS1-9
2,175.6
1,470
1,675.8
1,087.8
588
1,146.6
999.6
PstS1-10
2,087.4
1,499.4
1,705.2
1,029
558.6
1,117.2
999.6
PstS1-11
2,175.6
1,440.6
1,646.4
1,058.4
529.2
1,146.6
970.2
PstS1-12
2,116.8
1,470
1,705.2
1,087.8
529.2
1,117.2
911.4
PstS1-13
2,116.8
1,499.4
1,675.8
1,176
529.2
1,117.2
940.8
PstS1-14
2,146.2
1,558.2
1,675.8
1,117.2
529.2
1,058.4
940.8
PstS1-15
2,205
1,499.4
1,646.4
1,087.8
588
1,087.8
911.4
PstS2-1
2,322.6
1,558.2
1,705.2
1,029
529.2
1,087.8
940.8
PstS2-2
2,293.2
1,558.2
1,705.2
1,117.2
588
1,058.4
970.2
PstS2-3
2,263.8
1,528.8
1,646.4
999.6
529.2
1,087.8
940.8
PstS2-4
2,263.8
1,352.4
1,528.8
1,058.4
558.6
999.6
911.4
PstS2-5
2,175.6
1,499.4
1,646.4
911.4
529.2
1,087.8
940.8
PstS2-6
2,322.6
1,558.2
1,734.6
1,058.4
529.2
1,087.8
940.8
PstS2-7
2,263.8
1,411.2
1,734.6
1,058.4
558.6
1,117.2
970.2
PstS2-8
2,205
1,558.2
1,675.8
1,029
558.6
1,087.8
940.8
PstS2-9
2,352
1,558.2
1,734.6
1,205.4
499.8
1,087.8
970.2
PstS2-10
2,381.4
1,558.2
1,675.8
1,087.8
558.6
1,029
940.8
PstS2-11
2,263.8
1,499.4
1,617
970.2
558.6
1,058.4
911.4
PstS2-12
2,234.4
1,499.4
1,675.8
1,087.8
558.6
1,029
911.4
PstS2-13
2,293.2
1,470
1,646.4
1,176
529.2
1,058.4
911.4
PstS2-14
2,175.6
1,411.2
1,558.2
970.2
529.2
1,029
882
PstS2-15
2,116.8
1,323
1,499.4
999.6
558.6
970.2
852.6
PstS3-1
2,146.2
1,440.6
1,587.6
999.6
470.4
999.6
911.4
PstS3-2
2,116.8
1,440.6
1,675.8
940.8
441
1,058.4
793.8
PstS3-3
2,175.6
1,352.4
1,528.8
940.8
558.6
940.8
852.6
PstS3-4
2,175.6
1,470
1,499.4
970.2
470.4
999.6
911.4
PstS3-5
2,146.2
1,440.6
1,587.6
999.6
529.2
999.6
940.8
PstS3-6
2,028.6
1,440.6
1,587.6
999.6
470.4
1,058.4
911.4
PstS3-7
2,146.2
1,440.6
1,617
940.8
441
1,029
911.4
PstS3-8
2,205
1,528.8
1,617
911.4
470.4
1,058.4
970.2
PstS3-9
2,116.8
1,470
1,558.2
970.2
470.4
1,029
911.4
PstS3-10
2,175.6
1,499.4
1,646.4
911.4
499.8
1,029
940.8
PstS3-11
2,087.4
1,411.2
1,470
852.6
529.2
999.6
882
PstS3-12
2,087.4
1,470
1,528.8
911.4
499.8
999.6
911.4
PstS3-13
2,175.6
1,470
1,528.8
940.8
529.2
1,029
911.4
PstS3-14
2,352
1,558.2
1,764
1,146.6
529.2
1,146.6
999.6
PstS3-15
2,410.8
1,528.8
1,705.2
1,264.2
529.2
1,117.2
1,058.4
Tabla 7
Medidas en μm de cada huevo de Pseudosermylecarinulata, Pseudosermyletridens, Pseudosermyle sp. 4, Pseudosermyle sp. 5 utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PtrGtoU-1
3,580.2
1,285.2
1,514.7
642.6
596.7
872.1
688.5
PtrGtoU-2
3,626.1
1,239.3
1,560.6
642.6
550.8
872.1
688.5
PtrGtoU-3
3,626.1
1,377
1,606.5
642.6
596.7
872.1
688.5
PtrGtoU-4
3,626.1
1,377
1,468.8
688.5
596.7
872.1
688.5
PtrGtoU-5
3,580.2
1,285.2
1,560.6
734.4
550.8
826.2
734.4
PtrGtoU-6
3,580.2
1,331.1
1,560.6
688.5
550.8
872.1
688.5
PtrGtoU-7
3,672
1,331.1
1,514.7
688.5
596.7
826.2
734.4
PtrGtoU-8
3,672
1,377
1,422.9
688.5
550.8
872.1
642.6
PtrGtoU-9
3,672
1,377
1,514.7
688.5
550.8
872.1
688.5
PtrGtoU-10
3,580.2
1,377
1,377
459
459
872.1
642.6
PtrGtoU-11
3,580.2
1,285.2
1,422.9
321.3
229.5
872.1
688.5
PtrGtoU-12
3,672
1,331.1
1,422.9
596.7
459
826.2
688.5
PtrGtoU-13
3,580.2
1,239.3
1,422.9
688.5
550.8
872.1
734.4
PtrGtoU-14
3,534.3
1,331.1
1,514.7
642.6
596.7
826.2
688.5
PtrGtoU-15
3,488.4
1,331.1
1,606.5
688.5
596.7
872.1
734.4
PtrMorT1-1
3,488.4
1,285.2
1,422.9
596.7
504.9
734.4
780.3
PtrMorT1-2
3,626.1
1,331.1
1,514.7
504.9
504.9
734.4
780.3
PtrMorT1-3
3,717.9
1,377
1,514.7
550.8
504.9
734.4
780.3
PtrMorT1-4
3,580.2
1,331.1
1,468.8
504.9
504.9
780.3
780.3
PtrMorT1-5
3,534.3
1,377
1,468.8
550.8
504.9
780.3
826.2
PtrMorT1-6
3,672
1,331.1
1,468.8
550.8
504.9
734.4
780.3
PtrMorT1-7
3,580.2
1,331.1
1,377
459
504.9
734.4
734.4
PtrMorT1-8
3,580.2
1,377
1,377
596.7
504.9
642.6
734.4
PtrMorT1-9
3,442.5
1,331.1
1,422.9
550.8
550.8
780.3
826.2
PtrMorT1-10
3,442.5
1,239.3
1,377
550.8
550.8
780.3
826.2
PtrMorT2-1
3,549.6
1,326
1,433.1
540.6
515.1
744.6
785.4
PtrMorT2-2
3,488.4
1,239.3
1,422.9
688.5
550.8
734.4
780.3
PtrMorT2-3
3,626.1
1,147.5
1,468.8
642.6
367.2
734.4
734.4
PtrMorT2-4
3,442.5
1,147.5
1,331.1
688.5
550.8
734.4
780.3
PtrMorT2-5
3,717.9
1,285.2
1,514.7
688.5
550.8
734.4
780.3
PtrMorT2-6
3,717.9
1,239.3
1,468.8
688.5
550.8
734.4
734.4
PtrMorT2-7
3,626.1
1,239.3
1,422.9
688.5
596.7
688.5
780.3
PtrMorT2-8
3,717.9
1,285.2
1,468.8
642.6
550.8
826.2
780.3
PtrMorT2-9
3,717.9
1,239.3
1,422.9
688.5
596.7
734.4
780.3
PtrMorT2-10
3,672
1,193.4
1,514.7
642.6
596.7
734.4
780.3
PcaC1-1
1,999.2
1,381.8
1,587.6
1,029
382.2
940.8
823.2
Tabla 7. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PcaC1-2
1,999.2
1,411.2
1,587.6
999.6
382.2
970.2
823.2
PcaC1-3
2,028.6
1,381.8
1,587.6
1,029
411.6
940.8
823.2
PcaC1-4
2,058
1,352.4
1,558.2
940.8
382.2
940.8
852.6
PcaC1-5
1,969.8
1,323
1,558.2
940.8
382.2
940.8
823.2
PcaC2-1
1,852.2
1,176
1,381.8
940.8
441
823.2
735
PcaC2-2
1,822.8
1,264.2
1,440.6
911.4
411.6
882
764.4
PspFU-1
2,058
1,323
1,558.2
1,117.2
411.6
999.6
823.2
PspFU-2
2,028.6
1,323
1,499.4
1,234.8
382.2
999.6
793.8
PspFU-3
2,087.4
1,352.4
1,587.6
1,146.6
382.2
911.4
735
Tabla 8
Medidas en μm de cada huevo de N. isabelae, Pseudosermyle sp. 1, Pseudosermyle sp. 2. Pseudosermyle sp. 5 utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PspFU-4
1,822.8
1,146.6
1,440.6
940.8
411.6
970.2
676.2
PspFU-5
1,940.4
1,264.2
1,499.4
970.2
382.2
911.4
676.2
PspFU-6
1,881.6
1,234.8
1,470
1,029
411.6
940.8
705.6
PspFU-7
1,940.4
1,293.6
1,470
940.8
411.6
911.4
705.6
PspFU-8
1,911
1,205.4
1,499.4
911.4
382.2
970.2
764.4
PspFU-9
1,852.2
1,205.4
1,470
940.8
382.2
970.2
764.4
PspFU-10
2,058
1,323
1,499.4
1,087.8
382.2
999.6
735
PspFU-11
2,087.4
1,323
1,499.4
1,058.4
382.2
999.6
793.8
PspFU-12
1,999.2
1,323
1,470
1,205.4
382.2
970.2
764.4
PspFU-13
1,881.6
1,234.8
1,440.6
1,058.4
411.6
911.4
793.8
PspFU-14
2,058
1,323
1,528.8
1,087.8
382.2
1,029
764.4
PspFU-15
1,940.4
1,293.6
1,499.4
999.6
382.2
999.6
705.6
NisaU-1
2,263.8
1,499.4
1,764
1,029
617.4
1,293.6
970.2
NisaU-2
2,293.2
1,470
1,705.2
999.6
588
1,146.6
882
NisaU-3
2,293.2
1,646.4
1,793.4
1,029
617.4
1,234.8
1,029
NisaU-4
2,175.6
1,558.2
1,705.2
999.6
558.6
1,205.4
1,029
NisaU-5
2,263.8
1,646.4
1,793.4
999.6
588
1,234.8
1,029
NisaU-6
2,146.2
1,470
1,558.2
1,087.8
558.6
1,117.2
940.8
NisaU-7
2,293.2
1,558.2
1,793.4
1,029
588
1,234.8
1,029
NisaU-8
2,146.2
1,440.6
1,617
999.6
558.6
1,087.8
940.8
NisaU-9
2,175.6
1,528.8
1,617
1,087.8
558.6
1,146.6
911.4
NisaU-10
2,293.2
1,587.6
1,793.4
970.2
588
1,176
911.4
Tabla 8. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
NisaU-11
2,116.8
1,558.2
1,793.4
970.2
617.4
1,234.8
1,058.4
NisaU-12
2,352
1,499.4
1,764
1,058.4
646.8
1,293.6
1,029
PtgVBU-1
3,394.5
1,569.5
1,715.5
1,533
657
1,277.5
912.5
PtgVBU-2
3,029.5
1,350.5
1,606
1,350.5
511
912.5
620.5
PtgVBU-3
3,467.5
1,533
1,752
1,496.5
730
1,204.5
803
PtgVBU-4
3,394.5
1,533
1,606
1,496.5
657
1,095
803
PtgVBU-5
3,321.5
1,496.5
1,642.5
1,533
620.5
1,204.5
912.5
PtgVBU-6
3,431
1,460
1,642.5
1,460
584
1,095
803
PtgVBU-7
3,431
1,460
1,642.5
1,460
657
1,241
839.5
PtgVBU-8
3,394.5
1,533
1,569.5
1,533
693.5
1,095
839.5
PtgVBU-9
3,467.5
1,533
1,715.5
1,460
620.5
1,095
766.5
PtgVBU-10
3,394.5
1,533
1,715.5
1,496.5
730
1,168
912.5
PtgVBU-11
3,285
1,606
1,679
1,460
620.5
1,204.5
876
PtgDFG1-1
3,321.5
1,533
1,715.5
1,095
730
985.5
766.5
PtgDFG1-2
3,102.5
1,533
1,606
1,131.5
693.5
839.5
693.5
PtgDFG1-3
3,285
1,533
1,642.5
1,204.5
730
912.5
766.5
PtgDFG1-4
3,102.5
1,460
1,533
1,204.5
693.5
949
766.5
PtgDFG1-5
3,248.5
1,569.5
1,569.5
1,168
766.5
803
657
PtgDFG2-1
3,248.5
1,533
1,642.5
1,241
657
949
620.5
PtgDFG2-2
3,285
1,496.5
1,606
1,095
620.5
949
730
PtgDFG2-3
3,248.5
1,496.5
1,569.5
1,350.5
730
949
803
PtgDFG2-4
3,285
1,606
1,715.5
1,314
876
912.5
730
PtgDFG2-5
3,102.5
1,606
1,752
1,241
876
949
730
Tabla 9
Medidas en μm de cada huevo de Pseudosermyle sp. 2. Pseudosermyle sp. 3, Pseudosermyle sp. 6 utilizadas para el PCA.
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PtgDFG2-6
3,285
1,496.5
1,606
1,314
620.5
912.5
657
PtgDFG2-7
3,212
1,460
1,569.5
1,277.5
620.5
912.5
657
PtgDFG2-8
3,321.5
1,533
1,679
1,277.5
657
985.5
693.5
PtgDFG2-9
3,212
1,569.5
1,679
1,314
876
912.5
766.5
PtgDFG2-10
3,175.5
1,606
1,752
1,387
657
876
657
PtgDFG2-11
3,467.5
1,606
1,715.5
1,241
657
949
657
PtgDFG2-12
3,248.5
1,606
1,642.5
1,277.5
693.5
985.5
839.5
PtgDFG2-13
3,248.5
1,606
1,642.5
1,241
693.5
985.5
657
Tabla 9. Continúa
Clave
Medidas de huevo
L
W
H
mpl
mpw
oph
opw
PtgDFG2-14
3,285
1,496.5
1,642.5
1,460
730
949
803
PchF1-1
3,626.1
1,147.5
1,422.9
1,239.3
688.5
918
780.3
PchF1-2
3,993.3
1,468.8
1,652.4
1,422.9
734.4
1,055.7
826.2
PchF1-3
3,947.4
1,514.7
1,606.5
1,468.8
826.2
1,101.6
872.1
PchF2-1
3,947.4
1,377
1,698.3
1,377
688.5
918
780.3
PchF2-2
3,672
1,377
1,560.6
1,377
780.3
872.1
688.5
PchF2-3
3,672
1,422.9
1,606.5
1,422.9
780.3
872.1
688.5
PoaxU-1
2,701
1,642.5
1,898
693.5
328.5
1,314
1,131.5
PoaxU-2
2,518.5
1,569.5
1,825
693.5
365
1,277.5
1,095
PoaxU-3
2,664.5
1,642.5
1,861.5
657
328.5
1,277.5
1,058.5
PoaxU-4
2,664.5
1,679
1,825
657
365
1,277.5
1,131.5
PoaxU-5
2,664.5
1,642.5
1,861.5
730
365
1,277.5
1,131.5
PoaxU-6
2,518.5
1,606
1,788.5
693.5
365
1,241
1,095
PoaxU-7
2,555
1,606
1,861.5
657
365
1,350.5
1,131.5
PoaxU-8
2,591.5
1,642.5
1,861.5
766.5
328.5
1,277.5
1,131.5
PoaxU-9
2,482
1,569.5
1,752
657
365
1,168
949
PoaxU-10
2,591.5
1,569.5
1,861.5
657
365
1,241
1,095
PoaxU-11
2,482
1,679
1,788.5
693.5
365
1,277.5
1,058.5
PoaxU-12
2,518.5
1,569.5
1,788.5
693.5
328.5
1,277.5
1,095
PoaxU-13
2,555
1,606
1,861.5
693.5
328.5
1,241
1,022
PoaxU-14
2,555
1,679
1,788.5
693.5
365
1,241
1,022
PoaxU-15
2,701
1,679
1,898
657
292
1,314
1,131.5
Se llevó a cabo un análisis de componentes principales (PCA) para examinar si las medidas —en micras— de los huevos eran relevantes al reconocer grupos. Las medidas utilizadas fueron: longitud de la cápsula (L), amplitud de la cápsula (W), altitud de la cápsula (H), longitud de la lámina micropilar (mpl), amplitud de la lámina micropilar (mpw), altitud del opérculo (oph) y amplitud del opérculo (opw) (tablas 4-9). Se incluyeron todos los huevos con el propósito de graficar estas mediciones y agruparlos según dichas medidas. Se empleó R (R Core Team, 2013) mediante la interfaz de Rstudio (Rstudio Team, 2015); las paqueterías utilizadas fueron: ggplot2 (Wickham, 2016), ggfortify (Horikoshi y Tang, 2016), rgl (Adler et al., 2018), pca3d (Weiner, 2017) y magick (Ooms, 2018). Cada huevo fue caracterizado de manera individual siguiendo un código que incluye los nombres de las columnas: nombre, clave de hembra de la tabla 3, más el número ascendente correspondiente (tablas 4-9). Para la descripción de los grupos, las medidas se convirtieron a milímetros (mm), mientras que para cada especie se mantuvieron en micras (μm).
Resultados
El análisis de componentes principales (PCA) muestra la formación de 4 grupos (fig. 3) explicados en detalle posteriormente, que coinciden con los patrones de morfología externa mostrada por los adultos (machos y hembras) y el tipo de oviposición. En el gráfico del PCA cada eje representa un componente; por lo tanto, se representan 2 gráficos del PCA, uno con rotación en el eje del primer componente (fig. 3A) y otro con rotación en el eje del segundo componente (fig. 3B), para una apreciación mejor de los 4 grupos. Los primeros 3 componentes explican 96.76% de la varianza (fig. 4A). El primer componente presenta mayor contribución de L (fig. 4B), mientras que el segundo presenta mayor homogeneidad en la contribución que recibe de las variables; sin embargo, la oph es la variable que más contribuye (fig. 4C). Finalmente, el tercer componente presenta mayor contribución de mpl (fig. 4D).
A continuación, se da una descripción breve de la microestructura coriónica general de cada grupo, así como para cada una de las especies incluidas en este trabajo. También se incluye una comparación de las distintas estructuras coriónicas entre los grupos y las especies, como se observa en las tablas 10-12. Muchas de estas especies no están descritas y pueden representar especies aún inéditas e innominadas, en consecuencia, se dejaron como morfoespecies y solo se enumeraron.
Tabla 10
Comparación entre estructuras coriónicas entre especies y grupos. Longitud de cápsula (L), amplitud de cápsula (W), altitud de cápsula (H).
Grupos
General
Cápsula
Tipo de huevo
Oviposición
Forma
Textura
Microestructura
L promedio (mm)
W promedio (mm)
H promedio (mm)
Grupo 1
adhesivo
Adheridos
Fusiforme
Gránulos
Basamentos piramidales
3.37 ±0.23
1.5 ±0.09
1.64 ±0.07
Pseudosermyle sp. 1
adhesivo
Adheridos
Fusiforme
Gránulos
Basamentos piramidales
3.36 ±0.12
1.5 ±0.06
1.66 ±0.05
Pseudosermyle sp. 2
adhesivo
Adheridos
Fusiforme
Gránulos
Basamentos piramidales
3.24 ±0.08
1.54 ±0.05
1.64 ±0.06
Pseudosermyle sp. 3
adhesivo
Adheridos
Fusiforme
Gránulos
Basamentos piramidales
3.8 ±0.16
1.38 ±0.12
1.59 ±0.09
Grupo 2
adhesivo
Ooteca
Fusiforme
Paralelepípedos
Liso
3.6 ±0.08
1.3 ±0.06
1.46 ±0.06
Pseudosermyle tridens
adhesivo
Ooteca
Fusiforme
Paralelepípedos
Liso
3.59 ±0.09
1.28 ±0.07
1.44 ±0.05
Pseudosermyle sp. 4
Adhesivo
Ooteca
Fusiforme
Paralelepípedos
Liso
3.6 ±0.05
1.32 ±0.04
1.49 ±0.07
Grupo 3
Alveolada
Por caída
Doliforme
Variable
Variable
2.14 ±0.14
1.44 ±0.11
1.61 ±0.1
Pseudosermyle carinulata
Alveolada
Por caída
Doliforme
Gránulos
Proyecciones digitiformes
1.96 ±0.08
1.32 ±0.08
1.52 ±0.08
Pseudosermyle striata
Alveolada
Por caída
Doliforme
Arrugas
Proyecciones digitiformes
2.21 ±0.09
1.48 ±0.06
1.64 ±0.07
Pseudosermyle sp. 5
Alveolada
Por caída
Doliforme
Arrugas
Rugulosa
1.96 ±0.08
1.27 ±0.05
1.49 ±0.03
Nooxapty isabelae
Alveolada
Por caída
Doliforme
Espinas
Proyecciones digitiformes
2.23 ±0.07
1.53 ±0.06
1.72 ±0.08
Grupo 4
Alveolada
Por caída
Doliforme
Variable
Variable
2.68 ±0.09
1.69 ±0.08
1.87 ±0.08
Pseudosermyle phalangiphora
Alveolada
Por caída
Doliforme
Gibas con espinas umbeliformes
Punteada
2.68 ±0.1
1.65 ±0.08
1.82 ±0.08
Pseudosermyle procera
Alveolada
Por caída
Doliforme
Verrugosa con fóveas
Verrugosa
2.71 ±0.06
1.74 ±0.05
1.93 ±0.05
Pseudosermyle sp. 6
Alveolar
Por caída
Doliforme
Coliculada con espinas umbeliformes
Verrugosa
2.58 ±0.07
1.62 ±0.04
1.83 ±0.04
Tabla 11
Comparación entre estructuras coriónicas entre especies y grupos. Porcentaje de cobertura de la longitud de lámina micropilar en la longitud de la cápsula (% de mpl/L).
Grupos
Opérculo
Lámina micropilar (mp)
Ornamentación
Ángulo opercular
Capas
Forma
Ornamentación
% de mpl/L
Relieve micropilar
Forma lámina micropilar interna
Grupo 1
Variable
+ 55°
1
Lemniscata
Similar a la cápsula
40
Variable
Abierta con línea media
Pseudosermyle sp. 1
Estructura solitaria
+ 55°
1
Lemniscata
Similar a la cápsula
43.98
Presen-te
Abierta con línea media
Pseudosermyle sp. 2
Similar a la cápsula
+ 55°
1
Lemniscata
Similar a la cápsula
38.63
Ausente
Abierta con línea media
Pseudosermyle sp. 3
Disposición radial
+ 55°
1
Lemniscata
Similar a la cápsula
36.34
Presen-te
Abierta con línea media
Grupo 2
Similar a la cápsula
+ 40°
2
Variable
Distinta a la cápsula
17
Ausente
Paralela sin línea media
Pseudosermyle tridens
Similar a la cápsula
+ 40°
2
Triangular
Distinta a la cápsula
16.7
Ausente
Paralela sin línea media
Pseudosermyle sp. 4
Similar a la cápsula
+ 40°
2
Circular
Distinta a la cápsula
17.57
Ausente
Paralela sin línea media
Grupo 3
Similar a la cápsula
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
50
Ausente
Abierta con línea media
Pseudosermyle carinulata
Similar a la cápsula
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
49.46
Ausente
Abierta con línea media
Pseudosermyle striata
Similar a la cápsula
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
47.51
Ausente
Abierta con línea media
Pseudosermyle sp. 5
Similar a la cápsula
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
53.23
Ausente
Abierta con línea media
Nooxapty isabelae
Similar a la cápsula
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
45.72
Ausente
Abierta con línea media
Grupo 4
Acomodo de estructuras
≈ 0°
1
Variable
Variable
30
Varia-ble
Abierta con línea media
Pseudosermyle phalangiphora
Estructura solitaria
≈ 0°
1
Oblonga
Distinta a la cápsula
30.885
Ausente
Abierta con línea media
Pseudosermyle procera
Anillo
≈ 0°
1
Elíptica
Distinta a la cápsula
25.11
Presen-te
Abierta con línea media
Pseudosermyle sp. 6
Anillo
≈ 0°
1
Oblonga
Similar a la cápsula
26.55
Ausente
Abierta con línea media
Tabla 12
Comparación entre estructuras coriónicas entre especies y grupos. Lámina micropilar (mp).
Grupos
Borde
Tubérculo micropilar
Copa micropilar
Línea media externa
Forma
Posición
Forma
Posición
Presencia
Ornamentación
Longitud
Grupo 1
Carina que se ensancha hacia la parte posterior
Hacia la copa micropilar
Variable
Fusionada al borde de mp
Presente
Variable
Corta (no llega al área polar)
Pseudosermyle sp. 1
Carina que se ensancha hacia la parte posterior
Hacia la copa micropilar
Triángulo invertido
Fusionada al borde de mp
Presente
Carina
Corta (no llega al área polar)
Pseudosermyle sp. 2
Carina que se ensancha hacia la parte posterior
Hacia la copa micropilar
Triángulo invertido
Fusionada al borde de mp
Presente
Cambio de textura
Corta (no llega al área polar)
Pseudosermyle sp. 3
Carina que se ensancha hacia la parte posterior
Hacia la copa micropilar
Matraz invertido
Fusionada al borde de mp
Presente
Sucesión de estructuras
Corta (no llega al área polar)
Grupo 2
Variable
En la mitad de la copa micropilar
Carina
Ausente
Ausente
No aplica
No aplica
Pseudosermyle tridens
Cambio de textura
En la mitad de la copa micropilar
Carina
Ausente
Ausente
No aplica
No aplica
Pseudosermyle sp. 4
Ligera elevación
En la mitad de la copa micropilar
Carina
Ausente
Ausente
No aplica
No aplica
Grupo 3
Variable
Hacia la copa micropilar
Variable
Separada del borde de mp
Presente
Variable
Variable
Pseudosermyle carinulata
Surco
Hacia la copa micropilar
Rectangular
Separada del borde de mp
Presente
Carina
Larga (llega al área polar)
Pseudosermyle striata
Carina
Hacia la copa micropilar
Triángulo invertido
Separada del borde de mp
Presente
Carina
Larga (llega al centro del área polar)
Pseudosermyle sp. 5
Superficie lisa
Hacia la copa micropilar
Rectangular
Separada del borde de mp
Presente
Carina
Larga (llega al área polar)
Nooxapty isabelae
Carina
Hacia la copa micropilar
Forma de y
Separada del borde de mp
Presente
Sucesión de estructuras
Larga (llega al centro del área polar)
Grupo 4
Carina
Hacia la copa micropilar
Variable
Fusionada al borde de mp
Variable
Variable
Variable
Tabla 12. Continúa
Grupos
Borde
Tubérculo micropilar
Copa micropilar
Línea media externa
Forma
Posición
Forma
Posición
Presencia
Ornamentación
Longitud
Pseudosermyle phalangiphora
Carina
Hacia la copa micropilar
Semiesfera
Fusionada al borde de mp
Presente
Carina
Larga (llega al área polar)
Pseudosermyle procera
Carina
Hacia la copa micropilar
Semiesfera
Fusionada al borde de mp
Ausente
No aplica
No aplica
Pseudosermyle sp. 6
Carina
Hacia la copa micropilar
Triángulo invertido
Fusionada al borde de mp
Presente
Sucesión de estructuras
Larga (llega al área polar)
Figura 3. Gráfica de los 3 primeros componentes del PCA, que representan 96.76% de la varianza explicada. A, Vista rotando el eje del componente 1; B, vista rotando el eje del componente 2. Grupo 1: Pseudosermyle sp. 1 (rosa), Pseudosermyle sp. 2 (rojo) y Pseudosermyle sp. 3 (lila). Grupo 2: P. tridens (naranja oscuro) y Pseudosermyle sp. 4 (aguamarina). Grupo 3: P. carinulata (amarillo), P. striata (verde), Pseudosermyle sp. 5 (cian) y Nooxapty isabelae (naranja claro). Grupo 4: P. phalangiphora (azul), P. procera (morado)y Pseudosermyle sp. 6 (azul celeste).
Pseudosermyle grupo 1
Huevo: adhesivo, adherido individualmente sobre una superficie (fig. 5B). Medidas en mm (n = 36): L = 3.37 ± 0.23 (3.02-3.99), W = 1.5 ± 0.09 (1.14-1.6), H = 1.64 ± 0.07 (1.42-1.75), mpl = 1.34 ± 0.12 (1.09-1.53), mpw = 0.69 ± 0.08 (0.51-0.87), oph = 0.99 ± 0.12 (0.8-1.27) y opw = 0.76 ± 0.08 (0.62-0.91). Opérculo orientado en + 55° aproximadamente. Lámina micropilar en forma de lemniscata u oblonga con el centro constreñido; con una longitud aproximada entre más de un tercio y menos de la mitad de la longitud de la cápsula. Lámina micropilar interna abierta con línea media (fig. 6A-C).
Material examinado: 11 huevos. México. Edo. de México, Valle de Bravo, Arriba cueva, 19°5’32.928” N, 100°4’19.848” O, 2,260 m snm [voucher: PHMX 349-358 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 4. Gráficas de PCA. A, Proporción de la varianza explicada en porcentaje por cada componente; B, contribución de las variables al componente 1; C, contribución de las variables al componente 2; D, contribución de las variables al componente 3. La línea punteada roja indica el valor promedio que cada variable aportaría al componente si estas contribuciones fueran equitativas.Figura 5. Tipos de oviposición encontrados en Pseudosermyle. A, Por caída; B, adheridos a una superficie; C, ooteca.Figura 6. Diversidad de formas en la lámina micropilar interna (mpi) de las distintas especies de Pseudosermyle. A-C, Grupo 1; D-E, grupo 2; F-I, grupo 3; J-L, grupo 4. A-B y F-L, mpi abierta con línea media (NM); D-E, mpi paralela sin línea media (PO). A, Pseudosermyle sp. 1; B, Pseudosermyle sp. 2; C, Pseudosermyle sp. 3; D, P. tridens; E, Pseudosermyle sp. 4; F, P. carinulata; G, P. striata; H, Pseudosermyle sp. 5; I, Nooxapty isabelae; J, P. phalangiphora; K, P. procera; L. Pseudosermyle sp. 6.
Figura 7. Diversidad de formas en los huevos de las distintas especies de Pseudosermyle, huevo en vista dorsal. A, Pseudosermyle sp. 1; B, Pseudosermyle sp. 2; C, Pseudosermyle sp. 3; D, P. tridens; E, Pseudosermyle sp. 4; F, P. carinulata; G, P. striata; H, Pseudosermyle sp. 5; I, Nooxapty isabelae; J, P. phalangiphora; K, P. procera; L, Pseudosermyle sp. 6.
Microestructura: (n = 1) (figs. 8, 9) cápsula de superficie granulosa (fig. 8A, B), con granos formados por basamentos piramidales de 6-8 niveles (fig. 8E, F); la longitud varía entre 37.18-59.04 μm. En toda la superficie se observa un patrón de terrazas (polígonos irregulares y escalonados, en su mayoría rectangulares), que pueden o no formar los gránulos (fig. 8E). El huevo suele estar cubierto (cuando es ovipuesto) por una sustancia adherente o pegajosa que presenta rugosidades irregulares y separadas, suele cubrir la mitad ventral (fig. 8C, D); las arrugas son lisas (fig. 8D). Lámina micropilar con ornamentación y textura similar a la cápsula (fig. 9A). Borde a manera de una carina con 66 μm de amplitud (fig. 9D), tiende a ensancharse hacia la copa micropilar (fig. 9C). Tubérculo micropilar como un triángulo invertido, con 286 μm de longitud y 198 μm de amplitud (fig. 9C). Copa micropilar con forma de ‘y’, fusionada al borde, con 362 μm de amplitud y 39 μm de grosor (fig. 9C). Línea media como una carina de 40 μm de amplitud (figs. 8C, 9B). Las estructuras antes mencionadas, salvo la superficie de la lámina micropilar (fig. 9E), son de textura rugosa. Opérculo de superficie rugosa, con arrugas que forman una elevación a manera de semicírculo en la región anterior; la textura de las arrugas es verrugosa (fig. 9F).
Pseudosermyle sp. 2 (figs. 1, 6B, 7B, 10, 11)
Material examinado:19 huevos. México, Ciudad de México, Coyoacán, REPSA, Espacio Escultórico-Caseta de vigilancia, 19°19’3.4824” N, 99°11’5.4744” O, 2,311 m snm [voucher: PHMX 304-322 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 8. Pseudosermyle sp. 1 cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, límite entre superficie de la cápsula y pegamento; E, superficie de la cápsula; F, acercamiento a la textura de los gránulos.
Microestructura: (n = 1) (figs. 10, 11) cápsula de superficie coliculado-granulosa (fig. 10A, B), con granos formados por basamentos piramidales de 4-6 niveles; la longitud varía entre 24.66-34.39 μm (fig. 10E, F). En toda la superficie se presenta un patrón de polígonos irregulares y escalonados —en su mayoría rectangulares, que pueden o no formar los gránulos (fig. 10E); en ciertas regiones hay máculas irregulares de textura escabriculosa. El huevo suele estar cubierto (cuando es ovipuesto) por una sustancia pegajosa que muestra rugosidades irregulares y muy cercanas entre sí, suele cubrir la mitad ventral (fig. 10B, C); las arrugas son lisas (fig. 10D). Lámina micropilar con ornamentación similar al patrón presente en la superficie de la cápsula (fig. 11A), con secciones irregulares de textura escabriculosa (fig. 11E). Borde como una carina de 73 μm de amplitudl (fig. 11D) y tiende a ensancharse hacia la copa micropilar (fig. 11C), con textura papilada (fig. 11D). Tubérculo micropilar como un triángulo invertido, con 282 μm de longitud y 136 μm de amplitud (fig. 11C); textura similar a la presente en la superficie de la cápsula (fig. 11C). Copa micropilar con forma de ‘v’, fusionada al borde, con 321 μm de amplitud y 45 μm de grosor, de superficie rugosa (fig. 11A, C). Línea media con 533 μm de longitud y 61 μm de amplitud (figs. 10C, 11B); de textura tuberculosa al centro y escabriculosa en la unión con la cápsula (fig. 11B) – esta línea media exhibe un cambio de texturas en la cápsula. Opérculo de textura rugulosa que forma secciones poligonales de grupos de protuberancias (fig. 11F).
Pseudosermyle sp. 3 (figs. 1, 6C, 7C, 12, 13)
Material examinado: 6 huevos. México, Jalisco, La Huerta, alrededores EB Chamela, 19°29’57.516” N, 105°2’41.424” O, 87 m snm [voucher: PHMX 323-328 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 9. Pseudosermyle sp. 1 huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, opérculo.
Microestructura: (n = 1) (figs. 12, 13) cápsula de superficie rugosa, con arrugas irregulares de longitud 54.04-148.04 μm y amplitud de 28.19-53.26 μm (fig. 12A, B); unidas por una especie de membrana (fig. 12D). Los espacios entre las arrugas están saturados de gránulos con diámetro 28.19-42.29 μm (fig. 12D, F), éstos suelen estar muy juntos hacia el dorso y más separados hacia los lados; en las superficies laterales se ven algunos niveles, como si fuesen basamentos piramidales (fig. 12E). El huevo suele estar cubierto (cuando ovipuesto) por una sustancia adherente que exhibe rugosidades irregulares y muy cercanas, suele cubrir la mitad ventral (fig. 12B, C); las arrugas son lisas (fig. 12D). Lámina micropilar con ornamentación y textura similar a la cápsula, salvo que las arrugas están hacia el centro (fig. 13E) y los gránulos hacia la periferia (fig. 13A).
Figura 10. Pseudosermyle sp. 2 cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, límite entre superficie de la cápsula y pegamento; E, superficie de la cápsula; F, acercamiento a la textura de los gránulos.
Borde de textura escabriculosa elevada a manera de carina, con 77 μm de amplitud (fig. 13D). Tubérculo micropilar en forma de matraz invertido con 381 μm de longitud y 237 μm de amplitud, de textura rugosa (fig. 13C). Copa micropilar con forma de ‘v’, fusionada al borde, con 437 μm de amplitud y 97 μm de grosor, de textura rugosa (fig. 13C). Línea media con 351 μm de longitud y 98 de amplitud; como una serie de arrugas elevadas con una textura escabriculosa en el centro (figs. 12C, 13B). Opérculo con espacio entre las arrugas radiales; hacia la periferia es granuloso como la cápsula y hacia el centro de las arrugas la textura es rugosa, pero sin formar arrugas del tamaño y forma a las que rodean esta zona (fig. 13F).
Pseudosermyle grupo 2
Huevo: adhesivo con oviposición en ooteca (fig. 5C). Medidas en mm (n = 35): L = 3.6 ± 0.08 (3.44-3.71), W = 1.3 ± 0.06 (1.14-1.37), H = 1.46 ± 0.06 (1.33-1.6), mpl = 0.61 ± 0.09 (0.32-0.73), mpw = 0.53 ± 0.07 (0.22-0.59), oph = 0.79 ± 0.06 (0.64-0.87) y opw = 0.74 ± 0.05 (0.64-0.82). Opérculo orientado hacia la superficie dorsal en + 40° aproximadamente. Lámina micropilar reducida, con una longitud cercana a un sexto de la longitud de la cápsula. Lámina micropilar interna paralela sin línea media (fig. 6D, E).
Especies incluidas:Pseudosermyle tridens (Burmeister, 1838) y Pseudosermyle sp. 4.
Material examinado: 20 huevos disecados y 3 ootecas. México, Morelos, Ayala, Venustiano Carranza esquina Iturbide, Cruz Verde, 18°45’36.6264” N, 98°58’33.9528” O, 1,295 m snm [voucher: PHMX 329-348, 616-618 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 11. Pseudosermyle sp. 2 huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, opérculo.
Microestructura: (n = 1) (figs. 14, 15) cápsula con superficie dorsal cubierta por paralelepípedos (fig. 14A, B) con longitudes de arista entre 6-9.5 μm (fig. 14E, F). En las superficies laterales y ventrales es lisa (fig. 14C, D). Lámina micropilar en general con textura lisa hacia el centro (fig. 15A); con tendencia a formar fibras que se vuelven una retícula hacia la periferia (fig. 15B). Tubérculo micropilar lineal, liso, con 273 μm de longitud y 108 μm de amplitud aproximadamente (fig. 15C). El borde es el límite entra las texturas de la lámina micropilar y la cápsula. Sin copa micropilar, ni línea media. Opérculo de textura como en la cápsula (fig. 15D).
Pseudosermyle sp. 4 (figs. 1, 6E, 7E, 16, 17)
Material examinado: 15 huevos disecados y 3 ootecas. México, Guanajuato, Silao de la Victoria, Villa Esmeralda, 20°57’13.212” N, 101°26’0.996” O, 1,782 m snm [voucher: PHMX 359-373, 423-425 depositados en CNIN y MZFC].
Microestructura: (n = 1) (figs. 16, 17) cápsula de superficie dorsal cubierta por paralelepípedos (fig. 16A, B), con longitudes de arista entre 1-3 μm (fig. 16E, F). En las superficies laterales y ventral con una reducción gradual de los paralelepípedos (fig. 16C, D). Lámina micropilar en general de textura lisa hacia el tubérculo micropilar; hacia el borde es rugosa (fig. 17A). Tubérculo micropilar liso, con 321 μm de longitud y 136 μm de amplitud aproximadamente (fig. 17C).
Figura 12. Pseudosermyle sp. 3 cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, límite entre superficie de la cápsula y pegamento; E, superficie de la cápsula; F, acercamiento a la textura de los gránulos.
El borde es una ligera elevación que rodea la lámina micropilar y se encuentra abierto en el área polar (figs. 16C, 17A); su textura es rugosa (fig.17B), de aproximadamente 64 μm de amplitud. Sin copa micropilar, ni línea media (figs. 16C, 17A). Opérculo de textura como en la cápsula (fig. 17D).
Pseudosermyle grupo 3
Huevo: alveolar, de oviposición por caída (fig. 5A), doliforme. Medidas en mm (n = 79): L = 2.14 ± 0.14 (1.82-2.41), W = 1.44 ± 0.11 (1.14-1.64), H = 1.61 ± 0.1 (1.38-1.79), mpl = 1.03 ± 0.09 (0.85-1.26), mpw = 0.5 ± 0.07 (0.38-0.64), oph = 1.05 ± 0.09 (0.82-1.29) y opw = 0.89 ± 0.09 (0.67-1.05). Lámina micropilar en general oblonga y con una longitud cercana a la mitad de la longitud de la cápsula. Lámina micropilar interna abierta con línea media (fig. 6F-I).
Especies incluidas:Pseudosermyle carinulata (Brunner von Wattenwyl, 1907), P. striata (Burmeister, 1838), Pseudosermyle sp. 5 y se incluye a Nooxapty isabelae López-Mora et Llorente-Bousquets, 2023 como parte de este grupo debido a su similitud coriónica, aunque la microestructura es más especializada.
Material examinado: 7 huevos. México, Edo. de México, Valle de Bravo, bajo mesa, 19°5’9.96” N, 100°4’35.94” O, 2, 201 m snm [voucher: PHMX 416-422 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 13. Pseudosermyle sp. 3 huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, opérculo.
Microestructura: (n = 1) (figs. 18, 19) cápsula de superficie granulosa (fig. 18A, B), con gránulos de diámetro entre 25.7-50.3 μm (fig. 18D), toda la superficie está cubierta por proyecciones digitiformes de altura entre 1.2-2.1 μm y una separación entre ellos de 0.7-3 μm (fig. 18E, F). Lámina micropilar de superficie como en la cápsula (fig. 19A), aunque los gránulos son de textura verrugosa (fig. 19E), el espacio entre los gránulos muestra la misma textura que aquellos de la cápsula (fig. 19E). Borde de una superficie con gránulos menos marcados y con un surco circumperiférico que lo separa del centro de la lámina micropilar (fig. 19A, D), con proyecciones digitiformes muy separadas, mide 76 μm de amplitud. Tubérculo micropilar como una giba más o menos rectangular de 97 μm de longitud y 69 μm de amplitud, su textura es verrugosa (figs. 18A, 19A). Copa micropilar separada del borde, con forma de ‘u’ abierta de 145 μm de amplitud y 22 μm de grosor (fig. 19C). Línea media como una carina de 31 μm de amplitud (figs. 18C, 19B). Las últimas 2 estructuras son de textura verrugosa. Opérculo de superficie granulosa (fig. 19F); la textura de los gránulos es similar a los que tiene la cápsula.
Figura 14. Pseudosermyle tridens cápsula del huevo en MEB. A, Dorsal; B, lateral; C, área polar; D, límite entre ambas texturas; E, textura dorsal; F, acercamiento a textura.
Material examinado: 45 huevos. México, Puebla, Cuetzalan del Progreso, camino a Tzinacapan, 20°0’59.6088” N, 97°32’23.388” O, 657 m snm [voucher: PHMX 259-303 depositados en CNIN y MZFC]
Microestructura: (n = 1) (figs. 20, 21) cápsula de superficie rugosa en general (fig. 20A, B), con arrugas que varían en tamaño entre 70-170 μm de longitud y 10-45 μm de amplitud (fig. 20D); estas estructuras están cubiertas por una retícula (fig. 20E) donde en cada intersección se produce una proyección cilíndrica o cónica de 1-3 μm de alto y una separación entre ellas de 1-3 μm (fig. 20F); con gránulos alrededor de la lámina micropilar cuyo diámetro mide entre 20-28 μm (figs. 20A, 21A), con textura similar a las arrugas. Lámina micropilar de textura rugosa (fig. 21E), con las arrugas hacia el centro y coliculada hacia el borde (fig. 21A). Borde a modo de carina periférica (fig. 21A); mide 13 μm de amplitud (fig. 21D).
Figura 15. Pseudosermyle tridens huevo en MEB. A-C, Lámina micropilar. A, Vista general; B, borde; C, protuberancia; D, opérculo.
Tubérculo micropilar en forma de triángulo invertido, mide 191 μm de longitud y 128 μm de amplitud (fig. 21A). Copa micropilar separada del borde, con forma de ‘u’ abierta; comienza donde termina el borde, mide 171 μm de amplitud y 24 μm de grosor (fig. 21C). Línea media es una carina con un surco en medio a lo largo, mide 56 μm de amplitud (figs. 20C, 21B). La textura de todas las estructuras anteriores es similar a la que exhiben las arrugas de la cápsula. Opérculo de composición similar a la cápsula, las arrugas suelen ser menos prominentes hacia el centro, el borde del opérculo es una carina periférica (fig. 21F). La textura es similar a la que poseen las arrugas de la cápsula.
Pseudosermyle sp. 5 (figs. 1, 6H, 7H, 22, 23)
Material examinado: 15 huevos. México, Puebla, Cuetzalan del Progreso, camino a Tzinacapan, 20°0’59.6088” N, 97°32’23.388” O, 657 m snm [voucher: PHMX 374-388 depositados en CNIN y MZFC].
Microestructura: (n = 1) (figs. 22, 23) cápsula de superficie rugosa en general (fig. 22A, B), con arrugas que varían en tamaño, mide entre 67-185 μm de longitud y 9-35 μm de amplitud (fig. 22D, E); estas estructuras están cubiertas por una textura rugulosa con orificios irregulares que varían en diámetro de 0.5-3.2 μm (fig. 22F). Lámina micropilar de superficie como en la cápsula (fig. 23A, E). Borde como un surco de 4.8 μm de amplitud (fig. 23D). Tubérculo micropilar como una giba más o menos rectangular, con 123 μm de longitud y 69 μm de amplitud (fig. 23A). Copa micropilar separada del borde, en forma de ‘u’ abierta, mide 187 μm de amplitud y 54 μm de grosor (fig. 23C). Línea media a modo de carina, mide 35 μm de amplitud (figs. 22C, 23B). La textura es similar a la que muestran las arrugas de la cápsula. Opérculo rugoso (fig. 23F), con arrugas similares a las que exhibe la cápsula y con la misma textura.
Figura 16. Pseudosermyle sp. 4 cápsula del huevo en MEB. A, Dorsal; B, lateral; C, área polar; D, límite entre ambas texturas; E, textura dorsal; F, acercamiento a textura.
Material examinado:12 huevos. México, Oaxaca, Totontepec Villa de Morelos, curva 1 Amatepec-Chinantequilla, 17°17’5.46” N, 95°59’18.1032” O, 1,562 m snm [voucher: PHMX 389-400 depositados en CNIN y MZFC].
Microestructura: (n = 1) (figs. 24, 25) cápsula de superficie espinosa (fig. 24A, B); espinas de diámetro entre 21-38 μm y altitud entre 81-211.5 μm (fig. 24A-D). Toda la superficie está cubierta por proyecciones digitiformes de altura entre 1.5-4.5 μm y una separación entre ellos de 1.7-4.4 μm (fig. 24D-F).
Figura 17. Pseudosermyle sp. 4 huevo en MEB. A-C, Lámina micropilar. A, Vista general; B, borde; C, protuberancia; D, opérculo.
Lámina micropilar cuya ornamentación y textura es similar a la cápsula (fig. 25A). Borde a modo de carina, con una sucesión de espinas unidas (similares a las de la cápsula) (fig. 25A, D). Tubérculo micropilar en forma de ‘y’, a manera de sucesión de espinas; mide 351 μm de longitud total, 199 μm de longitud hasta la bifurcación y 145 μm de longitud en cada brazo de la ‘y’, mide 27 μm de grosor (fig. 25A). Copa micropilar separada del borde, como una ‘u’ abierta, las espinas del borde acaban en los límites de la copa micropilar; mide 153 μm de amplitud y 24 μm de grosor (fig. 25C). Línea media a modo de sucesión de espinas solitarias (figs. 24C, 25B), de amplitud igual al diámetro de las mismas (21-38 μm). La textura en todas las estructuras anteriores es similar a la que posee la cápsula (fig. 25E). Opérculo espinoso con la misma composición, textura y medidas que las espinas de la cápsula; el borde carece de espinas y exhibe un surco que encierra a todas las espinas (fig. 25F).
Pseudosermyle grupo 4
Huevo: alveolar, de oviposición por caída (fig. 5A), doliforme.
Medidas en mm: (n = 105) L = 2.68 ± 0.09 (2.37-2.92), W = 1.69 ± 0.08 (1.38-1.89), H = 1.87 ± 0.08 (1.38-1.89), mpl = 0.74 ± 0.08 (0.58-0.94), mpw = 0.4 ± 0.08 (0.25-0.54), oph = 1.43 ± 0.11 (1.16-1.75) y opw = 1.16 ± 0.09 (0.94-1.42). Lámina micropilar en general oblonga y de longitud cercana a un tercio de la longitud de la cápsula, lámina micropilar interna abierta con línea media (fig. 6J-L).
Especies incluidas: Pseudosermyle phalangiphora (Rehn, 1907), P. procera Conle, Hennemann et Fontana, 2007 y Pseudosermyle sp. 6.
Material examinado: 45 huevos. México, Veracruz, San Andrés Tuxtla, camino viejo EBTLT, 18°35’9.89988” N, 95°4’31.8” O, 143 m snm [voucher: PHMX 169-213 depositados en CNIN y MZFC].
Figura 18. Pseudosermyle carinulata cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, textura de la cápsula; E, textura de gránulos; F, acercamiento a la textura de los gránulos.Figura 19. Pseudosermyle carinulata huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, Opérculo.
Microestructura: (n = 1) (figs. 26, 27) cápsula de superficie gibosa (fig. 26A, B), con gibas irregulares de diámetro entre 197.05-352.94 μm; suelen exhibir entre 1 y 4 poros de diámetro aproximado de 24 μm (fig. 26D), en el centro de este poro se produce una espina sombrilla (fig. 26D, E) de altura aproximada entre 44-48 μm, cuya amplitud es de 5 μm; la sombrilla de la espina formada por varios lóbulos es de diámetro aproximado de 18 μm (fig. 26E). La textura de la superficie dorsal es foveada (fig. 26D), con fóveas de 20 μm aproximadamente; éstas a su vez están punteadas con orificios de 0.5-1.8 μm de diámetro (fig. 26F); en el área polar en lugar de fóveas se forman gránulos (fig. 26C) de diámetro entre 12.5-17.18 μm.
Figura 20. Pseudosermyle striata cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, textura de la cápsula; E, textura de arrugas; F, acercamiento a la textura de las arrugas.
Lámina micropilar con superficie coliculada (fig. 27A) y textura rugulosa (fig. 27E). Borde como una carina de 207 μm de amplitud (fig. 27D); textura similar a la cápsula. Tubérculo micropilar similar a una media esfera de 114 μm de longitud y 153 μm de amplitud (fig. 27A); ornamentación similar a la lámina micropilar. Copa micropilar fusionada al borde con forma de ‘u’, mide 230 μm de amplitud y 129 μm de grosor (fig. 27C). Línea media a modo de carina de 179 μm de amplitud (figs. 26C, 27B). La textura de estas últimas 2 estructuras es similar a la cápsula. Opérculo muestra una giba al centro, mide 73-182 μm de longitud y entre 365-547 μm de amplitud, cuya altura es de 474-839 μm; está giba puede exhibir una muesca al centro, con esto adquiere una apariencia de pequeño cráter; en la cúspide presenta poros con espinas sombrilla del mismo tamaño y forma que los de la cápsula (fig. 27F). La textura es similar a la cápsula; en el borde se forma una carina circumperiférica (fig. 27F).
Material examinado: 45 huevos. México, Veracruz, San Andrés Tuxtla, camino viejo EBTLT, 18°35’9.89988” N, 95°4’31.8” O, 143 m snm [voucher: PHMX 214-258 depositados en CNIN y MZFC].
Microestructura: (n = 1) (figs. 28, 29) cápsula con superficie verrugosa (fig. 28A, B), cuyas verrugas miden de diámetro entre 40.8-289.32 μm, de textura rugulosa (fig. 28D, E), compuesta por protuberancias de diámetro de 2.42-8.53 μm (fig. 28E); entre las verrugas la superficie es foveada (fig. 28D), con fóveas de 17.68-28.06 μm de diámetro, e igual que las verrugas son de textura rugulosa (fig. 28F). Lámina micropilar de superficie escasamente coliculada (fig. 29A); textura rugulosa como la cápsula (fig. 29D). Borde a modo de carina (fig. 29A), mide 42 μm de amplitud, textura como en la cápsula (fig. 29C). Tubérculo micropilar como una media esfera de 61 μm de longitud y 80 μm de amplitud (fig. 29A); textura similar a la lámina micropilar. Copa micropilar fusionada al borde (fig. 29B), con forma de ‘u’, de 230 μm de amplitud y 159 μm de grosor, cuya textura es rugulosa. Sin línea media evidente. Opérculo con ornamentación similar a la cápsula, las verrugas forman un anillo periférico (fig. 29E); al centro la superficie es coliculada, pero mantiene la textura rugulosa (fig. 29F).
Pseudosermyle sp. 6 (figs. 1, 6L, 7L, 30, 31)
Material examinado: 15 huevos. México, Oaxaca, Santiago Choápam, curva Choápam-Latani, 17°22’39.9144” N, 95°54’58.5144” O, 701 m snm [voucher: PHMX 401-415 depositados en CNIN y MZFC].
Microestructura: (n = 1) (figs. 30, 31) cápsula coliculada (fig. 30A, B) con gránulos de 31.30-51.20 μm de diámetro, superficie rugulosa con verrugas de 1.76-4.12 de diámetro (fig. 30D, F). Las espinas sombrilla por lo general en grupos de al menos 3 (fig. 30E), aunque en ocasiones se encuentran solitarias; su altura es de 47-51 μm, su amplitud entre 5.9-10 μm; la sombrilla de la espina está formada por un círculo con diámetro entre 47.64-59.24 μm (fig. 30E). Lámina micropilar con ornamentación similar a la cápsula, pero carece de espinas sombrilla (fig. 31A). Borde a modo de carina de 49 μm de amplitud (fig. 31A, D), su textura rugulosa (fig. 31D). Tubérculo micropilar como un triángulo invertido de 252 μm de longitud y 155 μm de amplitud (fig. 31A); textura similar a la lámina micropilar (fig. 31E). Copa micropilar fusionada al borde, en forma de ‘u’, mide 139 μm de longitud y 48 μm de grosor (fig. 31C), de textura rugulosa como la cápsula. Línea media como una sucesión de gránulos (fig. 31B), puede exhibir espinas sombrilla; de 322 μm de longitud y 89 μm de amplitud, de textura rugulosa. Opérculo con espinas sombrilla que forman un anillo concéntrico rodeado de textura coliculada; al centro presenta la misma textura y algunas espinas sombrilla (fig. 31F).
Figura 21. Pseudosermyle striata huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, Opérculo.
Comportamiento de oviposición. Los grupos encontrados presentan 3 comportamientos distintos de oviposición: 1) por caída, para las especies: P. striata, P. carinulata, Pseudosermyle sp. 5 y Nooxapty isabelae del grupo 3 y P. phalangiphora, P. procera y Pseudosermyle sp. 6 del grupo 4 (fig. 5A); 2) pegados en sustrato, para las especies: Pseudosermyle sp. 1, Pseudosermyle sp. 2 y Pseudosermyle sp. 3 del grupo 1 (fig. 5B); y 3) agrupados en ooteca, para las especies: P. tridens y Pseudosermyle sp. 4 del grupo 2 (fig. 5C).
Variabilidad morfológica del huevo. Los caracteres constantes entre los grupos son: tipo de oviposición, tipo de huevo, forma de la cápsula, ángulo opercular, número de capas presentes en el opérculo, porcentaje de cobertura de la longitud de la lámina micropilar (mpl) con respecto a la longitud de la cápsula (L), forma de la lámina micropilar interna y posiciones del tubérculo y copa micropilar. Por lo tanto, suponemos que son caracteres relevantes para identificar los grupos obtenidos por PCA y nos permiten definirlos. En contraste, los caracteres como ornamentación y textura de la cápsula, opérculo, lámina micropilar y línea media son caracteres variables entre especies, pero constantes entre los huevos de distintas hembras de la misma especie. Podemos suponer que estos caracteres son específicos (tablas 10-12). A continuación, se discuten a nivel de grupo los caracteres mencionados como específicos y algunas de sus posibles tendencias.
Figura 22. Pseudosermyle sp. 4 cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, textura de la cápsula; E, arrugas; F, acercamiento a la textura de las arrugas.
Discusión
Las especies dePseudosermyle presentan distintos tipos de morfología del huevo, lo que nos permite reconocer 4 grupos, con Nooxapty isabelae próximo al grupo 3. Se reconocen 2 tipos de huevo, alveolar (grupos 3 y 4) y adhesivos (grupos 1 y 2); con 3 comportamientos de oviposición: por caída (grupos 3 y 4), adheridos al sustrato (grupo 1) e incluidos en 1 ooteca (grupo 2); se admiten 4 grupos acorde a las medidas obtenidas por PCA, que coinciden con aquellos reconocidos cualitativamente con otras estructuras (morfología del macho y la hembra). Esta diferenciación permite proponer el reconocimiento de 4 unidades ovocíticas distintas dentro de Pseudosermyle. Se observó que dentro de cada grupo existen ciertas características comunes en la morfología del huevo (tablas 10-12); pero a su vez existen diferencias suficientes entre las especies que los conforman (tablas 10-12). Por lo tanto, se puede reconocer y diferenciar de manera inequívoca a cada especie y el grupo al que pertenece. Las ilustraciones de P. truncata y Bacteria cacica Kaup, 1871 (sinónimo deP. tridens [Hebard, 1932]) corresponden conel patrón del huevo que encontramos en el grupo 1.
Figura 23. Pseudosermyle sp. 4 huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, Opérculo.
En cambio, la ilustración provista por Zompro (2001) de P. tridens sigue el patrón del grupo 2, lo que sugiere queB. cacica fue sinonimizada equivocadamente conP. tridens por Hebard (1932). Consideramos que es indispensable revisar más organismos de estas 2 especies con la finalidad de examinar esta sinonimia posiblemente errónea y reconocer a B. cacica como especie válida. Por último, P. phalangiphora corresponde con el grupo 4; no obstante, la morfología coriónica ilustrada por Conle et al. (2007) no corresponde con la encontrada en el presente trabajo. Conle et al.(2007) mencionan que esta especie es muy variable en sus genitales, por ende, una revisión detallada es necesaria para clarificar si se trata de variación intraespecífica o bien de 2 especies distintas con algunos caracteres homoplásticos.
Cabe destacar que en nuestro estudio se encontró un tipo de oviposición que previamente solo había sido registrado para la subfamilia Korinninae (hoy Necrosciinae) por Goldberg et al. (2015). Éste representa el segundo caso de formación de ooteca en Phasmatodea y a su vez una convergencia para ambos casos. Nuestros resultados representan el primer registro para América y el primero en la familia Diapheromeridae. Hay diferencia entre las ootecas de ambos taxones referente a la forma en la que los huevos están acomodados; mientras en Korinninae los huevos están acomodados de forma radial y se generan 4 cámaras, en nuestro caso, en el grupo 2de Pseudosermyle están acomodados en líneas sin formación de cámaras.
Figura 24. Nooxapty isabelae cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, superficie de la cápsula; E, textura de espinas; F, acercamiento a la textura de las espinas.
Debido a que las especies con ootecas, en este estudio, provienen de ambientes con temporada seca muy marcada como el matorral xerófilo y la selva baja subcaducifolia, deducimos que la formación de una ooteca con cápsula muy dura y ancha posiblemente evita que los huevos se desequen; tal como Salas-Araiza et al. (2013) reportan para algunos Acrididae hallados en matorral xerófilo, pues se trata de una adaptación a medios xéricos. Otro aspecto importante del fenómeno es que una condición previa a la formación de una ooteca es la presencia de huevos pegados a un sustrato, tal y como lo mencionan Robertson et al. (2018); en nuestro caso, también encontramos ese comportamiento de oviposición (grupo 1) en el mismo género donde se presentan ootecas. Para poner a prueba esta aseveración, es necesario realizar un análisis filogenético donde se incluyan más especies de Pseudosermyle y así examinar el proceso en términos de posibles tendencias evolutivas, de acuerdo con las secuencias reconocidas.
El huevo en Pseudosermyle es diferente en todas las especies respecto a su forma, texturas y la disposición de sus ornamentaciones, que son exclusivas de cada especie; además, estas características se agrupan en patrones más generales, que reconocemos como grupos. Asimismo, estos caracteres son constantes entre los huevos de distintas hembras de la misma especie. Dentro de Phasmatodea, las hembras de muchas especies son muy similares y el huevo ha sido un primer paso para reconocer si pertenecen a la misma o a distintas especies. A continuación, se listan los casos donde este carácter fue útil como primer paso en el reconocimiento de especies muy similares.
Figura 25. Nooxapty isabelae en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, Opérculo.
El primer caso corresponde con P. striata y Pseudosermyle sp. 5, donde son simpátridas e incluso los machos se parecen mucho. Al inicio, se pensó que pertenecían a la misma especie, hasta que se analizaron los huevos bajo el estereoscopio y el MEB. Se registró que los huevos eran diferentes en varios aspectos, como la ornamentación y la textura de la cápsula, la forma de la lámina micropilar y el opérculo. Entonces, para corroborar que se trataba de 2 especies distintas, se realizó la técnica descrita en materiales y método, con lo cual se confirmó nuestra hipótesis.
El segundo caso se dio entre P. phalangiphora y P. procera, que también son simpátridas. Se realizó el mismo procedimiento descrito en materiales y método. Las diferencias entre los huevos fueron la ornamentación de la cápsula, el opérculo y la presencia del relieve micropilar. En este caso, las diferencias entre machos eran conspicuas, así que la pregunta fue ¿cuál hembra y qué huevo correspondía a qué macho? Al igual que en el caso anterior, la respuesta se obtuvo al criar separadamente las ninfas eclosionadas de las 2 morfologías tal y como se describe en materiales y método. Después de obtener los adultos se pudo asignar a las hembras con sus respectivos machos y confirmar la continuidad morfológica con la reproducción.
Figura 26. Pseudosermyle phalangiphora cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, gibas; E, espina umbeliforme; F, textura de la cápsula.
El tercer caso es entre P. tridens y Pseudosermyle sp. 4, las diferencias entre machos suelen ser igual de sutiles que las mostradas entre hembras. En ese caso, las especies no son simpátridas y se pensaba que ambas eran una única especie, pues presentaban oviposición en ooteca y morfología genital similar. Por esta causa se recurrió a la disección de hembras para obtener los huevos y realizar la comparación; entonces se encontraron las primeras diferencias, pues la lámina micropilar de P. tridens es circular y está cerca del centro de la cápsula; la lámina de Pseudosermyle sp. 4 es un triángulo invertido desplazado al área polar. Para corroborarlo se obtuvo la primera generación de Pseudosermyle sp. 4, donde las hembras y los machos presentaban la misma morfología que los parentales; también se observó que los huevos tenían la misma morfología. El cultivo de P. tridens no se logró; cabe mencionar que fue hasta la observación de los huevos que se pudo determinar a P. tridens, pues el huevo es similar a la ilustración de Zompro (2001).
Con estos casos verificamos que la afirmación de Robertson et al.(2018) sobre la especificidad del huevo a nivel de especie es cierta para este clado de Phasmatodea. Al seguir esta aseveración pudimos notar que la imagen presentada porConle et al.(2007) del huevo de P. phalangiphora de un cultivo de Belice, puede ser una especie distinta a la que reconocemos aquí como P. phalangiphora.
Figura 27. Pseudosermyle phalangiphora huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, Opérculo.
Sin embargo, es complicado conocer la identidad con certeza, pues los autores anteriores mencionan que esta especie presenta gran variabilidad en los caracteres masculinos y femeninos; en consecuencia, aquí reconocimos a los ejemplares que entraban dentro del rango de variabilidad de P. phalangiphora como esta especie, aunque una revisión más exhaustiva de los caracteres de ésta y otras poblaciones es indispensable.
Figura 28. Pseudosermyle procera cápsula del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, superficie de la cápsula; E, textura de verrugas; F, Textura de la cápsula.
Los grupos 1 y 3 exhiben gránulos, pero la diferencia entre sus texturas es lo que los diferencia, pues el grupo 1 presenta gránulos como basamentos piramidales y el grupo 3 como semicírculos. También se observa una tendencia a aumentar o disminuir el número de niveles en el basamento piramidal y por lo tanto el tamaño del gránulo en el grupo 1; por el momento, hacen falta estudios comparativos que incluyan más especies, para después postular una posible tendencia (aumentar o disminuir el número de niveles en los basamentos piramidales) a este carácter, después de un ulterior análisis filogenético. El grupo 2 presenta especies que carecen de copa micropilar y línea media.
El grupo 3 se aproxima al género Nooxapty, por lo que se podría sugerir que al menos a nivel de medidas coriónicas son similares en forma. Este grupo exhibe gran variación en la microestructura coriónica de sus estructuras (tablas 10-12). La diferencia mayor entre Nooxapty y el grupo 3 es la presencia de espinas en el primero y de gránulos en el segundo. Se reconoce una tendencia de los gránulos a formar arrugas, pero se carece de hipótesis filogenética del género, que nos permita realizar una comparación precisa sobre tal tendencia. Además, el hecho que Nooxapty esté agrupado dentro de este grupo sugiere la necesidad de revisar estos caracteres bajo un enfoque filogenético, para aclarar si la similitud morfológica se debe a simplesiomorfías o a convergencia. Consideramos que un análisis filogenético nos permitiría contrastar y conocer los alcances de las medidas coriónicas, la ornamentación y la microestructura al momento de definir los géneros en Phasmatodea.
El grupo 4, al igual que el 3, exhibe gran variación en su microestructura coriónica (tablas 10-12). Bradler (2009) agrupa las 2 especies (P. phalangiphora y P. incongruens [Brunner von Wattenwyl, 1907]) dentro del género Pseudosermyle por presentar cercos asimétricos y con 2 ápices.Las demás, P. neptuna (Brunner von Wattenwyl, 1907), P. tridens (cercos con 3 ápices)y P. striata (con cercos simples), junto con este clado, forman un grupo monofilético a manera de peine, cuya sinapomorfía es la reducción del segundo esclerito del “poculum”. En particular, consideramos que tal variación en los cercos es muy grande y podría estar agrupando entidades distintas, por ejemplo, géneros distintos. En el presente trabajo mostramos evidencia que sustenta la formación de 4 grupos al usar la morfología coriónica y que cualitativamente observamos una correspondencia entre estos grupos y la morfología de los adultos. Sin embargo, se debe poner a prueba esta hipótesis bajo un enfoque filogenético que incluya más grupos de caracteres (v. gr. genitales internos) y especies.
Figura 29. Pseudosermyle procera huevo en MEB. A-D, Lámina micropilar. A, Vista general; B, copa micropilar; C, borde; D, textura, E-F, opérculo; E, vista general; F, textura.
A grandes rasgos, los caracteres como textura, forma de tubérculo micropilar, borde de la lámina micropilar, línea media externa y ornamentación (tablas 10-12) son de utilidad específica entre las especies. Para hacer más robusta esta hipótesis es necesario poner a prueba estos caracteres bajo un análisis filogenético, en el cual se deben considerar más especies de cada grupo. En los análisis previos, los grupos 1, 2 y 3 solo están representados por una especie y el grupo 4 por 2 especies (Bradler, 2009); mientras que el grupo 4 se ha incluido en análisis que consideran a todo Phasmatodea (Goldberg et al. 2015; Robertson et al. 2018) y Pseudosermyle no se incluyó en los análisis de Whiting et al. (2003) y Bradler et al. (2014), pese a ser el género con mayor diversidad en América del Norte (de Luna, 2022); esto evidencia la falta de información en un género tan ampliamente distribuido.
Figura 30. Pseudosermyle sp. 6 cápusla del huevo en MEB. A, Vista dorsal; B, vista lateral; C, área polar; D, superficie de la cápsula; E, espinas sombrilla; F, acercamiento a la textura.
Medidas coriónicas. Cuando aplicamos PCA a las medidas de huevo (L, W, H, mpl, mpw, oph y opw) obtuvimos 4 agrupaciones, que corresponden con los patrones generales del huevo explicados anteriormente. Al revisar la contribución de las variables a cada componente (fig. 4), nos percatamos de que la longitud de la cápsula (L), la altitud (oph) y amplitud (opw) del opérculo, así como la longitud micropilar (mpl) son las medidas coriónicas que mejor explican la variación de la forma del huevo. Podemos observar que L es una variable independiente de las restantes y la que más contribuye al componente 1 (fig. 4); mientras que oph y opw están más correlacionadas positivamente con la amplitud (W) y altitud (H) de la cápsula, las variables que más contribuyen al componente 2 (fig. 4). En cambio, mpl es la variable que más contribuye al componente 3 (fig. 4) y su correlación es inversamente proporcional a oph y opw; podemos destacar que cada estructura del huevo (cápsula, lámina micropilar y opérculo) está aportando una de las medidas que lo caracterizan. En consecuencia, recomendamos que al momento de realizar descripciones del huevo se incluyan todas las medidas mencionadas.
Las medidas del huevo nos permiten distinguir 4 grupos, que además son congruentes con otros caracteres. Esto podría indicar que el género Pseudosermyle pueda estar conformado por géneros distintos, como lo sugiere Conle et al. (2007), quienes llegan a esta conclusión debido a la variabilidad de formas en los genitales de los machos. Ellos admiten que el conocimiento del género es fragmentado, en consecuencia, no realizan una redescripción del mismo. Así también, ninguna de las especies que ellos describen sigue la descripción original de Pseudosermyle pues no cumplen con las características que menciona Caudell (1903); sin embargo, coinciden con la redescripción que realizó Zompro (2001). En contraste, resaltamos que las medidas por sí solas no son suficientes en la caracterización del huevo pues N. isabelae, por sus medidas, se aproxima al grupo 3, pero al revisar la microestructura notamos que la ornamentación es distinta entre esta especie y las restantes dentro del grupo, pues exhibe espinas, mientras que las demás presentan arrugas y gránulos. En conclusión, notamos que la microestructura, como sugieren Mazzini y Scali (1983), es bastante útil al reconocer especies cercanas dentro del mismo género.
Figura 31. Pseudosermyle sp. 6 huevo en MEB. A-E, Lámina micropilar. A, Vista general; B, línea media; C, copa micropilar; D, borde; E, textura; F, opérculo.
Por último, es importante destacar que Pseudosermyle exhibe gran variabilidad en los caracteres morfológicos del huevo, por lo cual consideramos que para aclarar si estos caracteres nos permiten inferir distintos géneros o representan variabilidad dentro del mismo, es indispensable revisar más caracteres, v. gr., genitales externos e internos para ambos sexos y observar una correspondencia entre los mismos. Así mismo, es necesario efectuar un análisis filogenético que nos permita postular hipótesis evolutivas sobre el género y sus caracteres o rasgos. Las especies restantes de Pseudosermyle no fueron incluidas en este trabajo debido a la carencia de tiempo y recursos para recolectar un área tan vasta como México, América Central y el sur de Estados Unidos. Por lo tanto, en el futuro será oportuno un trabajo más exhaustivo que incluya lo antes mencionado y amplíe el número de especies analizadas. Aún queda mucho trabajo por realizar con Pseudosermyle, pues al igual que muchos géneros de Phasmatodea americanos, se desconoce su bionomía.
Agradecimientos
Al posgrado en Ciencias Biológicas, UNAM, por el financiamiento a la beca de Secihti (cvu: 599426 y cvu: 1039296). A Susana Guzmán Gómez por la asistencia técnica en las micrografías en el Laboratorio de Microscopia y Fotografía de la Biodiversidad II, IB UNAM. A Arturo Arellano Covarrubias por la asesoría en la realización del mapa. A Isabel Vargas Fernández y María Berenit Mendoza Garfias por su asistencia técnica al montar las muestras y tomar las fotomicrografías con microscopio electrónico de barrido. Isabel Vargas ayudó críticamente en la elaboración de las figuras. JLB agradece al proyecto PAPIIT-UNAM IN 202415. ULM agradece a la Orthopterists Society por el Theodore J. Cohn Research Fund. Por último, agradecemos a 2 revisores anónimos en la revisión previa del presente manuscrito.
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Primer genoma mitocondrial completo de un cangrejo tricodactílido: Rodriguezia adani (Brachyura: Trichodactyloidea: Trichodactylidae) de Mexico
Eric G. Moreno-Juáreza, b, *, Andrea Jiménez-Marínc, Fernando Álvareza
a Universidad Nacional Autónoma de México, Instituto de Biología, Colección Nacional de Crustáceos, Tercer Circuito s/n, Ciudad Universitaria, Coyoacán, 04510 Ciudad de México, Mexico
b Universidad Nacional Autónoma de México, Posgrado en Ciencias Biológicas, Instituto de Biología, Colección Nacional de Crustáceos, Tercer Circuito s/n, Ciudad Universitaria, Coyoacán, 04510 Ciudad de México, Mexico
c Universidad Nacional Autónoma de México, Instituto de Biología, Laboratorio de Biología Molecular, Tercer Circuito s/n, Ciudad Universitaria, Coyoacán, 04510 Ciudad de México, Mexico
Received: 13 August 2025; accepted: 01 December 2025
Abstract
We report for the first time the complete mitochondrial genome of a crab in the family Trichodactylidae, that of the stygobitic Rodriguezia adani Álvarez and Villalobos, 2018. The mitogenome is 17,561 bp of length with a GC composition of 26.4% and comprises 13 protein coding genes (PCGs), 2 ribosomal subunits and 19 transfer RNA (tRNAs) genes; its ribosomal subunits are separated by 10 genes (5 PCGs and 19 tRNAs). Its phylogenetic position was obtained through Maximum Likelihood and Bayesian Inference analyses, both placed this species inside the subsection Heterotremata and as the sister group of the family Orithyiidae. Changes in the number of tRNAs could be the result of the adaptation to a stygobitic lifestyle. This is the first genomic resource for the Trichodactylidae and could be the initial step for future phylogenomic studies of this group.
Reportamos el primer genoma mitocondrial completo de un cangrejo de la familia Trichodactylidae, el de la especie estigobítica Rodriguezia adani Álvarez y Villalobos, 2018. El mitogenoma tiene 17,561 pb de longitud, una composición de GC de 26.4% y contiene 13 genes codificantes de proteínas (PCGs), 2 subunidades ribosomales y 19 genes de RNA de transferencia (tRNAs); sus subunidades ribosomales están separadas por 10 genes (5 PCGs y 19 tRNAs). La posición filogenética obtenida a través de máxima verosimilitud e inferencia bayesiana ubica a esta especie dentro de la subsección Heterotremata y como grupo hermano de la familia Orithyiidae. Los cambios en el número de tRNAs podrían ser el resultado de la adaptación a un estilo de vida estigobítico. Este es el primer recurso genómico para los Trichodactylidae y posiblemente el paso inicial para futuros estudios filogenómicos de este grupo.
The family Trichodactylidae H. Milne-Edwards, 1853, the single family in the superfamily Trichodactyloidea, is one of the 3 families of freshwater crabs in the American Continent (Álvarez et al., 2020). Rodriguezia Bott (1969) one of the 2 genera of Trichodactylidae found in Mexico; these are primary freshwater crabs distributed in southern Mexico (Álvarez & Villalobos, 2018; Magalhães & Türkay, 1996). The genus Rodriguezia comprises 3 species, 2 of them stygobitic; from them, Rodrigueziaadani Álvarez & Villalobos, 2018 was the last one to be described (Fig. 1). Most of the research on this family has focused on its distribution, taxonomy, ecology, conservation and anatomy (Collins et al., 2009, 2011; Cumberlidge et al., 2014; Lima-Gomes et al., 2017; Magalhães et al., 2016; Magalhães & Türkay, 1996; Weihrauch et al., 2004; Williner & Collins, 2013). However, few attempts have been made to understand its phylogenetic relationships, except for few molecular analyses performed to solve species complex issues in the genera Avotrichodactylus Pretzmann, 1968,Trichodactylus Latreille, 1828 and Dilocarcinus Milne Edwards, 1853 (Caetano-França et al., 2024; Ojeda et al., 2013; Souza-Carvalho et al., 2017). Studies using genomic sequencing for this family are lacking, only recently a study on the genome size of Trichodactylus fluviatilis Latreille, 1828 was published (Barioto et al., 2024). To further advance our knowledge on the phylogeny and evolution of the Trichodactylidae, we present the first complete mitochondrial genome for the family.
Figure 1. Photograph of the specimen of Rodriguezia adani Álvarez & Villalobos, 2018 used in this study (CNCR 36762). Figure 2. Geographic location of Rodriguezia adani.
Materials and methods
The organism used in this study was collected in the type locality, Aguas Blancas Cave, Tabasco, Mexico (17º36’22.06” N, 92º27’43.63” W, Fig. 2) and deposited in the Colección Nacional de Crustáceos (CNCR), of the Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México (IB-UNAM), with catalog number CNCR 36762 (https://www.ib.unam.mx/ib/colecciones-biologicas/colecciones-zoologicas, Dr. Fernando Álvarez (falvarez@ib.unam.mx)). The organism was collected under license N° SGPA/DGVS/03775/22, provided by Semarnat. Its taxonomic identity was corroborated with Álvarez and Villalobos (2018) publication.
The DNA was purified from muscle tissue of the fifth pereopod with the Animal and Fungi DNA preparation kit, Jena Bioscience. Quality and concentration of DNA were determined with a NanoDrop 2000 spectrophotometer and Qubit 4 Fluorometer, respectively. The library used was prepared with Illumina DNA Prep Kit (Illumina, Inc.), following the Trevisan et al. (2019) protocol. The sequencing was conducted in an Illumina NextSeq 500 sequencer, using a 300-cycle cartridge in a Paired End (PE) 2X150 cycles configuration at the Massive Sequencing and Bioinformatic Unit of the Instituto de Biotecnología, UNAM.
A total of 11,090,166 raw sequences were obtained, its quality was measured with FastQC v. 0.11.9 (Andrews, 2010), and low quality reads (Q < 28) and adapters were removed with Trimmomatic v. 0.39 (Bolger et al., 2014). SPAdes v 3.15,1 (Bankevich et al., 2012) was implemented as assembler on Galaxy (The Galaxy Community, 2022) with k-mer values of 33, 55, 77, 105. The final sequence assembled was analyzed with MITOS (Bernt et al., 2013) to obtain the gene order and annotation. The framework of the Protein Coding Genes (PCGs) was corroborated with Geneious v. 2024.4 (Biomatters Inc., Auckland, New Zealand). To discard any issue during the assembly we performed the protocol of Vera-Paz et al. (2022). The depth average coverage was obtained with the online protocol of Ni et al. (2023). The final gene map was obtained with Chloroplot (Zheng et al., 2020).
To corroborate the phylogenetic position of R. adani, we initially based our selection of taxa on Tsang et al. (2014) and Wolfe et al. (2023), whose partial sequence-based phylogenies recovered Trichodactylidae together with Orithyiidae, Chasmocarcinidae, and Bellidae as a sister group to all Heterotremata. However, the only available mitogenome from that group was Orythia sinica (Orithyiidae), so to give a general idea of the phylogenetic position of R. adani,we selected other available mitogenomes from families and superfamilies representative of Heterotremata, species belonging to primary families of freshwater crabs, species of Thoracotremata, and Ranina ranina (Podotremata) as an outgroup (Table 1).
Table 1
Species included in the phylogenetic analysis and GenBank accession numbers.
Species
Accession number
Reference
Rodriguezia adani
PQ064124
This study
Ranina ranina
AB752308
Unpublished
Tzotzilthelphusa villarosalensis
OP295767
Moreno-Juárez et al., 2023
Longpotamon yangtsekiens
KY785879
Yuhui et al., 2017
Ocypode ceratophthalmus
LN611669
Tan et al., 2014
Eriocheir japonica
FJ455505
Wang et al., 2016
Pachygrapsus crassipes
KC878511
Yu et al., 2014
Orithyia sinica
MG840649
Zhong et al., 2018
Chionoecetes japonicus
MT750295
Kim et al., 2020
Maguimithrax spinosissimus
KM405516
Márquez et al., 2016
Maja crispata
KY650651
Basso et al., 2017
Maja squinado
KY650652
Basso et al., 2017
Segonzacia mesatlantica
KY541839
Mandon et al., 2017
Austinograea alayseae
KC851803
Kim et al., 2014
Gandalfus puia
KR002727
Kim et al., 2016
Echinoecus nipponicus
MG574831
Lee et al., 2018
Pilumnus vespertilio
MF457402
Tan et al., 2018
Atergatis floridus
MG792341
Karagozlu, Barbon et al., 2018
Etisus anaglyptus
MG751773
Karagozlu, Dihn et al., 2018
Epixanthus frontalis
MF457404
Tan et al., 2018
Leptodius sanguineus
KT896744
Sung et al., 2016
Myomenippe fornasiniiq
LK391943
Tan et al., 2016a
Myra affinis
MW192449
Zhang et al., 2022
Pyrhila pisum
KU343210
Park et al., 2017
Ashtoret lunaris
LK391941
Tan et al., 2016b
Matuta victor
MT416712
Huang et al., 2021
Calappa bilineata
MN562587
Lu et al., 2020
Chaceon granulatus
AB769383
Zhang et al., 2020
Ovalipes punctatus
MH802052
Unpublished
Scylla olivacea
FJ827760
Unpublished
Charybdis bimaculata
MG787408
Liu et al., 2018
Callinectes sapidus
AY363392
Place et al., 2005
Portunus sanguinolentus
KT438509
Ma et al., 2016
Table 2
Best partition scheme and model selection resulting from the analyses on IQ-Tree.
A total of 15 mitochondrial genes (13 PCGs and 2 rRNA) were individually aligned with Mafft v. 7 online service (Katoh et al., 2019). The final concatenated matrix was analyzed with a codon partition merging and a model selection analysis, implemented on IQ-tree (Chernomor et al., 2016; Kalyaanamoorthy et al., 2017), resulting in 13 partitions and nucleotide substitution models (Table 2). Two phylogenetic inference methods were implemented, the maximum likelihood (ML) analysis was performed in IQ-Tree with 10,000 ultrafast bootstrap analysis (Hoang et al., 2018; Trifinopoulos et al., 2016). The Bayesian Inference (BI) analysis was performed with Exabayes (Aberer et al., 2014) with 20 million generations, sampling every 10,000 generations, standard deviation of split frequencies convergence value of 0.01 and 25% of burn-in.
Results
The complete mitochondrial genome of R. adani (GenBank: PQ064124; associated BioProject, SRA, and Bio-Sample numbers are PRJNA1139182, SRR29931217, and SAMN42764363, respectively) was obtained in only 1 contig with a length of 17,561 bp, an average depth of 125.8X and a GC composition of 26.4% (Fig. 3). It comprised 13 PCGs, 2 ribosomal RNA (rRNA) genes and 19 confirmed transfer RNA (tRNA) genes (Fig. 4, Table 3). Twenty-three genes are in the antisense strand: 9 PCGs (COX1, COX2, COX3, CYTB, ATP6, ATP8, ND1, ND3, ND6), and 14 tRNAs (tRNA-L1, K, D, G, A, R, N, S1, E, T, I, S2, M, W); and 11 are in the sense strand, 4 PCGs (ND1, ND4, ND4L, ND5), both rRNA genes (12S and 16S) and 5 tRNAs (tRNA-P, H, Q, Y, V); 1 tRNA-C is missing and tRNA-L2 and F are not confirmed. PCGs starting codons were ATG (COX1, COX2, COX3, ATP6, CYTB, ND2, ND4, ND4L), ATT (ATP8, ND5, ND6), ATC (ND3) and ATA (ND1). Most of the PCGs terminate with TAA, except for ND4 (TAG). Both phylogenetic analyses (ML, BI) recovered R. adani as the sister group of the family Orithyiidae with a high branch support (92/1) (Fig. 5).
Discussion
The family Trichodactylidae has been poorly studied molecularly and genomic sequencing of its species is non-existent, so this study contributes with the first mitochondrial genome sequenced from a stygobitic species. The gene order and topology found in R. adani is quite different from other crab mitochondrial genomes reported, this is due to the ribosomal subunits that are separated by several PCGs (5) and tRNAs (5). According to the mitochondrial patterns reported by Tan et al. (2019) this gene arrangement is not found in any other crab so far reported. Most decapod mitochondrial genomes present ribosomal subunits one next to the other or separated by tRNA-V or/and tRNA-Q, few decapod species (e.g., the crayfish Parastacus brasiliensis and Engaeus quadrimanus, reported in Tan et al., 2019) present ribosomal subunits separated by PCGs like R. adani. With respect to the tRNAs, although in mitochondrial genomes the most common number is 22, R. adani just presents 19 confirmed; several species could present more or less tRNAs, depending on their evolutionary history (Romanova et al., 2016, 2020, 2021; Tan et al., 2019). In the case of R. adani, its stygobitic condition could be related to physiological adaptations that enable survival in low food availability conditions and low oxygen concentrations (Hervant et al., 1999, 2001). It has been documented that in some instances metabolic changes can lead to the duplication or deletion of certain tRNAs, which can optimize the synthesis of enzymes or proteins that play an important role in these new metabolic processes (Romanova et al., 2021; Tan et al., 2019; Xing et al., 2025). Regarding tRNAs-L2 and F, both were recognized by MITOS and tRNAscan-SE but not supported by BlastN. It is possible that these tRNAs sequences are so novel that there is no sequence to compare them with, or an error may have occurred during assembly or annotation; for these reasons we decided to leave them as unconfirmed until other mitogenomes of the family are reported to corroborate or invalidate their presence through Romanova et al. (2016, 2020) protocol.
Table 3
Comparative table of the differences between R. adani and other brachyuran species.
Organism
Size
Gene number
tRNAs
GC % composition
Reference
Rodriguezia adani
17,561
34
19
26.4
This study
Orithya sinica
15,568
37
22
30.5
Zhong et al., 2018
Chionoecetes japonicus
16,060
37
22
28.2
Kim et al., 2020
Callinectes sapidus
16,263
37
22
30.9
Place et al., 2005
Eriocheir japonica
16,352
37
22
28.4
Wang et al., 2016
Maja crispata
16,592
37
22
29.7
Basso et al., 2017
Myra affinis
15,349
37
22
29.4
Basso et al., 2017
Gandalfus puia
15,548
37
22
30.1
Kim et al., 2016
Pilumnus vespertilio
16,222
37
22
28.9
Tan et al., 2018
Epixanthus frontalis
15,993
37
22
34.1
Tan et al., 2018
Matuta victor
15,782
37
22
29.9
Huang et al., 2021
Calappa bilineata
15,606
37
22
31.3
Lu et al., 2020
Ovalipes punctatus
16,084
37
22
31.9
Unpublished
Figure 3. Coverage through the length of the mitochondrial genome of Rodriguezia adani, obtained with the protocol by Ni et al. (2023). The vertical axis indicates the depth (number of times that one nucleotide was read) and horizontal axis indicates the nucleotide position within the mitochondrial genome.
Regarding the phylogenetic position of R. adani, it was recovered as the sister group of the Orithyiidae, forming a clade that is the sister group to the rest of the subsection Heterotremata (Fig. 4).
Figure 4. Diagram of the complete mitochondrial genome of Rodriguezia adani Álvarez & Villalobos, 2018 (PQ064124). Genes in the heavy strand are on the external side and the low strand are on the inner side. Colors: tRNAs in blue, rRNAs in red and PCGs in green, pink and yellow.
Our results coincide with those of Wolfe et al. (2023), who using sequences of 10 genes, produced a phylogeny where the Orithyiidae and the Trichodactylidae are described as sister groups. Other coincidences with Wolfe et al. (2023) phylogenetic tree are the polyphyletic origin of primary freshwater crabs, Potamidae related to Thoracotremata, while Oregoniidae, Mithracidae, and Majidae are grouped in Majoidea and Portunidae, Ovalipidae and Geryonidae are grouped in Portunoidea. The phylogenetic relationships of the remaining species were not the aim of this work.
Figure 5. Phylogenetic tree resulting from the analysis of a concatenated matrix of 15 genes (13 PCGs and 2 ribosomal subunits) of the mitochondrial genome of Rodriguezia adani (GenBank: PQ064124). Branch supports bootstrap/posterior probability. Color of lateral lines, blue: freshwater groups; black: Thoracothremata; green: Heterotremata.
The low branch supports for these clades, likely due to a limited taxon sampling, preclude further interpretation. Future studies with more comprehensive sampling as in Tsang et al. (2014), Tan et al. (2019) or Wolfe et al. (2023), are needed to resolve these relationships with confidence (Nabhan & Sakar, 2012; Som, 2015).
Acknowledgements
We thank Ricardo Grande and Alejandro Sánchez for their assistance and advise during the genomic libraries’ construction and sequencing at the Unidad Universitaria de Secuenciación Masiva y Bioinformática, Instituto de Biotecnología, UNAM. This paper is part of the requirements for the Doctoral degree at Posgrado en Ciencias Biológicas, UNAM for EGMJ. EGMJ thanks Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías for the doctoral scholarship granted 2020-000013-01NACF-12928. Óscar Pérez Flores offered important advice during the phylogenetic analyses, which are greatly appreciated. Sandra Vera offered advice during the assembly and annotation which are greatly appreciated. José Luis Villalobos Hiriart, Kevin Madrigal and Josselyne Santillán for their help in the collection of the specimen; to the reviewers Ricardo Grande, Marco Solano and Carlos Pedraza for their interest in this work and their valuable comments. Finally, we thank Cristian Cervantes from the UniSSE, IB-UNAM. Funds were provided by Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica, Dirección General de Asuntos del Personal Académico, Universidad Nacional Autónoma de México grant IV200122 awarded to FA.
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Characterization and ordination of the Juniperus angosturana scrub in the Mezquital Valley, Hidalgo
Sarahí Flores-Martínez a, Ro Linx Granados-Victorino b, Diódoro Granados-Sánchez a, *, Enrique Guízar-Nolazco a, Alejandro Corona-Ambriz a, Saúl Castañeda-Díaz b y Joaquín Parra-Álvarez c
a Universidad Autónoma Chapingo, División de Ciencias Forestales, Carretera México-Texcoco, Km 38.5, 56230 Chapingo, Texcoco, Estado de México, México
b Universidad Autónoma Chapingo, Área de Biología, Departamento de Preparatoria Agrícola, Carretera México-Texcoco Km 38.5, 56230 Chapingo, Texcoco, Estado de México, México
c Universidad Autónoma Chapingo, Área de Agronomía, Departamento de Preparatoria Agrícola, Carretera México-Texcoco, Km 38.5, 56230 Chapingo, Texcoco, Estado de México, México
*Autor para correspondencia: dgranadoss@chapingo.mx (D. Granados-Sánchez)
Recibido: 13 julio 2025; aceptado: 22 octubre 2025
Resumen
Juniperus angosturana R.P. Adams, es una especie endémica de México que ha sido escasamente estudiada desde una perspectiva ecológica. Su límite sur de distribución geográfica se ubica en el Valle del Mezquital, una región con fuerte presión antrópica. Bajo este contexto, en este estudio se analizó la composición y estructura de las comunidades dominadas por Juniperus angosturana, con el fin de comprender los factores ambientales que influyen en su fisonomía. Para describir la estructura de la vegetación de estas comunidades, se empleó el método de cuadrantes centrados en un punto, mediante el cual se calcularon los valores estructurales de especies arbustivas y arbóreas. La delimitación de asociaciones vegetales se realizó mediante un análisis de agrupamiento. Así mismo, se aplicó un análisis de correspondencias canónicas para evaluar la influencia de variables ambientales y edáficas en la estructura y la composición florística. Como resultados, se identificaron 4 asociaciones dominadas por Juniperus angosturana, cuya diferenciación estructural mostró una alta correlación con las características del suelo, en particular con la textura, concentraciones de calcio, potasio y fósforo, así como con el pH.
Palabras clave: Asociaciones vegetales; Zonas áridas; Sinecología; Enebro; Análisis estructural
Abstract
Juniperus angosturana R.P. Adams is a species endemic to Mexico that has been little studied from an ecological perspective. Its southern geographical distribution limit is located in the Mezquital Valley, a region subject to strong anthropogenic pressure. In this context, this study analyzed the composition and structure of communities dominated by J. angosturana in order to understand the environmental factors that influence their appearance. To describe the vegetation structure of these communities, the point-centered quadrant method was used to calculate the structural values of shrub and tree species. Plant associations were delimited using cluster analysis. Likewise, a Canonical Correspondence Analysis was applied to evaluate the influence of environmental and edaphic variables on the structure and floristic composition. As a result, 4 associations dominated by Juniperus angosturana were identified, whose structural differentiation showed a strong correlation with soil characteristics, particularly texture, calcium, potassium, and phosphorus concentrations, as well as pH.
La vegetación asociada a climas áridos y semiáridos se distribuye en varias regiones que abarcan más de la mitad del territorio mexicano (Pérez-Aguilar et al., 2021). Estas regiones presentan una gran diversidad de matorrales cuya composición y estructura varían de una zona a otra, y son ecosistemas clave para la conservación de la biodiversidad. En todos los tipos de matorrales destacan las formas de vida arbustivas por su dominancia, biomasa y su efecto en el ambiente y otras especies (González-Medrano, 2012; Rzedowski, 2006).
En términos ecológicos las especies de Juniperus L. desempeñan un papel fundamental en las zonas áridas, ya que contribuyen a la formación, protección y retención del suelo (Allegrezza et al., 2016; Romo et al., 2012), así como a la conservación de la biodiversidad al funcionar como refugio o como alimento para la fauna silvestre (Fonseca, 2006). Además, dichas especies facilitan la germinación de semillas de otras plantas al formar sitios seguros de germinación o “islas de recursos” (Miwa y Reuter, 2010; Villanueva-Díaz et al., 2016). Su alta adaptabilidad a condiciones ambientales adversas —como la tolerancia a las sequías, al fuego, a temperaturas extremas o la capacidad de crecer en suelos pobres— las convierte en especies clave para la restauración ecológica (Herrerías y Nieto, 2020).
Juniperus angosturana R.P. Adams (sinónimo: Juniperus monosperma var. gracilis Mart) es una especie arbustiva endémica de México con copas irregulares o redondeadas, que puede alcanzar hasta 2 m de altura y en condiciones idóneas específicas, hasta 7 m. Se desarrolla en regiones de clima templado semiseco, donde forma parte de pastizales, matorrales y bosques bajos escuamifolios (Rzedowski, 2006). Su distribución altitudinal varía entre 1,300 y 2,000 m snm y abarca la fachada occidental de la sierra Madre Oriental desde Coahuila y Nuevo León y el altiplano mexicano en San Luis Potosí y Guanajuato —donde establece asociaciones vegetales con Pinus cembroides Zucc. subsp. cembroides Zucc., particularmente en zonas afectadas por disturbios ecológicos (Estrada-Castillón et al., 2014)— hasta Hidalgo, en el Valle del Mezquital, límite sur de su distribución.
El Valle del Mezquital se ha caracterizado por una intensa actividad humana y cambios en el uso de suelo, lo cual ha provocado una disminución significativa de la cobertura forestal. Entre las causas principales se encuentran el sobrepastoreo, la labranza postcosecha y el manejo inadecuado del suelo agrícola (Hernández-González et al., 2018). Dado que las zonas áridas y semiáridas son especialmente sensibles al disturbio antropogénico (González-Medrano, 2012), es importante conocer la dinámica ecológica de estos matorrales con la finalidad de evitar su degradación progresiva. La caracterización y ordenación de los matorrales dominados por J. angosturana constituye una necesidad para analizar los factores que determinan su estructura y composición florística, a su vez, desarrollar estrategias pertinentes de manejo, conservación y aprovechamiento racional de la especie y de los ecosistemas en los que se encuentra.
El objetivo del presente trabajo fue caracterizar las asociaciones vegetales dominadas por J. angosturana en el Valle del Mezquital, Hidalgo, y por medio de la técnica de ordenación, definir la relación entre la estructura y los factores ambientales y edáficos. El estudio también proporciona bases técnicas y ecológicas para orientar las acciones concretas de conservación y manejo sustentable de los matorrales donde esta especie actúa como elemento estructural dominante.
Materiales y métodos
La presente investigación se realizó en el límite sur de la distribución geográfica de J. angosturana (GBIF, 2023; Natusfera, s.f.; EncicloVida, s.f.). Las localidades de colecta fueron La Florida y San Cristóbal, pertenecientes al municipio Cardonal, ubicado en el Valle del Mezquital, al noreste de Hidalgo (fig. 1), dentro del altiplano central mexicano y de la provincia fisiográfica de la Meseta Neovolcánica, ahora Faja Volcánica Transmexicana (Hernández-Armas, 2016). La zona de estudio se localiza a una altitud promedio de 2,040 m snm, los climas presentes son el templado subhúmedo con lluvias en verano (Cw1), el semiseco templado (BS1kw), semiseco semicálido (BS0hw) y seco semicálido (BS0h). La vegetación de la zona se compone de bosques de pino y encino, matorral xerófilo, pastizales y áreas destinadas a la agricultura (INEGI, 2009, en Guzmán-Cornejo et al., 2015). La precipitación anual promedio es de 409 mm y la temperatura promedio es de 18 °C (Hernández-Armas, 2016).
Se realizaron recolectas botánicas generales estacionales durante los meses de octubre de 2023 y abril, junio, agosto y noviembre de 2024, con la finalidad de obtener muestras de especies perennes y anuales. Los ejemplares recolectados fueron herborizados para su determinación taxonómica mediante el uso de claves especializadas y consultas con expertos, para finalmente ser integrados a colecciones de herbario. En total se revisaron 143 ejemplares recolectados por Enrique Guízar Nolazco (núms. 7981-8123, excepto 7997 y 8022) y Rubén Herrera Flores, depositados en CHAP herbario de la Universidad Autónoma Chapingo, con duplicados de 7981, 7982, 7986, 7992, 7994, 7995, 8015, 8023, 8025, 8027, 8030, 8031, 8039, 8040, 8042, 8045, 8069, 8072, 8076, 8080, 8082, 8083, 8111, 8113, 8114, 8115a y 8119 en UAMIZ herbario de la Universidad Autónoma Metropolitana Unidad Iztapalapa. La nomenclatura de los nombres científicos se basó en la propuesta del International Plant Name Index (IPNI, 2025).
Figura 1. Ubicación de la zona de estudio y de los sitios de muestreo en las localidades La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo (Carta fisonómica-estructural de la vegetación de México, Portal de Información Geográfica-Conabio, 2023).
En total se tomaron muestras de 8 sitios, 4 en cada localidad. Para cada sitio se registraron las siguientes variables ambientales: exposición —determinada con una brújula —, pendiente del terreno —medida con un clinómetro Suunto— y altitud —registrada mediante una antena GPS Garmin eTrex 20x. Para determinar las condiciones edáficas, en cada sitio se recolectó una muestra de ~1 kg de suelo, previa remoción de la hojarasca superficial. Posteriormente, se realizaron las siguientes determinaciones: pH, materia orgánica (MO), nitrógeno inorgánico (N inorg.), fósforo asimilable (P), potasio (K), calcio (Ca), hierro (Fe), así como los porcentajes de limo, arena y arcilla, con los que se determinó la textura del suelo (TEX).
Para describir la estructura de la vegetación se utilizó el método de cuadrantes centrados en un punto utilizado por Granados-Victorino et al. (2015), método que no depende de un área delimitada y se basa en las distancias entre puntos fijos y los individuos más cercanos en cada cuadrante. En cada sitio se establecieron 10 puntos de muestreo, con una distancia de 20 m entre sí. En cada punto de muestreo se trazaron, de manera teórica, 4 cuadrantes a partir de ejes perpendiculares (en forma de plano cartesiano). En cada cuadrante se registró la distancia del punto central hasta el árbol o arbusto más cercano con una altura igual o mayor a un metro.
Los individuos registrados fueron identificados taxonómicamente, se midió su altura, con un flexómetro para aquellos individuos menores a 1.50 m y con un clinómetro para especies de porte mayor. Se estimó la cobertura de copa promediando 2 medidas de diámetro de la copa, tomadas en dirección norte-sur y este-oeste. Con los datos obtenidos y siguiendo la metodología propuesta por Cottam y Curtis (1956), modificada por Alanís-Rodríguez et al. (2020), se calcularon los valores relativos de abundancia, dominancia y frecuencia de las especies registradas. A partir de estos parámetros, se estimó el índice de valor de importancia relativa (VIR), el cual permite determinar la relevancia estructural de cada especie en la comunidad.
Con base en el VIR de cada especie, se realizó un análisis de agrupamiento utilizando el índice de disimilitud de Bray-Curtis como medida de distancia y el algoritmo de unión por promedio entre grupos (UPGMA). El índice de disimilitud de Bray-Curtis se utiliza para comparar la composición entre sitios e ignora los casos en los que las especies están ausentes, utiliza los valores del VIR (Rocha-Ramírez et al., 2013). A partir de un nivel de corte de 55% de la información retenida en el dendrograma, se identificaron los sitios con mayor semejanza estructural y se definieron las asociaciones vegetales dominantes.
La nomenclatura de las asociaciones vegetales se definió con base en las especies con mayor VIR en los grupos formados a partir del análisis de agrupamiento, así como la fisionomía general de las especies dominantes, de acuerdo con lo sugerido en González-Medrano (2004). Para representar gráficamente la estructura vertical y horizontal de estas asociaciones, se elaboró un perfil semirrealista de la vegetación del transecto de estudio, tomando como base los valores estructurales obtenidos. El análisis de ordenación se realizó mediante un análisis de correspondencias canónicas (ACC), que consiste en una regresión múltiple donde se relacionó el VIR de las especies con las variables ambientales y edáficas registradas. Ambos análisis se llevaron a cabo con el software Past v.4.03 (Hammer et al., 2001).
Resultados
Se identificaron 89 especies en las comunidades vegetales con presencia de Juniperus angosturana en el Valle del Mezquital, que pertenecen a 73 géneros y 41 familias. Las familias más representativas fueron Asteraceae con 10 especies, seguida de Cactaceae y Fabaceae con 8 especies cada una y Asparagaceae con 7. La localidad con mayor riqueza especifica fue La Florida con 72 especies.
Juniperus angosturana se desarrolla principalmente en matorrales, aunque también puede figurar como un elemento importante en los bosques de coníferas de las zonas semiáridas, en especial en aquellos dominados por pinos piñoneros y enebros (Juniperus spp.) (Romme et al., 2009). En las localidades del Valle del Mezquital se reconocieron 4 tipos de vegetación (tabla 1) y 4 asociaciones vegetales con presencia de J. angosturana, las cuales presentan diferencias estructurales y florísticas (figs. 2, 3). A continuación, se describen las características de cada una de dichas asociaciones: a) asociación Juniperus angosturana – Juniperus flaccida Scltdl. Esta asociación vegetal se encuentra en la localidad de San Cristóbal, en específico en los sitios 4 y 5, en altitudes que oscilan entre 1,970 y 2,070 m, con pendiente de 10 a 20% y exposición noroeste. Los suelos son pedregosos, con textura franco-arcillosa, moderadamente alcalinos, con bajo contenido de MO y altas concentraciones de Ca. La comunidad vegetal es codominada por Juniperus angosturana y Juniperus flaccida Schltdl., con VIR de 44% y 31%, respectivamente. Se trata de un bosque con baja densidad arbórea, en el que predominan los individuos de porte bajo que no sobrepasan 4 metros de altura, en cuyos claros es común la presencia de arbustos. Otras especies que se pueden encontrar son Agave lechuguilla Torr., Agave salmiana Otto ex Salm-Dyck var. salmiana, Berberis pallida Benth., Calliandra eriophylla Benth., Cercocarpus fothergilloides Kunth, Chrysactinia mexicana A. Gray, Cylindropuntia imbricata (Haw.) F.M. Knuth, Dalea bicolor Humb. et Bonpl. ex Willd., Dalea greggii A. Gray, Echinocactus platyacanthus Link et Otto, Ferocactus latispinus (Haw.) Britton et Rose, Flourensia resinosa (T. S. Brand.) Blake, Malacomeles denticulata (Kunth) Decne., Mammillaria sp., Milla biflora Cav., Opuntia rastrera F. A. C. Weber, Opuntia robusta H.L. Wendl. ex Pfeiff., Opuntia tomentosa Salm-Dyck, Perymenium mendezii DC., Sanvitalia procumbens Lam., Senna guatemalensis var. hidalgensis H. S. Irwin et Barneby, Thymophylla setifolia Lag., así como algunos individuos de Pinus cembroides Zucc, en las zonas más elevadas (fig. 4A). b) Asociación Juniperus angosturana – Pinus cembroides, se registró en los sitios 6 y 8 de San Cristóbal, entre 1,985 y 2,080 m snm, en pendientes de 10 a 30% y exposición noreste. Juniperus angosturana presentó el VIR más alto con 29%. El estrato arbóreo está compuesto por P. cembroides (21%), J. flaccida (5%) y Pinus pinceana Gordon et Glend (4.6%), conforman un dosel cuya altura varía entre 2 y 6 m. Además de J. angosturana, el estrato arbustivo incluye Ephedracompacta Rose, Rhus schiedeana Schltdl. y Rhus standleyi F.A. Barkley. Asimismo, se registraron especies como Agave lechuguilla, Agave salmiana var. salmiana, Chrysactinia mexicana, Electranthera mutica (DC.) Mesfin, D.J. Crawford et Pruski, Cylindropuntia imbricata, Dalea greggii, Flourensia resinosa, Milla biflora, Opuntia rastrera, Opuntia tomentosa, Perymenium mendezii, Sanvitalia procumbens, y Zinnia peruviana (L.) L. Este matorral se desarrolla sobre suelos pedregosos, con pH alcalino, de textura franco-arcillo-arenosa y con una elevada concentración de Ca y Fe (fig. 4B). c) Juniperus angosturana – Nolina parviflora. En esta asociación vegetal J. angosturana es la especie estructuralmente dominante, con un VIR de 57%. Coexiste con P. cembroides, Nolina parviflora (Kunth) Hemsl, J. flaccida, Dasylirion longissimum Lem., Agave salmiana Otto ex Salm-Dyck var. salmiana, Echinocactus platyacanthus Link et Otto, Ephedra compacta y diversas especies del género Opuntia. El estrato arbustivo no supera los 2 m de altura y en el estrato arbóreo los individuos más grandes llegan a medir hasta 5 m. Esta asociación, se distribuye en La Florida, específicamente en los sitios 1, 2 y 7, en altitudes que van de 1,800 a 2,050 m, en laderas con exposición sureste y pendientes de 7 a 30%. Los suelos son poco desarrollados, cuentan con una delgada capa de hojarasca y fragmentos sueltos de roca; presentan bajo contenido de materia orgánica (8%) y un pH de entre 7 y 8, y son ricos en Ca y K. Otras especies registradas fueron: Agave lechuguilla, Chrysactinia mexicana, Electranthera mutica, Cylindropuntia imbricata, Dahlia coccinea Cav., Dalea bicolor, Flourensia resinosa, Gochnatia hypoleuca (DC.) A. Gray, Lysiloma sp., Mammillaria sp., Milla biflora, Opuntia rastrera, Opuntia tomentosa, Perymenium mendezii DC., Sanvitalia procumbens, Sclerocarpus uniserialis, Thymophylla setifolia y Zinnia peruviana (fig. 4C). d)Juniperus angosturana – Neltuma laevigata, se registró únicamente en un sitio de muestreo, en La Florida, a una altitud promedio de 2,000 m, con una pendiente de 25% y exposición sureste. El suelo presenta una textura fina franco-arcillosa, y una alcalinidad ligera. Según los VIR, Juniperus angosturana es la especie dominante en el estrato arbustivo, con valor de 36% y alturas inferiores de 3 m. En el estrato arbóreo, con un dosel de entre 2 y 6 m de altura, destacan las especies Senegalia berlandieri Benth. y Neltuma laevigata (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Britton y Rose,con un VIR conjunto de 25%. Asimismo, se registraron otras especies como Cylindropuntia imbricata, Cylindropuntia leptocaulis (DC.) F.M. Knuth, Milla biflora, Opuntia tomentosa, Jatropha dioica Sessé ex Cerv., Sclerocarpus uniserialis (Hook.) Benth. et Hook. f. ex Hemsl., Senna holwayana (Rose) I. et Barneby, Uncaria tomentosa (Willd. ex Schult.) DC. y Yucca filifera Chabaud (fig. 4D).
Tabla 1. Clasificación de la vegetación en las localidades La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo, basado en lo propuesto por González-Medrano (2004) para la vegetación de México.
Categoría
Denominación
Tipo de vegetación
Bosque bajo de escuamifolios
Asociación
Juniperus angosturana – Juniperus flaccida
Tipo de vegetación
Bosque bajo de aciculifolios
Asociación
Juniperus angosturana – Pinus cembroides
Tipo de vegetación
Matorral mediano rosetófilo
Asociación
Juniperus – Nolina parviflora
Tipo de vegetación
Bosque bajo espinoso
Asociación
Juniperus angosturana – Neltuma laevigata
Con base en los resultados obtenidos, las especies de mayor importancia ecológica en las asociaciones, además de J. angosturana, son P. cembroides, J. flaccida, Senegalia berlandieri,Neltumalaevigata y Nolina parviflora,las cuales presentaron los valores de importancia relativa más altos en las localidades muestreadas. La dominancia de Juniperus angosturana se atribuye principalmente a su mayor diámetro de copa, más que a su altura, en comparación con las demás especies representativas. La asociación más observada fue la de Pinus cembroides-Juniperus angosturana, seguida de J. angosturana-J. flaccida. Ambas asociaciones vegetales presentan acompañamiento de especies típicas de matorral xerófilo.
Figura 2. Dendrograma de similitud estructural entre sitios con presencia de Juniperus angosturana en La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo. A, Asociación Juniperus angosturana – Juniperus flaccida; B, asociación Juniperus angosturana – Pinus cembroides; C, asociación Juniperus angosturana – Nolina parviflora; D, asociación Juniperus angosturana – Neltuma laevigata.
La diferenciación estructural de las asociaciones vegetales dominadas por Juniperus angosturana responde a un origen multifactorial y tiene una correlación, principalmente, con las variables edáficas (fig. 5). De acuerdo con el ACC, esta variación es explicada en 67.13% por los 3 primeros ejes (tablas 2, 3). Las variables edáficas más influyentes son la textura del suelo —en especial los porcentajes de arena y limo—, las concentraciones de Ca, K y P, así como el pH del suelo (tabla 2).
Discusión
Juniperus angosturana es una especie endémica de México, cuya distribución se extiende desde Coahuila hasta Hidalgo. A pesar de su relevancia estructural en las zonas áridas del país, ha sido escasamente estudiada desde una perspectiva ecológica. La mayoría de los trabajos publicados se han centrado en análisis filogenéticos (Adams, 1994; Adams y Schwarzbach, 2013; Uckele et al., 2021), en descripciones morfológicas y de distribución geográfica (Estrada-Castillón et al., 2014; Farjon, 2019; González-Elizondo et al., 2012), así como en modelos de distribución potencial o modelados de panbiología (Cartereau, et al., 2023; Morales-Garduño et al., 2021; Trájer, 2023).
Figura 3. Perfil fisonómico de la vegetación del transecto donde se desarrolla Juniperus angosturana en las localidades La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo. 1, Senegalia berlandieri; 2, Agave salmiana; 3, Berberis pallida; 4, Cylindropuntia imbricata; 5, Dasylirion longissimum; 6, Echinocactus platyacanthus; 7, Juniperus angosturana; 8, Juniperus flaccida; 9, Malacomeles denticulata; 10, Lysiloma sp.; 11, Neltuma laevigata; 12, Nolina parviflora; 13, Opuntia sp.; 14, Echinocactus platyacanthus; 15, Pinus cembroides; 16, Pinus pinceana; 17, Rhus sp.; 18, Yucca filifera.Figura 4. Fotografías de las asociaciones encontradas en las localidades La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo. A, Asociación Juniperus angosturana – Juniperus flaccida; B, asociación Juniperus angosturana – Pinus cembroides; C, asociación Juniperus angosturana – Nolina parviflora; D, asociación Juniperus angosturana – Neltuma laevigata.Figura 5. Triplot del análisis de correspondencias canónicas (CCA) de los 8 sitios, las especies y las variables ambientales en las localidades de muestreo. La Florida y San Cristóbal en Cardonal, Hidalgo.
Tabla 2. Resultados de los primeros tres ejes de ordenación, de acuerdo con el análisis de correspondencias canónicas (ACC). Los valores en negritas señalan las variables con mayor peso en la definición de cada eje.
Variable
Eje 1
Eje 2
Eje 3
pH
-0.172893
0.36276
0.658303
MO (%)
-0.202071
-0.429806
-0.215268
N inorg.
-0.199503
-0.173747
0.0472623
P
-0.0753286
-0.282118
-0.700757
K
-0.218424
-0.638471
-0.248518
Ca
-0.339255
0.552029
-0.00914643
Fe
-0.377003
0.110919
-0.443264
arena (%)
-0.766368
-0.357859
0.0899592
limo (%)
0.526614
0.338468
0.363971
arcilla (%)
0.381808
0.105922
-0.377697
Pendiente
0.20969
-0.463599
0.177899
Exposición
0.18856
0.0252954
-0.295587
Altitud
-0.174418
0.0991923
-0.140028
Distribución de la varianza
Valor propio
0.521
0.364
0.318
Varianza (%)
29.07
20.3
17.76
Varianza acumulada (%)
29.07
49.37
67.13
Tabla 3. Matriz de correlación entre las variables ambientales y edáficas de los sitios de muestreo en Cardonal, Hidalgo. La parte superior derecha muestra los valores del coeficiente de correlación (r) y la diagonal inferior izquierda los valores de p (< 0.05)
pH
MO (%)
N (inorgánico)
P
K
Ca
Fe
arena %
limo %
arcilla %
Pendiente
Exposición
pH
-0.06
-0.26
-0.43
-0.67
-0.09
-0.17
-0.23
-0.01
0.24
-0.04
-0.53
MO (%)
0.85
-0.56
0.75
0.56
-0.06
0.57
0.3
-0.69
0.24
-0.07
-0.58
N (Ing)
0.39
0.05
-0.55
0.11
-0.12
-0.12
0.27
0.37
-0.56
0.04
0.22
P
0.14
0.00
0.05
0.42
-0.09
0.39
0.16
-0.77
0.44
0.11
-0.08
K
0.01
0.05
0.72
0.15
0.21
0.48
0.63
-0.22
-0.48
-0.14
0.01
Ca
0.77
0.85
0.70
0.77
0.49
0.47
0.31
0.25
-0.51
-0.71
0.17
Fe
0.58
0.04
0.70
0.19
0.10
0.11
0.21
-0.24
-0.04
-0.77
-0.40
arena %
0.45
0.32
0.37
0.60
0.02
0.30
0.49
-0.42
-0.71
-0.08
-0.09
limo %
0.97
0.01
0.21
0.00
0.47
0.41
0.43
0.15
-0.34
-0.29
0.31
arcilla %
0.43
0.43
0.05
0.13
0.10
0.07
0.90
0.01
0.26
0.13
-0.15
Pendiente
0.90
0.82
0.90
0.72
0.65
0.01
0.002
0.80
0.34
0.67
0.08
Exposición
0.06
0.04
0.47
0.80
0.97
0.58
0.18
0.77
0.30
0.62
0.80
Altitud
0.23
0.21
0.00
0.07
0.32
0.80
0.82
0.70
0.02
0.02
0.60
0.95
En cuanto al hábitat de J. angosturana y las comunidades vegetales de las que forman parte, Estrada-Castillón et al. (2015) asocian la especie con ecotonos entre pastizales halófitos y bosques de pino piñonero en la región centro-sur de Nuevo León y el norte de Tamaulipas. De manera similar, Salinas-Rodríguez et al. (2013) reporta su presencia en el ecotono entre chaparrales de encino (Quercus spp.) y bosques de Pinus cembroides en el cañón de Iturbide, Nuevo León.
En Hidalgo, J. angosturana se desarrolla principalmente en la zona de transición entre el bosque de pino piñonero y el matorral rosetófilo. Lo anterior sugiere que es una especie ecotonal, con ventajas competitivas en los límites de la distribución de las asociaciones vegetales circundantes, es decir, en los márgenes de tolerancia física y competitiva de otras especies (Ortiz-Colín y Hulshof, 2024). Su relevancia estructural disminuye conforme se adentra en ecosistemas más homogéneos; sin embargo, se registraron matorrales dominados por J. angosturana, lo que indica una amplia tolerancia ecológica, tanto en términos edáficos como de humedad, temperatura y exposición solar. Esto refuerza su papel como especie clave en zonas de transición y como posible estabilizador ecológico en ambientes semiáridos.
Los matorrales dominados por J. angosturana forman un hábitat heterogéneo, que incluye microhábitats favorables bajo el dosel de los individuos, gracias a su amplia ramificación y extensión de copa. Esta estructura proporciona protección de la radiación solar y facilita la retención de suelo y humedad que beneficia a numerosas especies asociadas. No obstante, debido a los grandes volúmenes de enraizamiento de los arbustos, los espacios intermedios entre individuos suelen presentar escasa vegetación (Chambers et al., 1999; Rostamikia et al., 2024). Dicha configuración espacial da lugar a un mosaico ecológico conocido como islas de fertilidad o islas de recursos, que son esenciales para el mantenimiento de la biodiversidad en los ecosistemas áridos y semiáridos (Magaña et al., 2023).
En el Valle del Mezquital, la asociación más frecuente con presencia de Juniperus angosturana se presentó en los bosques de piñón-enebro, lo que evidencia una clara coexistencia con P. cembroides. No obstante, es necesario intensificar los estudios para confirmar si este patrón se mantiene en otras regiones. Romme et al. (2009) mencionan la presencia de 3 variantes para esta asociación: bosques persistentes de piñón-enebro, matorrales boscosos de piñón-enebro y sabanas de piñón-enebro, de los cuales solo los primeros 2 fueron registrados en el Valle del Mezquital, lo cual indica una alta variación estructural y ecológica.
En México, la asociación piñón-enebro se ha reportado en zonas de transición en regiones semiáridas. A pesar de su similitud estructural, existe una clara diferenciación florística regional y solo se había documentado la presencia de J. angosturana en Nuevo León, ahora se reporta también en Hidalgo. Por ejemplo, Parra-Álvarez et al. (2022) identificaron en la región central de San Luis Potosí, una asociación integrada por 5 especies de pinos piñoneros (Pinus cembroides, P. pinceana, P. nelsonii, P. discolor y P. johannis) y Juniperus flaccida. De forma similar, Granados-Victorino et al. (2015) reportaron esta asociación en la zona árida poblano-veracruzana, donde Pinuscembroides subsp. orizabensis D.K. Bailey codomina con J. flaccida o J. deppeana Steud; de la Fuente Solís et al. (2025) describen un bosque caracterizado por la asociación Pinus cembroides y Juniperus monosperma (Engelm.) Sarg. en Galeana, Nuevo León.
Baker y Shinneman (2004) señalan que estos bosques están aumentando en densidad y expandiéndose hacia los matorrales y pastizales adyacentes, los cuales frecuentemente se consideran ecosistemas en proceso de degradación. Se ha documentado que la remoción de individuos de Pinus o Juniperus puede favorecer el incremento de cobertura de gramíneas (Almalki et al., 2023), lo que representa un beneficio potencial para la ganadería. Sin embargo, esta práctica tiene efectos negativos en la biodiversidad debido a que los árboles y arbustos de las zonas áridas y semiáridas proporcionan sitios seguros de germinación, así como refugio y hábitat para numerosas especies (Allegrezza et al., 2016).
Por medio del ACC se determinó que la textura del suelo, en particular los porcentajes de arena y limo, constituye uno de los principales factores que explican la diferenciación estructural entre la vegetación de los sitios analizados. La proporción relativa de arena, limo y arcilla influye directamente en la fertilidad del suelo, pues regula la retención de humedad y la disponibilidad de nutrientes esenciales para las plantas. Los suelos con textura arenoso-limosa, al presentar baja capacidad de retención de agua y de intercambio catiónico, favorecen el desarrollo de especies adaptadas a ambientes con pulsos breves de humedad (Rostamikia et al., 2024). Por lo tanto, el gradiente de textura puede inducir un recambio en la composición vegetal, puesto que refleja la capacidad diferencial de las especies para tolerar condiciones edáficas restrictivas.
Las variaciones en la textura podrían deberse a la erosión eólica e hídrica provocadas por las diferencias en la exposición, la pendiente y la abundancia de las especies vegetales (Shukla et al., 2006). Por ejemplo, en el desierto chihuahuense, las diferencias estructurales en las asociaciones vegetales se presentan debido a los ligeros cambios en la orografía, la elevación, el ángulo de la pendiente, la rocosidad y las variables edáficas en la distribución de las plantas en ambientes áridos (Estrada-Castillón et al., 2015; Granados-Sánchez et al., 2011).
En el Valle del Mezquital, las asociaciones vegetales dominadas por especies del género Juniperus, como los bosques de enebro y los matorrales submontanos de Juniperus angosturana, se desarrollan sobre suelos de origen calcáreo, con pH alcalino y altos contenidos de Fe, características típicas de zonas áridas donde la escasez de agua limita los procesos de lixiviación, además de generar la formación de costras de carbonatos o de yesos (Hag Husein et al., 2021). Diversas especies del género Juniperus han sido reconocidas por su notable capacidad de adaptación a suelos pobres en nutrientes, poco profundos y con baja retención de humedad. Además, presentan una respuesta eficiente ante cambios ambientales, así como una alta tolerancia al fuego y a perturbaciones de origen antrópico (Cuevas-Guzmán et al., 2023; Rosas-Chavoya et al., 2016).
De forma general, las variantes estructurales de las comunidades dominadas por J. angosturana está influenciada por la textura del suelo, la disponibilidad de nutrientes y el pH, que suele ser alcalino y en menor medida, la pendiente del terreno. Por ejemplo, la asociación Juniperus angosturana-Pinus cembroides se desarrolla en suelos poco profundos con alto contenido de arena, pH ligeramente alcalino y mayor contenido de materia orgánica y, por ende, una mayor disponibilidad de nutrientes respecto a las demás asociaciones analizadas. En contraste, la asociación de matorral de Juniperus angosturana–Nolina parviflora se presentan en suelos con texturas más finas, que retienen mejor el agua superficial, sin embargo, muestran baja acumulación de materia orgánica y mayor exposición solar, lo que genera condiciones edáficas más restrictivas para el desarrollo arbóreo.
El presente estudio representa una contribución significativa al conocimiento ecológico de J. angosturana al proporcionar información básica sobre su hábitat y las asociaciones vegetales que conforma. Los resultados confirman que es una especie ecotonal, cuya plasticidad ambiental le permite establecerse y adaptarse a condiciones edáficas y climáticas variables en zonas de transición entre bosques de pino piñonero y matorral rosetófilo. La presencia de J. angosturana en Hidalgo, relativamente lejos de su distribución previamente conocida, amplía el conocimiento sobre su rango ecológico y florístico, y subraya la necesidad de llevar a cabo más estudios regionales, con un enfoque en la restauración de dichos ecotonos.
Además, su hábito de crecimiento y cobertura favorecen la generación de islas de fertilidad, promueven la biodiversidad y contribuyen a la conectividad del paisaje al conformar corredores biológicos, que facilitan el flujo de especies entre ecosistemas fragmentados. La identificación de su preferencia por suelos de textura arenoso-limosa y de origen calcáreo, así como de la coocurrencia con P. cembroides en el Valle del Mezquital, aporta elementos clave para comprender la dinámica y la diferenciación florística de los ecosistemas áridos y semiáridos donde se desarrolla J. angosturana.
En conjunto, los resultados obtenidos en este trabajo constituyen una base técnica y ecológica sólida para orientar estrategias de conservación y manejo de matorrales donde J. angosturana actúa como especie estructuralmente dominante. La identificación de los factores edáficos y ambientales que determinan su distribución, así como el reconocimiento de las especies vegetales que la acompaña, proporcionan información fundamental para el diseño de acciones de restauración ecológica y el manejo adaptativo de los ecosistemas semiáridos donde esta especie se desarrolla.
Agradecimientos
Los autores agradecen a la Universidad Autónoma Chapingo, en particular a la Dirección General de Investigación, Posgrado y Servicio y a la División de Ciencias Forestales, por las facilidades y el apoyo institucional brindados para la realización de esta investigación; a la Secretaría de Ciencia, Humanidades, Tecnología e Innovación (Secihti) por la beca de posgrado número 4008144 otorgada a la primera autora durante el desarrollo de estos estudios. A los compañeros, Diego Carrillo Martínez, Ruth del Cid, así como al técnico Rubén Herrera Flores por su apoyo en el trabajo de campo y a Ana Rosa López Ferrari por su apoyo en la identificación taxonómica de algunos ejemplares en el Herbario UAMIZ. Finalmente, se agradecen las valiosas sugerencias y observaciones de los revisores, que contribuyeron significativamente a mejorar el contenido de este escrito.
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Diversidad genética de Oenothera drummondii (Onagraceae), una herbácea de dunas costeras: implicaciones ecológicas y evolutivas
Raquel Aurora Hernández-Espinosa a, Jorge González-Astorga a, *, Yessica Rico b, Juan B. Gallego-Fernández c
a Instituto de Ecología A.C., Red de Biología Evolutiva, Laboratorio de Genética de Poblaciones, Carretera Antigua a Coatepec No. 351, El Haya, 91073 Xalapa, Veracruz, Mexico
b Instituto de Ecología A.C., Centro Regional del Bajío, Red de Diversidad Biológica del Occidente Mexicano, Av. Lázaro Cárdenas No. 253, 61600 Centro, Pátzcuaro, Michoacán, Mexico
c Universidad de Sevilla, Departamento de Biología Vegetal y Ecología, Av. de la Reina Mercedes, 6, 41012 Sevilla, Spain
We studied the diversity and genetic structure of Oenothera drummondii Hook. (Onagraceae), a dune plant with a mixed reproductive system, across 9 populations using 10 microsatellite markers. Plant genetic diversity is governed by intrinsic factors (i.e., reproductive system and dispersal) and extrinsic factors (i.e., population fluctuations and founder effects). We found moderate to low genetic diversity, with southern populations showing lower diversity, and northern populations higher. A separate study on self-compatibility revealed higher selfing in the south and lower in the north, suggesting a latitudinal gradient that may reduce genetic diversity in southern populations. Peripheral populations showed reduced diversity and greater differentiation, likely due to increased isolation and limited gene flow. Central populations near the Texas origin exhibited the highest diversity. Populations from Baja California (O. drummondii subsp. thalassaphila) formed a genetically distinct group, suggesting a separate species. Overall, genetic patterns in O. drummondii genetic diversity reflect historical and ecological influences, including mating system variation, floral traits, and pollinator dynamics. These findings support hypotheses such as center-periphery dynamics and climate-driven historical processes (e.g., post-glacial expansion), which may shape the species’ genetic landscape and suggest possible local adaptations to environmental changes.
Evaluamos la diversidad y estructura genética de Oenothera drummondii Hook. (Onagraceae), planta de dunas costeras con sistema reproductivo mixto; se usaron 9 poblaciones y 10 marcadores microsatélites. La diversidad genética en plantas está influenciada por factores intrínsecos (dispersión y sistema reproductivo) y factores extrínsecos (fluctuaciones poblacionales y efecto fundador). Encontramos diversidad genética moderada a baja, con menor diversidad en poblaciones del sur (Ojoshal) y mayor en el norte (Bolívar). Un estudio complementario mostró mayor autocompatibilidad en Ojoshal y menor en Bolívar, sugiriendo un gradiente latitudinal con incremento de autocompatibilidad hacia el sur, con posible reducción de diversidad genética. Las poblaciones periféricas presentaron menor diversidad y mayor diferenciación, asociada a menor flujo génico y mayor aislamiento; las poblaciones centrales, cercanas al origen de la especie en Texas, mostraron mayor diversidad. Las poblaciones de Baja California (O. drummondii subsp. thalassaphila) formaron un grupo genético distinto, que podría representar a una especie separada. En conjunto, los patrones genéticos de O. drummondii reflejan procesos históricos y ecológicos relacionados con el sistema reproductivo, características florales y las dinámicas de polinización, lo cual podría significar adaptaciones locales a cambios ambientales, y patrones de distribución genética asociados con ellos, como la hipótesis de centro-periferia.
Genetic diversity may be considered a crucial factor in determining the ability of populations to adapt and evolve, thus increasing their evolutionary potential (He et al., 2024). Understanding the drivers of genetic variation among plant populations is essential in evolutionary biology as this diversity is the foundation for adaptive potential and long-term survival (Chung et al., 2023; Wright, 1969). In plants, the factors that shape genetic variation can be divided into: a) intrinsic biological properties (e.g., the genetic recombination system, including ploidy level, reproductive system, and meiotic behavior; the mode of dispersal and pollination; and the life form), and b) extrinsic dynamic processes (e.g., fluctuations in population size due to bottlenecks, founder effect, invasions, and changes caused by ecological succession) (Duminil et al., 2009). The reproductive system is the intrinsic biological property suggested to be the major driver of genetic diversity in plants (i.e., heterozygosity and population genetic differentiation) (Koelling et al., 2011; Wright, 1969), as it influences the mating patterns within a population by determining the extent to which selfing can occur (Charlesworth, 2006; Raduski et al., 2012). Self-incompatible populations, for instance, are composed of outcrossing plants with a predominantly outcrossing mating system. Conversely, in partially or completely self-compatible plants, the mating system can span from outcrossing to mixed mating to complete selfing (Holsinger, 1991).
Small, low-density populations experiencing habitat fragmentation and isolation, with limited mate or pollinator availability, exhibit increased propensity for self-fertilization (Devaux et al., 2014; Whitehead et al., 2018). In situations where self-fertilization is evolutionarily advantageous, selection will favor changes in traits that facilitate selfing (e.g., reductions in flower size, reduced nectar, pollen and reduced herkogamy) (Opedal, 2018; Shimizu & Tsuchimatsu, 2015; Sicard & Lenhard, 2011). These changes can have consequences at the genetic level, including elevated rates of inbreeding, a reduction in genetic diversity within populations, and increased genetic differentiation among populations (Barrett & Harder, 1996; Ingvarsson, 2002). Furthermore, a principal consequence of predominant self-fertilization is the reduction in heterozygosity and intra-population genetic diversity, coupled with an increase in inter-population differentiation, when compared to self-incompatible plants (Hamrick & Godt, 1996). In contrast, clonal species are expected to exhibit higher levels of heterozygosity than self-incompatible species, but lower levels of polymorphism within the population and higher levels of differentiation between populations (Levin, 2012).
In addition to the intrinsic biological properties of the species, spatial distribution and demography strongly influence processes such as genetic drift, gene flow, and natural selection, which in turn shape the genetic characteristics of populations (Eckert et al., 2008). For example, species range size tends to influence gene flow and genetic differentiation between populations. Large distances between populations with large ranges would be barriers to gene flow (Lawrence & Fraser, 2020). Peripheral populations are predicted to exhibit reduced gene flow, greater isolation, and higher genetic differentiation. In contrast, populations in the center of the distribution would have higher gene flow and be less differentiated (Lawrence & Fraser, 2020). This may be exacerbated if the peripheral populations experience rapid cycles of colonization and extinction, and have associated bottleneck events or founder effects (Eckert et al., 2008). Dispersal ability also influences the amount of gene flow between core and peripheral populations. This has implications for the maintenance of genetic diversity. For example, species with large ranges but limited mobility have reduced gene flow between populations, resulting in greater genetic differentiation (Pelletier & Carstens, 2018).
The genus Oenothera (Onagraceae) is widespread with the majority of species concentrated in western North America (Overson et al., 2023), with some taxa extending to Central Mexico and South America (Wagner et al., 2007). Like other Onagraceae members, Oenothera species originated in the Nearctic region. Their diversification began 20 million years ago during the Miocene, an epoch characterized by colder and drier than the present. These conditions triggered both altitudinal and latitudinal forest retreats, creating ecological opportunities for herbaceous species that prefer open environments and can resist low temperatures and low humidity (Dietrich & Wagner, 1988).
The species of Oenothera contributed significantly to the early development of plant genetics, cytogenetics, and evolutionary biology. Since the work of De Vries in 1900 (Cleland, 1972), a great deal of information has been collected on the ecology, morphology, cytology, and genetics of the genus, giving it a great advantage as a model for study (Greiner & Köhl, 2014), especially on reproductive systems (Johnson et al., 2009; Raven, 1979; Wagner et al., 2007). The intricate evolutionary history of the genus reports several transitions in reproductive systems, which are diverse (Cleland, 1972; Johnson et al., 2011; Rauwolf et al., 2008). In addition, Oenothera has a unique genetic recombination system (Cleland, 1972). In some species, meiosis is accompanied by a rearrangement of chromosome arms that form structures known as rings. These rings segregate into the next generation and have significant implications for inheritance (Golczyk et al., 2014). They act as barriers to homologous recombination and alterations to the linkage balance (Overson et al., 2023; Rauwolf et al., 2008).
Our study focuses on Oenothera drummondii Hook. (Onagraceae), an herbaceous, short-lived perennial species belonging to the subsection Raimmania within Oenothera (Overson et al., 2023). The speciespresents different chromosomal configurations during meiosis, including the formation of bivalents and rings, but is not a permanent translocation heterozygote; so its reproduction is not expected to be clonal (Dietrich & Wagner, 1988). In contrast, the species displays a mixed mating system, encompassing both self- and cross-pollination (Dietrich & Wagner, 1988; Gallego-Fernández & García-Franco, 2021b). Despite exhibiting self-compatibility, its herkogamous large yellow flowers, and elevated stigma suggest predominantly outcrossing, particularly in North American populations (Gregory, 1964). Nevertheless, the species is capable of self-pollination in the absence of pollinators (i.e., sphingid moths and some hymenopterans) or under specific environmental conditions, such as wind, sand burial, and wave action during tropical storms, which are common in dunes and have an impact on the survival of individuals (Dietrich & Wagner, 1988; Gallego-Fernández & García-Franco, 2021; Gregory, 1964). Recent studies in North America showed that levels of self-compatibility vary from population to population, decreasing with increasing latitude (Gallego-Fernández & García-Franco, 2021b). Also, flower size decreased significantly with increasing latitude (Gallego-Fernández & García-Franco, 2021a). Given that all these characteristics could be reflected in the genetic diversity and genetic structure of the populations, we combined existing reports on life history traits, germination and self-compatibility levels, floral traits, dispersal modes, and genetic recombination system with our results of the genetic diversity and structure of 9 populations covering the North American distribution of O. drummondii (Gulf of Mexico and Baja California).
Figure 1. A, Distribution of Oenothera drummondii in North America. BOL: Bolívar, Texas-USA. MAT: Matagorda, Texas-USA. SPA: South Padre Island, Texas-USA. ALT: Altamira, Tamaulipas-México. MAN: La Mancha, Veracruz-México. OLM: Olmeca, Veracruz-México. OJO: Ojoshal, Tabasco-México. AGB: Agua Blanca, Baja California-México. PAS: Punta Arena del Sur, Baja California-México. B, Discriminant analysis of principal components DAPC. C. STRUCTURE bar plot of individual assignments of genetic groups (K = 4). The probability that an individual belongs to a particular group is represented by the colored bars. The order of the groups is the same as in A.
In this study, we addressed the following questions: 1, Does the genetic diversity vary between populations? Because different environmental conditions allow different evolutionary pressures to act in each population, we expect variation in genetic diversity and related genetic parameters such as heterozygosity and inbreeding. 2, Does the predicted variation in genetic diversity relate to intrinsic biological properties of the populations, such as selfing or changes in floral traits? If self-fertilization is the predominant mating system in the population, we expect populations to show smaller flower size, higher inbreeding, lower heterozygosity, and reduced genetic diversity (Ingvarsson, 2002). 3, Do populations closer to the center of the distribution have greater genetic diversity and less genetic differentiation than peripheral populations? Large distances between populations of species with large ranges would be barriers to gene flow (Lawrence & Fraser, 2020). Also, species living in coastal dunes commonly experience rapid cycles of colonization and extinction, and have associated bottleneck events or founder effects (Eckert et al., 2008). This effect would be exacerbated in peripheral populations (Lawrence & Fraser, 2020). We expect that populations at the edge of the distribution would have lower genetic diversity and higher differentiation than central populations.
Materials and methods
Study system
Oenothera drummondii is the sixth member of the series Raimannia within the subsection Raimannia in the genus Oenothera (Dietrich & Wagner, 1988). Its center of origin is in North America (Texas, USA) and consists of 2 subspecies with a disjunct distribution: O. drummondii subsp. drummondii, which is distributed in the coastal dunes of the Gulf of Mexico (from North Carolina in the USA to Campeche in Mexico), and O. drummondii subsp. thalasaphilla along the Pacific coast at the Southern tip of Baja California in Mexico (Dietrich & Wagner, 1988; Hernández-Espinosa et al., 2020). The 2 subspecies can be distinguished morphologically: O. drummondii subsp. drummondii have large flowers and long pubescent leaves, while O. drummondii subsp. thalasaphilla is characterized by having small flowers and small succulent leaves (Dietrich & Wagner, 1988). O. drummondii subsp. drummondii has been accidentally introduced into coastal dune systems around the world, and is considered invasive in several of them (Castillo-Infante et al., 2021; Dietrich & Wagner, 1988). The species is restricted to coastal dunes, inhabiting the dunes from the back beaches to the first dune ridges and embryo-dunes of the Gulf of Mexico and Southeastern USA (from Campeche to North Carolina) (Dietrich & Wagner, 1988; Gallego-Fernández & García-Franco, 2021b; Moreno-Casasola, 1988). From Louisiana to North Carolina in USA, O. drummondii shares its distribution with O. humifusa, another species within subsection Raimmania. Oenothera humifusa is an autogamous, permanent structural heterozygote (PTH), very similar to O. drummondii in growth form and habitat requirements. In the overlapped distribution, 2 basic types can be distinguished, although they are linked by intermediate forms that result from crosses between O. drummondii and O. humifusa (Dietrich & Wagner, 1988; Wagner et al., 2007). To ensure that the collection represented only O. drummondii and excluded the possibility of hybrids, the sampling was made systematically, beginning in Texas, USA, and continuing southward to Tabasco. Some of the populations collected were small and restricted to limited areas, in which all individuals were collected. The most illustrative example was the population of Ojoshal, composed of 9 individuals. We studied 169 individuals from 9 North American populations, and the 2 subspecies of O. drummondii (Fig. 1; Supplementary material: Table S1). Of these, 2 populations are from O. drummondii subsp. thalassaphila (Agua Blanca and Punta Arena del Sur), and the remaining 7 are from subsp. drummondii (Bolívar, South Padre Island, Matagorda, Altamira, La Mancha, Olmeca, and Ojoshal). We had information on self-compatibility and floral traits for 4 of the 9 populations evaluated (Bolívar, South Padre Island, La Mancha, and Ojoshal), since Gallego-Fernández and García-Franco (2021a, b) used the same populations in their studies (Supplementary material: Table S2).
Vegetal material
Leaf material was collected from reproductive adults of each population, for which 5 leaves per plant were sampled in paper bags with silica gel, and the samples were subsequently stored at -20 °C. When population density exceeded 30 individuals, 20 were randomly selected, and if within a population less than 20 individuals were found, as in Ojoshal, the entire population was sampled (Supplementary material: Table S1).
DNA extraction and microsatellite loci amplification
Ten microsatellite loci transferred to O. drummondii from other species of the Oenothera (Hernández-Espinosa et al., 2020) were used in this study: OenhaB105, OenhaD102, OenbidiA_C10, Oenbi2triA_A1, Oenbi2triA_D3, Oenbi39tri10, Oenbi2triA_H1, Oenbi39tri4, Oenbi2triA_E4 and Oenbi39di2. The extraction of genomic DNA was carried out according to 2 protocols: a) CTAB extraction, using 50 mg of dry leaf tissue (González & Vovides, 2002). The extracted DNA was subsequently purified using the PCR Clean-up & Gel Extraction Purification Kit (QIAGEN). b) DNeasy Plant Mini Kit using 20 mg dried leaf tissue following the manufacturer’s instructions (QIAGEN). The quantity and quality of the extracted DNA were verified on 1% agarose gels stained with Red Gel.
Microsatellite amplification was performed using 2 protocols. An initial PCR in a final volume of 10 µL containing total DNA, 2X reaction buffer, 0.2 mM of each dNTP, 1.6 mM MgCl2, 0.5 ng/µL BSA, 0.025 U/µL Taq polymerase, 0.5 µM reverse and forward primers, and 0.5 µM universal primer M13. For sample visualization, each forward primer was modified by the addition of an M13 sequence at the 5’ end (5’-TGT AAA ACG ACG GCC AGT-3’) that is complementary to an M13 primer labeled with either NED (yellow), HEX (green), or 6-FAM (blue) fluorophores. The amplification program consisted of an initial cycle of 3 min at 94 °C; followed by 25 cycles of 94 °C for 40 s, 50 °C for 40 s, and 72 °C for 60 s; 8 cycles of 94 °C for 60 s, 53 °C for 60 s, and 72 °C for 60 s, where hybridization of the M13 primer occurs; and a final extension at 72 °C for 10 min. A second PCR was performed using the Type-it microsatellite kit (QIAGEN), 1 µL of total DNA, and 0.2 µM of the forward, reverse, and M13 primers in cases where no amplification products were obtained from the first PCR after verification in 1% agarose. The amplification program consisted of a 15-minute cycle at 95 °C, followed by 20 cycles at 94 °C for 40 s, 50 °C for 90 s, and 72 °C for 60 s; 15 cycles at 94 °C for 60 s, 53 °C for 60 s, and 72 °C for 60 s. The final extension was performed at 60 °C for 30 min. A standard 400 bp marker and an ABI 3730 Gene Analysis System (Macrogen) were used to analyze the PCR products resulting from amplification. GeneMarker (Softgenetics, State College, PA, USA) was used to identify allele sizes manually. Oenothera drummondii is a diploid species, with amplifications consisting of 1 or 2 alleles per individual.
Statistical analysis
Presence of null alleles was evaluated using the FreeNA software with the EM algorithm (Chapuis & Estoup, 2007). The frequency of null alleles was estimated for each locus and population. FST values were calculated with FreeNA with the ENA algorithm for the correction of null alleles. The presence of clones in the populations was assessed with GenAIEx 6.503 software (Peakall & Smouse, 2012). Deviations from Hardy-Weinberg equilibrium for each locus in each population were assessed by the X2 test using the Benjamin-Hochberg procedure in GenAIEx 6.503 software (Peakall & Smouse, 2012). Linkage disequilibrium (LD) between loci was evaluated in Arlequin 3.5.2 (Excoffier & Lischer, 2010).
The percentage of polymorphic alleles (P), average number of alleles per locus (A), average number of effective alleles (Ae), observed heterozygosity (HO), expected heterozygosity (HE), and fixation index (F) were calculated in GenAIEx 6.503 (Peakall & Smouse, 2012). To estimate the patterns of genetic variation between and within the populations, we calculated the F-statistics (i.e., FIS, FIT and FST) (Wright, 1978). Additionally, FIS per population, considering null allele frequency, was estimated using INEST 2.2 (Chybicki, 2017), applying Bayesian method with 300,000 steps, sampling every 1,000 steps and burn-in of 30,000 steps. For the bottleneck analysis, the Wilcoxon signed rank test was performed for 3 mutation models: Infinite Allele Model (IAM), Stepwise Mutation Model (SMM), and Two-Phase Model (TPM). INEST 2.2 was used to run 100,000 simulations for each mutation. The relationship between latitude and parameters of genetic diversity (A, P, HO and HE) was evaluated using regression models (Sokal & Rohlf, 1995) in the R 4.2.0 program (R Core Team, 2020).
To estimate the molecular variation within and between populations, an analysis of molecular variance (AMOVA) was performed using 1,000 permutations in poppr package in R 4.2.0 software (R Core Team, 2020). To determine isolation by distance (IBD), a Mantel test (Mantel, 1967) was performed between the matrix of genetic differentiation (FST) with INA null allele correction, and population geographic distances (Euclidean) using 999 permutations in the vegan R package (R Core Team, 2020). We measured current dispersal rates (m) using BAYESASS, in which m is interpreted as the fraction of migrants per generation in one population that is derived from another population (Wilson & Rannala, 2003). The Bayesian clustering algorithm implemented in the Structure 2.3.4 software (Pritchard et al., 2010) was used to clarify the genetic structure of the samples by assigning individuals to genetic groups. The simulation was carried out with correlated allele frequencies and with mixture models according to ancestry. All analyses used 100,000 replicates, a Markov chain Monte Carlo (MCMC) burn-in period of 10,000 steps, and 10 replicates per K. The results obtained from Structure were processed with Structure Harvester (Earl & VonHoldt, 2012) to select the optimal K (highest value of ΔK) using the Evanno method (Evanno et al., 2005). Clumpak (Kopelman et al., 2015) and Distruct (Rosenberg, 2004) were used to visualize the bar graphs obtained in Structure. Discriminant analysis of principal components (DAPC) using the R package adegenet with 1,000 permutations for validation was also used to analyze the genetic structure of O. drummondii. It was based on the genetic distances (Cavalli-Sforza & Edwards, 1967) for each pair of populations, using the INA correction (Chapuis & Estoup, 2007) for the presence of null alleles.
Results
Frequency of null alleles
The 10 microsatellite loci amplified successfully in 161 individuals from 9 populations. Statistical tests of Hardy-Weinberg equilibrium for each locus in each population showed that most cases (50 of 78) did not deviate from equilibrium. For each population, the linkage disequilibrium analysis showed significant deviations in at least one locus. Mean null allele frequencies for all populations were low (0.06 ± 0.04). The mean null allele frequencies per population were moderate to low (0.01 ± 0.02-0.13 ± 0.14). Five loci exhibited high allele frequencies (> 0.2) in at least one population when analyzed across all population-locus combinations (Supplementary material: Tables S3, S4).
Genetic diversity
We detected 99 alleles for the 10 microsatellite loci. The total number of alleles detected had an average of 9.9 ± 5.6 alleles per locus, ranging from 4 for OenhaD102 to 23 for OenbidiA_C10. The level of polymorphism was high in all populations (mean 86.67 ± 14.14). The lowest percentage of polymorphism was found in Ojoshal (OJO), where 4 loci were monomorphic. The number of alleles per locus ranged from 1.80 in Ojoshal to 4.60 in Bolívar, with an overall mean number of alleles per locus of 2.28 ± 0.48. We found a total of 35 private alleles, ranging from 1 in La Mancha to 8 in Bolívar and Agua Blanca. The average effective number of alleles was 2.28 ± 0.48. It ranged from 1.58 in Olmeca to 3.06 in Bolívar (Table 1).
Expected heterozygosity ranged from 0.283 in Olmeca to 0.599 in Matagorda. The overall mean was 0.442 ± 0.104. The observed heterozygosity was also lowest in Olmeca (0.221), and highest in Matagorda (0.547). The mean total observed heterozygosity was 0.409 ± 0.097. The average observed heterozygosity was lower (HO < HE) than expected, indicating an overall homozygote excess. This is consistent with the results of the Hardy-Weinberg equilibrium test, which showed heterozygote deficiency for at least 1 locus in all populations. However, the Hardy-Weinberg equilibrium test also showed heterozygote excess in 4 populations: South Padre Island, Olmeca, Ojoshal, and Punta Arena del Sur. Of these, Ojoshal showed heterozygote excess at 5 of the 6 polymorphic loci (Table 1).
Table 1
Parameters of neutral genetic diversity of O. drummondii at 10 microsatellite loci. N = Sample size; P = percentage of polymorphic loci; A = mean allele number by locus; Ae = mean effective allele number; Ap = private alleles; HO and HE = mean observed heterozygosity, and mean expected heterozygosity; F = fixation index. Hardy-Weinberg equilibrium deviations (p < 0.05), test is the number of polymorphic loci evaluated, and (-) is the number of loci with deficiency and excess of heterozygotes (+).
Population
N
P
A
Ae
Ap
Ho
HE
F
H-W deviations
Test
(+)
(-)
Bolívar
20
100
4.60
3.06
8
0.410
0.557
0.264
10
–
4
Matagorda
19
100
4.20
2.75
3
0.547
0.599
0.086
10
–
1
South Padre Island
20
80
3.60
2.54
2
0.385
0.433
0.110
8
1
1
Altamira
20
100
3.10
2.27
1
0.485
0.487
0.003
10
–
2
La Mancha
20
90
3.10
2.28
3
0.420
0.464
0.094
9
–
3
Olmeca
19
70
3.00
1.58
6
0.221
0.283
0.219
7
1
2
Ojoshal
9
60
1.80
1.61
0
0.489
0.301
-0.623
6
5
1
Agua Blanca
17
90
4.10
2.31
8
0.324
0.435
0.256
9
–
4
Punta Arena del Sur
18
90
3.30
2.11
4
0.400
0.420
0.047
9
1
2
Mean ± SD
18 ± 3.54
86.7 ± 14.1
3.42 ± 0.83
2.28 ± 0.48
0.41 ± 0.097
0.44 ± 0.10
0.05 ± 0.27
Table 2
Bottleneck estimation for 9 populations of O. drummondii. Significant values are shown in bold. SSM: Step mutation model, TPM: two-phase model.
Population
FIS (INest)
FIS (INest) 95% HDPI
Bottleneck test (p-value)
SSM
TPM
Bolívar (BOL)
0.2061
0.2061-0.3218
0.385
0.3473
Matagorda (MAT)
0.1221
0.0023-0.2274
0.0656
0.0421
South Padre Island (SPA)
0.0356
0.0011-0.0715
0.1913
0.1907
Altamira (ALT)
0.0051
0.0000-0.0049
0.0322
0.0245
La Mancha (MAN)
0.0214
0.0044-0.0568
0.0820
0.0486
Olmeca (OLM)
0.2446
0.2277-0.3479
0.9845
0.9845
Ojoshal (OJO)
0.0133
0.0000-0.0217
0.0264
0.0268
Agua Blanca (AGB)
0.0977
0.0586-0.1955
0.973
0.9625
Punta Arena del Sur (PAS)
0.0196
0.0000-0.471
0.5443
0.4556
Figure 2. Migration rates m in the groups found by STRUCTURE. Group colors match those found in Bayesian clustering: G1, Bolívar (BOL) and Matagorda (MAT). G2, South Padre Island (SPA) and Altamira (ALT). G3, La Mancha (MAN), Ojoshal (OJO), and Olmeca (OLM). G4, Agua Blanca (AGB) and Punta Arena del Sur (PAS).
The coefficients of inbreeding obtained using the INEST ranged from 0.0051 in Altamira to 0.2446 in Olmeca (Table 2). Three models were evaluated to detect the presence of recent genetic bottlenecks. The infinite allele model (IAM), the two-phase model (TPM), and the step mutation model (SSM). The SMM model has been suggested as a statistically conservative approach to detect microsatellite bottlenecks (Luikart et al., 1998). However, given the instability and wide range of mutation rates inherent to these markers, the TPM model may be the one that best explains the predominant mutation process at most loci (Di Rienzo et al., 1994). According to the TPM model, 4 populations in O. drummondii show possible recent bottlenecks: Altamira, Ojoshal, Matagorda and La Mancha (Table 2). Regression analyses revealed significant latitudinal clines in genetic diversity, with both alleles per locus (r = 0.69, p < 0.005) and expected heterozygosity (r = 0.65, p < 0.005) showing strong negative relationships with latitude. Latitude significantly predicted the percentage of polymorphic loci (r = 0.4, p < 0.05), whereas no significant relationship was observed for heterozygosity (Supplementary material: Table S5).
Genetic structure
When evaluating the distribution of genetic variation within and among populations, mean values of global inbreeding (FIT = 0.416 ± 0.163) and local inbreeding (FIS = 0.059 ± 0.195) indicated significant heterozygosity deficits. The mean value of genetic differentiation (FST) was 0.376 ± 0.132, indicating that 38% of the genetic variation in O. drummondii was due to differences between populations. Furthermore, genetic differentiation between pairs of populations was mostly high (> 0.15). Matagorda and Bolívar had the lowest differentiation (0.06), followed by Punta Arena del Sur and Agua Blanca (0.17), and Bolívar and South Padre Island (0.18). The analysis of molecular variance (AMOVA) showed that most genetic variation was found among individuals (54%), followed by that found among populations (38%) (Table 3).
The Mantel test detected significant isolation by distance (r = 0.64, p = 0.002). The BAYESASS analysis revealed high diagonal m-values (G1 = 0.972 – G3 = 0.980), suggesting high gene flow within the individual groups. Higher gene flow was observed from G1 to G2 (m1 to 2 = 0.009) (Fig. 2). The results of the Bayesian clustering are shown in Supplementary material: Fig. S1. The most probable K with the highest value of ΔK = 479.023 was K = 3, followed by K = 4 with ΔK = 101.129. For K = 3, 3 clearly defined genetic groups were observed, with a very low proportion of admixture among them. In this case, the first group consisted of the Texas populations: Bolívar, Matagorda, and South Padre Island, and the northernmost Mexican population, Altamira. The second group included the 3 remaining Mexican populations in the Gulf of Mexico: La Mancha, Olmeca and Ojoshal, while the third group comprised the 2 populations on the Baja California Peninsula. For K = 4, the clustering is similar to K = 3. The main difference in this case was that the fourth cluster split the previous cluster containing the Texas and Altamira populations, indicating greater genetic correspondence between Bolívar and Matagorda (populations further north in the Gulf) and between South Padre Island and Altamira. Admixture was low, indicating that Oenothera populations are highly structured.
The Discriminant Analysis of Principal Components (DAPC), like the Bayesian method, also showed 4 groups (Fig. 1C; Supplementary material: Fig. S2). Consistent with the results of Structure, one group was formed by the populations of Baja California (Punta Arena del Sur and Agua Blanca). However, in this case, La Mancha was no longer grouped together with Ojoshal and Olmeca, which formed the second group. Altamira and La Mancha formed a third group that is closer to the fourth formed by the Texan populations (Bolívar, Matagorda, and South Padre Island). The DAPC results indicated the possibility that the Texas group was the ancestral group of the central Gulf of Mexico populations (Altamira and La Mancha). The other 2 groups were markedly more differentiated.
Table 3
Molecular variance analysis (AMOVA) of Oenothera drummondii populations.
Source of variation
df
Sum sq
Mean sq
Variance component
Total variance (%)
p values
Between populations
8
841.68
105.21
2.78
37.39
0.001
Among populations
153
807.84
5.28
0.61
8.21
0.001
Within individuals
162
657
4.05
4.05
54.39
0.001
Total
323
2,306.53
7.14
7.45
100
Discussion
In this research, we evaluated the genetic variation between and within populations of Oenothera drummondii throughout its range in North America, for which we used microsatellite markers. These markers demonstrated sufficient variability to resolve population genetic structure at high resolution, consistent with a previous study (Hernández-Espinosa et al., 2020). We also found that all populations were in linkage disequilibrium for at least one locus. Deviations may result from limited homologous recombination during meiosis when chromosomal rings are formed (Rauwolf et al., 2008). In O. drummondii, as in many Oenothera species, this limited recombination is reported to cause changes in the linkage equilibrium (Cleland, 1972; Rauwolf et al., 2008; Raven, 1979), as described in other ring-forming species of the genus: O. biennis (Larson et al., 2008; Levin, 1975; Levy & Levin, 1975), O. harringtonii (Skogen et al., 2012), O. hartwegii and O. gayleana (Lewis et al., 2016). The unique recombination system in the Oenothera is an attribute that has allowed them to colonize new environments from their origin in the Miocene (ca. 20 Ma), until recent times, successfully establishing themselves first in the Neotropics and then in Europe (Dietrich et al., 1997; Wagner et al., 2007).
Compared to other plants with similar characteristics in lifeform, reproductive system, geographic range, and dispersal mechanism, we found that Oenothera drummondii showed moderate to low genetic diversity. This is a short-lived perennial, self-compatible species with a mixed reproductive system and wide distribution (Dietrich & Wagner, 1988), and a variety of dispersal mechanisms (Gallego-Fernández et al., 2021). Mean levels of genetic diversity reported for other plants with mixed reproduction (N = 15, mean HE = 0.60), short-lived perennial life form (N = 29, mean HE = 0.55), wide distribution (N = 31, mean HE = 0.62), and water or wind dispersal (N = 28, mean HE = 0.61) (Nybom & Bartish, 2000), were higher than the level found in O. drummondii (mean HE = 0.442).
Historically, genetic diversity in Oenothera has been attributed to structural genomic rearrangements, particularly hybridization and reciprocal translocations that alter linkage relationships translocations (Cleland, 1972; Rauwolf et al., 2011), as the genomes in Oenothera were considered to be essentially “non-recombining” due to the formation of chromosomal rings during meiosis (Cleland, 1972; Golczyk et al., 2014; Rauwolf et al., 2008). In contrast, the reported genetic diversity in Oenothera species appears strongly influenced by their predominant reproductive system. O. biennis, a permanent translocation heterozygote (PTH), maintains higher genetic variation than O. drummondii, which exhibits a mixed mating system (mean HE = 0.69 vs. 0.44) (Larson et al., 2008). This agreed with the expectation of the “functional” asexual reproductive system of O. biennis, in which autogamy is almost complete and offspring are mostly clonal (Mather, 1943; Stebbins, 1957). Consistent with expectations for obligate sexual reproduction, self-incompatible, bivalent-forming Oenothera species (O. harringtonii with mean HE = 0.77, O. gayleana with mean HE = 0.53 and O. hartwegii with mean HE = 0.49 vs O. drummondii with HE = 0.44) maintained significantly higher genetic diversity than the mixed-mating O. drummondii (HE = 0.44) (Levin, 1975; Rhodes et al., 2014; Skogen et al., 2019).
In terms of its reproductive system, the self-compatible O. drummondii generally has large flowers and an elevated stigma, suggesting a high propensity for sexual reproduction, although it can self-pollinate in the absence of pollinators or in situations where self-fertilization is evolutionarily advantageous (Gregory, 1964; Sicard & Lenhard, 2011). Gallego-Fernández and García-Franco (2021b) assessed the level of self-compatibility of O. drummondii in the Gulf of Mexico, through germination essays. They evaluated 4 of the 9 populations in this study (Bolívar, South Padre Island, La Mancha and Ojoshal), and found that self-compatibility increased in low-latitude populations (La Mancha and Ojoshal), while lower for higher-latitude populations (Bolívar and South Padre Island). These results suggest a latitudinal shift towards greater selfing to the south of the distribution. It has been suggested that greater selfing in populations leads to a decrease in genetic diversity (Ingvarsson, 2002), which is consistent with the pattern of genetic variation found in this study. In agreement with the results of Gallego-Fernández and García-Franco (2021a), we found that populations with higher reported self-compatibility also had lower genetic diversity. On the other hand, in partial selfing species, reductions in genetic diversity are associated with changes in traits that facilitate selfing (i.e., reduced flower size, reduced nectar, pollen and reduced herkogamy) (Barrett & Harder, 1996; Shimizu & Tsuchimatsu, 2015; Tedder et al., 2015). According to the theory, it would be expected that the populations of O. drummondii with a higher self-compatibility, and lower genetic diversity (i.e., Ojoshal) would also show a tendency to reduce flower size, and populations with lower self-compatibility, and higher genetic diversity (i.e., Bolívar) would show an increase in flower size. However, Gallego-Fernández and García-Franco (2021a) found the opposite: populations showed larger flower sizes following a latitudinal gradient from subtropical (i.e., Bolívar and South Padre Island) to tropical (i.e., La Mancha and Ojoshal) climates. This result suggests that in O. drummondii there is no latitudinal correlation between a reduction in flower size and an increase in selfing, and thus to a reduction in genetic diversity. Differences in floral traits among O. drummondii populations appear to respond to both biotic (i.e., pollinators) and abiotic factors (i.e., temperature, precipitation), suggesting local adaptations to environmental changes (Gallego-Fernández & García-Franco, 2021a).
In O. drummondii the genetic diversity showed a significant increase with latitude, with its lowest values in Ojoshal and Olmeca, while the higher values were found in Bolívar and Matagorda, populations in the highest latitudes. The genus Oenothera appears to have originated in northern Mexico and the adjacent USA, and subsection Raimmania, to which O. drummondii belongs, is centered in this area (Dietrich & Wagner, 1988). Since older clades tend to have more genetic diversity (Willi et al., 2018), it would be expected that the greatest genetic diversity would be found in populations at latitudes closest to the center of origin (i.e., Bolívar and Matagorda) and that it would lower as populations moved away to the periphery of the distribution, as was found here. In addition to reducing population genetic variation through genetic drift, habitat suitability often decreases from the core to the edge of a species’ geographic range, leaving edge populations small and isolated (Sagarin & Gaines, 2002), as in Ojoshal. However, despite the small population size of Ojoshal, inbreeding was low, presumably because of its high selfing index (Gallego-Fernández & García-Franco, 2021b). Inbreeding depression is predicted to be lower in selfing species because recessive deleterious alleles are expected to be efficiently “purged” from populations (Winn et al., 2011), and selfing favors the selection of new recessive beneficial mutations (Burgarella & Glémin, 2017; Charlesworth et al., 1993).
The pattern of distribution of the genetic diversity found in Oenothera drummondii seems to be shaped by demographic and evolutionary processes (Durka, 1999; Hewitt, 1996). Historical climate-driven changes are known to still affect the present-day genetic diversity (Alvarez et al., 2009; Hewitt, 2000). As a result of sequential founder events during post-glacial recolonization, contemporary populations show reduced genetic diversity and increased genetic differentiation, especially at range margins (Eckert et al., 2008; Sagarin & Gaines, 2002). The above pattern was found in 512 North American herbs, showing that the shifting and fragmentation of species’ geographical ranges in the past 20,000 years has played an important role in shaping the genetic variation of contemporary populations (Benavides et al., 2019).
Regarding the populations in Baja California (i.e., Agua Blanca and Punta Arena del Sur), the results of both genetic diversity and genetic structure showed that they formed an independent genetic group, as expected given that the populations belong to a different subsp. of O. drummondii. However, based on the genetic differences detected and the evidence of differences in life history, vegetative and floral characteristics observed in the field at the time of collection, it is suggested that O. drummondii subsp. thalassaphila is a distinct species from O. drummondii subsp. drummondii (Table 4). A detailed taxonomic study and additional genetic data from new populations of O. drummondii subsp. thalassaphila will be needed to support this.
Table 4
Distinctive morphological attributes between O.drummondii subsp. drummondii and O. drummondii subsp. thalassaphila. Data taken from Benavides et al. (2019).
O.drummondii subsp. drummondii
O. drummondii subsp. thalassaphila
Habit
Annual herb
Perennial sudshrub
Stem pubescence
Strigillose to villous
Strigillose
Glandular puberulent hairs
Present
Absent
Cauline leaves
1-8cm, oblanceolate to obovate, densely villous, margins entire to remotely sinuate dentate
1-4.5cm, oblong lanceolate to oblanceolate, strigillose, marginis entire to coarsely dentate
Floral tube
2.5-5cm, strigillose to densely villous
2-3.5cm, strigillose
Sepals
2-3cm, strigillose to villous
1.3-2.5cm, strigillose, occasionally red doted
Petal length
2.5-4.5cm
2-3.5cm
Capsule
2.5-5.5cm, strigillose to villous
2-4cm, strigillose
Seeds
1.1-1.7mm
1.5-2mm, smooth
We conclude that the genetic diversity and genetic structure across the range of O. drummondii in North America suggest a latitudinal shift towards increased selfing and a decline in genetic diversity in the low-latitude populations. However, there is no positive relation between reductions in floral traits and increased selfing in the populations. Differences in floral traits appear to respond to biotic and abiotic factors, suggesting local adaptations to environmental changes. In O. drummondii, genetic parameters may reflect historical processes like climate-driven changes (i.e., the last glaciation), and patterns of genetic distribution associated with them, such as the center-peripheral hypotheses. The genetic attributes evaluated here suggest that populations of O. drummondii subsp. thalassaphila may represent a distinct species, but further evaluation will be required to confirm this hypothesis.
Acknowledgments
This study was supported by the Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (Conacyt) by a scholarship (2019-000037-02NACF-29365), as part of a doctoral thesis directed by Jorge González-Astorga. This study was also supported by the Ministerio de Economía y Competitividad, Spain (MINECO Project CGL2015-65058-R co-funded by FEDER). We sincerely thank the assistance in fieldwork to collect plant materials: Rusty Feagin, José García-Franco, Alejandro Espinosa de los Monteros and Anwar Medina-Villareal. We also thank Janet Nolasco-Soto for the assistance in laboratory methods, and two anonymous reviewers for their comments and observations on the manuscript.
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Four new records of the genus Septoglomus (Glomeromycota) in Mexico
Reyna P. Hipólito-Piedras a, Heriberto Méndez-Cortés b, *, Hugo M. Ramírez-Tobias b, Victor Olalde-Portugal c, Carlos Arturo Aguirre-Salado d, Ángel Natanael Rojas-Velázquez b y Aracely Mena-Echevarríae
a Universidad Autónoma de San Luis Potosí, Facultad de Agronomía y Veterinaria, Doctorado en Ciencias Agropecuarias, Carretera San Luis Potosí-Matehuala Km. 14.5, Ejido Palma de la Cruz, 78321 Soledad de Graciano Sánchez, San Luis Potosí, México
b Universidad Autónoma de San Luis Potosí, Facultad de Agronomía y Veterinaria, Carretera San Luis Potosí- Matehuala Km. 14.5, Ejido Palma de la Cruz, 78321 Soledad de Graciano Sánchez, San Luis Potosí, México
c Instituto Politécnico Nacional, Centro de Investigación y de Estudios Avanzados-Unidad Irapuato, Departamento de Biotecnología y Bioquímica, Libramiento Norte Carretera Irapuato-León Km 9.6, 36824 Irapuato, Guanajuato, México
d Universidad Autónoma de San Luis Potosí, Facultad de Ingeniería, Av. Dr. Manuel Nava 4, 78290 San Luis Potosí, San Luis Potosí, México
e Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias, Campo Experimental General Terán-INIFAP, Km 31 Carretera Montemorelos-China, 67400 General Terán, Nuevo León, México
*Autor para correspondencia: heriberto.mendez@uaslp.mx (H. Méndez-Cortés)
Recibido: 13 febrero 2024; aceptado: 23 julio 2025
Resumen
Los hongos micorrizógenos arbusculares (HMA) son organismos esenciales y de suma importancia para las plantas terrestres. Se seleccionaron distintas comunidades vegetales de México en los estados de Coahuila, Guanajuato, San Luis Potosí, Tamaulipas y Veracruz, en donde se recolectó suelo rizosférico con el objetivo de aislar esporas de HMA. La identificación taxonómica se llevó a cabo mediante el análisis de las características morfológicas de las esporas, comparándolas con los artículos originales de cada especie descrita. Se identificaron 4 especies de HMA pertenecientes al género Septoglomus (S. altomontanum, S. fuscum, S. furcatum y S. turnauae), que constituyen su primer registro en México. Con estas 4 especies, la riqueza total de HMA en México se eleva a 171, lo cual evidencia una diversidad significativa de HMA en las comunidades vegetales del país.
Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) are essential and extremely important organisms for terrestrial plants. Different plant communities of Mexico were selected in the states of Coahuila, Guanajuato, San Luis Potosí, Tamaulipas and Veracruz, where rhizospheric soil was collected with the objective of isolating AMF spores. Taxonomic identification was carried out by analyzing the morphological characteristics of the spores, comparing them with the original articles of each described species. Four species of AMF belonging to the genus Septoglomus (S. altomontanum, S. fuscum, S. furcatum, and S. turnauae) were identified, constituting their first record in Mexico. With the record of these 4 species, the total richness of AMF in Mexico rises to 171, evidencing a significant diversity of AMF in the plant communities of the country.
Los hongos micorrizógenos arbusculares (HMA) son organismos cruciales y de suma importancia en la ecología y fisiología de las plantas terrestres. Fueron considerados inicialmente en el filo Zygomycota; sin embargo, a través de sus características moleculares, morfológicas y ecológicas, fueron reorganizados en un nuevo filo monofilético denominado Glomeromycota (Schüßler et al., 2001). Actualmente, la clasificación taxonómica de los HMA incluye 3 clases, 4 órdenes y 43 géneros (Schüβler, 2025; Wijayawardene et al., 2020).
Uno de los géneros incluidos en Glomeromycota es Septoglomus. Originalmente, las especies que ahora se ubican en este género se agruparon dentro del género Glomus. Sin embargo, Schüßler y Walker (2010) las reubicaron en el género Funneliformis, basándose en criterios morfológicos. Posteriormente, Oehl et al. (2011) dividieron Glomus en 2 grupos taxonómicos, proponiendo los géneros Simiglomus y Septoglomus con base en análisis de secuencias ribosomales y en la morfología. Sin embargo, Redecker et al. (2013) validaron únicamente al género Septoglomus y recomendaron conservar su estatus en espera de mayor evidencia, particularmente a partir de estudios filogenéticos del DNAr.
La especie de referencia taxonómica para la clasificación del género Septoglomus fue Glomus constrictum (Trappe) Sieverd., GA Silva et Oehl (Glomeraceae) (actualmente, S. constrictum). A partir de ésta, se establecieron los criterios taxonómicos del género, que se caracterizan por la producción de esporas de manera individual o en pequeños grupos. Dichas esporas presentan una o múltiples capas y están conectadas a hifas que se extienden de forma continua hasta la pared de la espora, adoptan una forma cilíndrica o de embudo y presentan un poro cerrado por un septo ubicado en la base o debajo de la pared de la espora. Generalmente, estas esporas no reaccionan a la aplicación del reactivo de Melzer; sin embargo, sus estructuras adquieren una coloración azul oscuro al ser tratadas con azul de tripano (Oehl et al., 2011).
Actualmente, el género Septoglomus comprende 13 especies, lo que representa aproximadamente 4% de la diversidad total de HMA. Estas especies han sido documentadas en diversos estudios, como los de Błaszkowski et al. (2004, 2014, 2013, 2023), Goto et al. (2013), Symanczik et al. (2014), Chimal-Sánchez et al. (2020), Oehl et al. (2011, 2019), Palenzuela et al. (2013) y Guillén et al. (2020). Sin embargo, la clasificación de algunas de estas especies continúa en revisión. Por ejemplo, recientemente S. deserticola G.A. Silva, Oehl et Sieverd. y S. viscosum C. Walker, D. Redecker, D. Stille et A. Schüßler (Glomeraceae) fueron reclasificados en el nuevo género Blaszkowskia, con base en análisis filogenéticos y en su morfología distintiva (da Silva et al., 2023).
Las especies del género Septoglomus han sido registradas en diferentes continentes; en Europa, por Palenzuela et al. (2013), Blaszkowski et al. (2014), Oehl et al. (2019) y Guillén et al. (2020); en América, por Błaszkowski et al. (2013), Goto et al. (2013) y Chimal-Sánchez et al. (2020); en Asia, por Symanczik et al. (2014) y Oehl et al. (2019) y en África por Błaszkowski et al. (2010, 2013). El registro de estas especies fue en dunas marítimas, bosques lluviosos y tropicales, así como en matorrales xerófilos. No obstante, se ha observado que este género demuestra una destacada capacidad de adaptación y una dominancia notable en entornos áridos, en comparación con otros géneros de HMA. Además, muestra una eficiencia notable en la colonización de las raíces de cultivos agrícolas y forestales (Guardiola-Márquez et al., 2022).
En México se han identificado 4 especies del género Septoglomus. Sin embargo, es crucial llevar a cabo investigaciones a mayor escala, que abarquen tanto el ámbito ecológico como el morfológico para comprender mejor su distribución en el país. Asimismo, intensificar el muestreo para aumentar el conocimiento sobre la riqueza de especies de HMA en el territorio nacional (Polo-Marcial et al., 2021). El objetivo de esta investigación fue contribuir al conocimiento sobre la diversidad de Septoglomus mediante la documentación de 4 nuevos registros obtenidos en distintos tipos de vegetación de México.
Materiales y métodos
El muestreo del suelo rizosférico se realizó durante la época de lluvias (agosto, 2020-2021), en 6 sitios ubicados en 4 estados de la República Mexicana (fig. 1, tabla 1). En cada uno de los sitios se estableció un transecto de 1 km, donde cada 200 m se tomó una submuestra a una profundidad de 0 a 20 cm, la cual fue trasladada al laboratorio de Fitopatología, de la Facultad de Agronomía y Veterinaria, de la Universidad Autónoma de San Luis Potosí.
La extracción de esporas de HMA se realizó por el método de tamizado húmedo y decantación (Gerdemann y Nicolson, 1963), utilizando 500 g de suelo seco, seguido de una centrifugación en sacarosa al 70% a 2,000 rpm (Daniels y Skipper, 1982). Las esporas se montaron en preparaciones permanentes con alcohol polivinílico-lacto-glicerol (PVLG) y PVLG con reactivo de Melzer (INVAM, 2023).
La identificación se llevó a cabo de acuerdo con las características morfológicas de la espora, como lo sugieren da Silva et al. (2023). Así, se registraron el tamaño, las características de la pared de la espora y de la hifa de sostén, y la reacción al reactivo de Melzer. La observación de tales características fue en un microscopio óptico Zeiss Primo Star (Jena, Alemania) con iluminación fija Koehler.
Las mediciones de las características de las esporas de HMA se realizaron en fotografías tomadas con el software de microscopía ZEN blue (versión 3.4) (Jena, Alemania), con objetivos 40x y 100x. Tales características se contrastaron con lo descrito en las claves dicotómicas de Palenzuela et al. (2013) y Oehl et al. (2019); así como con los artículos de referencia (Blaszkowski et al., 2013, 2014; Palenzuela et al., 2013) y se elaboraron claves para la identificación de las especies. Los ejemplares de referencia fueron depositados en el herbario Isidro Palacios, perteneciente al Instituto de Investigación de Zonas Desérticas, de la Universidad Autónoma de San Luis Potosí (SLPM).
Descripciones
Se identificaron un total de 62 especies de HMA, en los 9 sitios de muestreo. De éstas, 21% pertenecen al género Acaulospora, 15% a Glomus, 11% a Septoglomus, 10% a Ambispora, 10% a Rhizophagus, 5% a Entrophospora, 5% a Funneliformis, 5% a Gigaspora, 5% a Scutellospora, 3% a Diversipora y 10% restante se distribuye en igual proporción entre los géneros Blazskowskia, Dominikia, Pacispora y Sieverdingia.
Figura 1. Distribución geográfica de sitios de muestreo y 4 especies del género Septoglomus en México.
Las especies registradas del género Septoglomus fueron: S. constrictum, S. mexicanum E. Chimal-Sánchez, C. Senés-Guerrero, NM Montaño, L. Varela, R. García-Sánchez, A. Pacheco, S. Montaño-Arias y SL Camargo-Ricalde, S. xanthium (Błaszk., Blanke, Renker y Buscot) GA Silva, Oehl y Sieverd., S. altomontanum Palenz., Oehl, Azcón-Aguilar y GA Silva, S. fuscum, S. furcatum Błaszk., Chwat, Kovács y Ryszka, y S. turnauae Błaszk., Chwat y Ryszka(Glomeraceae). Las últimas 4 son registro nacional, por lo cual se presenta la descripción morfológica y las ilustraciones correspondientes.
Tabla 1
Caracterización de los sitios de muestreo de Septoglomus en México.
Estado
Sitio
Coordenadas geográficas (Datum WGS84)
Vegetación
Suelo
Clima
San Luis Potosí
1. San José de Coronados
23°34’35.4” N 100°55’09.5” O
Bosque de pino
Xerosol
Árido templado
2. Xilitla
21°22’21.4” N 99°00’39.0” O
Bosque mesófilo de montaña
Litosol
Semicálido húmedo
3. Matehuala
23°21’51.1” N 100°35’01.7” O
Matorral xerófilo
Xerosol
Árido semicálido
4. Sierra de Álvarez
22°03’06.3” N 100°34’50.8” O
Bosque de encino
Litosol
Semicálido
5. Charcas
23°22’58.5” N 101°20’18.5” O
Pastizal
Xerosol
Semiárido
Guanajuato
6. San Felipe
21°41’56.4” N 101°12’57.6” O
Bosque de encino
Feozem
Semiárido templado
Veracruz
7. Plan de Higuera
19°26’17.0” N 96°33’35.6” O
Bosque tropical caducifolio
Vertisol
Cálido subhúmedo
Coahuila
8. Sierra Hermosa
25°14’42” N 100°51’18” O
Bosque de pino
Litosol
Semiárido templado
Tamaulipas
9. Jaumave
23°08’26.0” N 99°17’48.4” O
Bosque de encino
Litosol
Semiárido templado
Fuente: datos generados a partir de las capas disponibles en Geoportal y Enciclovida, México, Conabio (2018).
Septoglomus altomontanum Palenz., Oehl, Azcón-Aguilar y GA Silva, 2013.
Fig. 2a-d
Las esporas se forman individualmente en el suelo. Tienen forma ovalada y globosa, de 128-152 × 121-160 µm, de color marrón rojizo tornándose a negro rojizo. Las esporas están compuestas de 2 capas (Swl1-2). Swl1 es subhialina a amarillo oscuro, acompañada de partículas del suelo, de 2.1 a 3.2 µm de espesor, con la presión al oprimir el cubreobjetos esta capa se desprende. Swl2 es de marrón rojizo a negro rojizo, lisa, laminada, de 3.8 a 8.2 µm de espesor. Ninguna de las capas reacciona al reactivo de Melzer. La hifa de sostén es de forma curveada, continua a la pared de la espora, de un color marrón rojizo, es más ancha en la base de la espora y llega a medir 22 µm de largo. El poro de la espora está cerrado por un septo concoloro o una tonalidad más clara que la espora y surge de la capa Swl2.
Figura 2. Estructura subcelular de Septoglomus altomontanum. A) Espora con capa Swl1desprendida (40x); B) capas externas de la espora Swl1-2, en reactivo de Melzer (40x); C) hifa de sostén continua a la capa Swl2 con septo (100x); D) capas externas Swl1-2 en PVLG (100x).
Material examinado: México, Guanajuato, San Felipe (21°41’56.4” N, 101°12’57.6” O, 2,445 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque de encino, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021. México, San Luis Potosí, Catorce, San Antonio de Coronados (23°35’11.8” N, 100°54’01.2” O, 2,455 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque de pino, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021. México, Veracruz, Actopan, Plan de Higuera (19°26’17.0” N, 96°33’35.6” O, 140 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque tropical caducifolio, H. Méndez-Cortés, 08-2020. (CH-SLPM-228).
Distribución y hábitat. Septoglomus altomontanum se registró por primera vez en el Parque Nacional Sierra Nevada en Andalucía, España, donde se encontró asociada a Pinguicola grandiflora Lam. y P. nevadensis H. Lindb(Lentibulariaceae), así como a otras especies vegetales presentes en el suelo circundante (Palenzuela et al., 2013). Posteriormente, se identificó en muestras de suelo rizosférico de eucaliptos en el noreste de Tailandia (Khaekhum et al., 2017), así como en un bosque enano de cerezo de montaña en el monte Fanjing, que forma parte de las montañas Wuling, ubicadas en la provincia de Guizhou, China (He et al., 2021). Adicionalmente, se ha documentado la presencia de S. altomontanum en un bosque de Cryptomeria japonica (Miq.) P.D.Sell, (Taxodiaceae) en estas mismas montañas (Ming et al., 2023). En México, se aisló de suelo rizosférico de un bosque de encino, en Guanajuato, bosque de pino en San Luis Potosí y bosque tropical caducifolio en Veracruz.
Septoglomus furcatum Błaszk., Chwat, Kovács y Ryszka, 2013.
Fig. 3a-d
Figura 3. Estructura subcelular de Septoglomus furcatum A) Grupo de esporas, bifurcación de hifa (fb), característica de la especie en PVLG (10x); B) capas externas Swl1-3 en reactivo de Melzer (100x); C) capas externas Swl1-3 de la pared de la espora, capas Shwl1-2, septo y bifurcación de la hifa de sostén en reactivo de Melzer (100x); D) espora e hifa de sostén en PVLG (40x).
Esporas de color marrón rojizo a marrón oscuro; globosas de (106-) 138 (-167) µm de diámetro. La pared de la espora consta de 3 capas (Swl1-3). Capa Swl1, formando la superficie de la espora, semipermanente, hialina con restos de suelo de 1.6 µm de espesor y se desprende con la presión al oprimir el cubreobjetos. Swl2 semipermanente, hialina de 1.3 a 3.1 µm de espesor. Swl3 es laminada, lisa, marrón rojizo de 5.3 a 10.9 µm de espesor. Ninguna de las capas de la pared de la espora se tiñe con el reactivo de Melzer. La hifa de sostén es de color marrón parduzco; de forma recta de 10.5 a 30.3 µm, frecuentemente presenta una bifurcación (fb) a distancia de la pared de la espora. La pared de la hifa está compuesta de 3 capas (shwl1-3), las cuales son continuas a las paredes de la espora (Swl1-3). El poro de la espora está cerrado. El septo se encuentra en la base de la espora y pueden encontrarse numerosos septos a lo largo de la hifa.
Material examinado: México, Veracruz, Actopan, Plan de Higuera (19°26’17.0” N, 96°33’35.6” O, 140 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque tropical caducifolio, H. Méndez-Cortés, 08-2020. México, San Luis Potosí, Matehuala (23°21’51.1” N, 100°35’01.7” O, 1,373 m snm) en un suelo rizosférico de matorral xerófilo, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021 (CH-SLPM-229).
Distribución y hábitat. Septoglomus furcatum, se registró por primera vez asociado a raíces de Cordia oncocalyx Allemann (Cordiaceae) en Brasil. Posteriormente se realizó un cultivo monoespecífico utilizando a Plantago lanceolata L. (Plantaginaceae) como planta huésped, en donde S. furcatum formó micorrizas con numerosos arbúsculos, vesículas e hifas poco frecuentes (Blaszkowski et al., 2013). El segundo reporte en Brasil, se evidenció a través de una investigación en torno a la retroalimentación de suelo-planta, donde la mencionan como una especie clave, propagada en Senna uniflora (Mill.) HSIrwin y Barneby (Caesalpiniaceae), con suelo de áreas degradadas que han sido restauradas en ese país (Medeiros et al., 2022). La presencia de S. furcatum en el continente asiático seregistró asociado a las raíces de Rosa acicularis Lindl. (Rosaceae) junto a una baja diversidad de 3 especies de HMA (Zu et al., 2019), mientras que Ming et al. (2023), la registraron en un bosque de Pinus damingshanensis W.C.Cheng y L.K.Fu (Pinaceae) , Cryptomeria japonica y en un bosque lanceolado de Cunninghamia R.Br. (Cupressaceae), junto con 27 especies más. En México, se aisló de suelo rizosférico de un bosque tropical caducifolio en Veracruz y matorral xerófilo en San Luis Potosí.
Septoglomus fuscum Błaszk., Chwat, Kovács y Ryszka, 2013.
Fig. 4a-d
Figura 4. Estructura subcelular de Septoglomus fuscum. A) Esporas solitarias en PVLG (40x); B) capas externas Swl1-2 de la pared de la espora e hifa de sostén en reactivo de Melzer (40x); C) capas externas Swl1-2 de la pared de la espora en reactivo de Melzer (100x); D) capas shwl1-2 de la pared de la hifa de sostén en PVLG (100x).
Las esporas se forman en el suelo en racimos sueltos. Grupos de 89-194 × 141-248 µm con 2 a 7 esporas. Esporas de color blanco amarillento en la juventud, anaranjado parduzco a marrón oscuro en la madurez; globosas a subglobosas; (32-) 51 (-102) µm de diámetro. La pared de la espora consta de 2 capas (Swl1-2). Swl1, es semipersistente, semiflexible, de color amarillo dorado, de 1.8 a 2.4 µm de grosor, al oprimir el cubreobjetos se separa de la capa Swl2. Swl2 es laminada, lisa, de amarillo a anaranjado parduzco de (1.8-) 3.5 (-6.7) µm de grosor. Ninguna de las capas de la pared de la espora se tiñe con el reactivo de Melzer. La hifa de sostén es de color anaranjado parduzco a marrón oscuro en esporas maduras; recta o recurvada, cilíndrica en forma de embudo, a veces ligeramente constreñida en la base de la espora; (5.8-) 7.4 (-12.3) µm de anchura en la base de la espora. Pared de la hifa de color amarillo a anaranjado parduzco de (0.8-) 2.7 (-5.8) µm de grosor. El poro es abierto de 1.5 a 2.7 µm de diámetro.
Material examinado: México, Veracruz, Actopan, Plan de Higuera (19°26’17.0” N, 96°33’35.6” O, 140 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque tropical caducifolio, H. Méndez-Cortés, 08-2020. México, San Luis Potosí, Matehuala (23°21’51.1” N, 100°35’01.7” O, 1,373 m snm) en un suelo rizosférico de matorral xerófilo, R.P. Hipólito-Piedras, 08-2021 (CH-SLP-230).
Distribución y hábitat.Septoglomus fuscum se registró por primera vez asociado con raíces de Arctotheca populifolia (P.J.Bergius) Norl. (Asteraceae) en Sudáfrica. Posteriormente, se realizaron cultivos monoespecíficos con Plantago lanceolata como cultivo huésped, en donde se observaron estructuras como arbúsculos, hifas intra y extrarradicales (Blaszkowski et al., 2013). En México, se aisló de suelo rizosférico de bosque tropical caducifolio en Veracruz y un matorral xerófilo en San Luis Potosí.
Septoglomus turnauae Błaszk., Chwat, Ryszka y Orfanoudakis, 2014.
Fig. 5a-d
Figura 5. Estructura subcelular de Septoglomus turnauae. A) Espora solitaria en reactivo de Melzer (40x); B) paredes externas de la pared de la espora Swl1-4 e hifa de sostén en PVLG (40x); C) capas externas de la pared de la espora en PVLG (100x); D) septo y paredes shwl1-4 de la hifa de sostén en reactivo de Melzer (100x).
Las esporas se forman de manera solitaria en el suelo. Esporas de color anaranjado amarronado a marrón oscuro, globosas de (45) 64 (-102) µm de diámetro. La pared de la espora está compuesta de 4 capas (Swl1-4). Swl1, es evanescente, hialina, de 3.1 µm de diámetro. Swl2 es permanente, laminada, lisa, de anaranjado claro de 1.8 a 9.2 µm de espesor. Swl3 es laminada, lisa, de color anaranjado claro a anaranjado parduzco, de 3.5 a 9.3 µm de espesor. Swl4 semiflexible, lisa, de color anaranjado parduzco de 1.0 a 1.7 µm de espesor. Ninguna de las capas se tiñe con el reactivo de Melzer. La hifa es de color anaranjado parduzco de (4.5-) 8.2 (-10.7) µm de espesor en la base de la espora, la hifa es continua con las capas Swl1-3. El poro es de (1.3-) 2.7 (-3.2) µm de diámetro, estrechándose con la edad.
Material examinado: Coahuila, Sierra Hermosa (25°14’42” N, 100°51’18” O, 2,255 m snm) en suelo rizosférico de un bosque de pino, H. Méndez-Cortés, 08-2020. Guanajuato, San Felipe (21°41’56.4” N, 101°12’57.6” O, 2,445 m snm), en un suelo rizosférico de un bosque de encino, R.P. Hipólito-Piedras. San Luis Potosí, Xilitla (21°22’21.4” N, 99°00’39.0” O, 857 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque mesófilo de montaña, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021. México, San Luis Potosí, Charcas (23°22’58.5” N, 101°20’18.5” O, 2,471 m snm) en un suelo rizosférico de un pastizal, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021. San Luis Potosí, Sierra de Álvarez (22°03’06.3” N, 100°34’50.8” O, 2,700 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque de encino, R. P. Hipólito-Piedras, 08-2021. Tamaulipas, Jaumave (23°08’26.0” N, 99°17’48.4” O, 742 m snm) en un suelo rizosférico de un bosque de encino, R. P. Hipólito-piedras, 08-2021. (CH-SLPM-230).
Distribución y hábitat. S. turnuauae se registró en cultivos trampa inoculados con el suelo de la rizósfera y raíces de Cistus sp. L. (Cistaceae), en Italia. Posteriormente, se realizaron cultivos monoespecíficos con Plantago lanceolata, donde se observaron arbúsculos e hifas (Blaszkowski et al., 2014). En México, se aisló de suelo rizosférico de bosques de encino en Guanajuato y Tamaulipas, bosques de pino en Coahuila, bosque mesófilo de montaña y pastizal en San Luis Potosí.
Clave de las especies del género Septoglomus presentes en México
1. Esporas mayores a 200 micras 4
1. Esporas menores a 200 micras 2
2. Esporas con 2 capas en la pared de la espora 3
2. Esporas con 3 capas en la pared de la espora 5
2. Esporas con 4 capas en la pared de la espora 6
3 Esporas amarillas a marrones 7
3. Esporas rojas a negras 8
4. Esporas solitarias; de color anaranjado rojizo a marrón rojizo; globosa; (154.5-)202.8 (-228.9) µm de diámetro. La pared de la espora costa de 4 capas (Swl1-4). Capa Swl1 es evanescente hialina, lisa, con la edad se torna rugosa o se desprende. Swl2 permanente, laminada de color anaranjado, Swl3 es permanente, lisa y laminada de color anaranjado a marrón. Swl4 semiflexible, hialina, lisa, raramente se separa de swl3. Hifa de sostén amarilla a marrón, recurvada de 4 capas (shwl1-4), con poro cerrado por un septo situado en la base de la espora Septoglomus mexicanum
5. Esporas solitarias; de color marrón rojizo a marrón oscuro; globosas a subglobosas; (106-) 138 (-167) µm de diámetro. La pared de la espora consta de 3 capas (Swl1-3). Capa Swl1, semipermanente, hialina a anaranjado claro, lisa con gránulos de suelo. Swl2 semipermanente, hialina a amarillo dorado. Swl3 es laminada, lisa, marrón rojizo a marrón oscuro. La hifa de sostén es de color marrón parduzco a marrón oscuro; rectas o curvadas, cilíndricas, bifurcada, compuestas por 3 capas (shwl1-3), poro cerrado por un septo en la base de la espora, además, a lo largo de la hifa se encontrarán septos transversales Septoglomus furcatum
6. Esporas solitarias; de color anaranjado parduzco a marrón oscuro; globosas a subglobosas; (110-) 133(-165) μm de diámetro. La pared de la espora consta de 4 capas (Swl1-4). Swl1, es evanescente, hialina y lisa. Swl2 permanente, laminada, lisa, de color anaranjado claro a anaranjado parduzco. Swl3 es laminada, lisa, de color anaranjado claro a anaranjado parduzco. Swl4 semiflexible, lisa, de color anaranjado claro a anaranjado parduzco. La hifa de sostén es de color anaranjado parduzco a marrón oscuro, constituida de 3 capas (shwl1-3) con un septo en la base de la espora que no invade el lumen de la hifa de sostén Septoglomus turnauae
7. Esporas en racimos o solitarias, de color amarillento en la juventud, anaranjado parduzco a marrón oscuro en la madurez; globosas a subglobosas; (20- ) 47 (-90) µm de diámetro. La pared de la espora consta de 2 capas (Swl1-2). Swl1, semi persistente, semiflexible, de color blanco anaranjado a amarillo dorado. Swl2 laminada, lisa, blanco amarillento en esporas juveniles, anaranjado parduzco a marrón oscuro en esporas maduras. La hifa de sostén de color anaranjado parduzco a marrón oscuro; recta o recurvada, cilíndrica a forma de embudo, con poro abierto, sin septo, estrechamiento gradual hasta llegar al centro del lumen de la hifa Septoglomus fuscum
8. Esporas solitarias; de color marrón rojizo oscuro a negro rojizo; ovoides, elípticas y globosas, de 137-175 (-208) × 125-170 (-204) µm de diámetro. La pared de la espora está compuesta por 2 capas (Swl1-2). Swl1 es subhialina, lisa, de color amarillo oscuro. Swl2 es de marrón rojizo oscuro a negro rojizo, lisa, laminada. La hifa de sostén de color amarillo oscuro a un marrón rojizo, cilíndrica, curveada, ancha en la base de la espora estrechándose debajo de esta, poro cerrado, septo concoloro a la base de la espora y tonalidad clara cuando se encuentra debajo de la pared de la espora Septoglomus altomontanum
Discusión
En México, el género Septoglomus está representado por 33% de las especies descritas en el mundo, lo que equivale a 5 de las 13 especies conocidas. Entre éstas, destaca S. constrictum debido a su amplia distribución y frecuentes registros en diversas comunidades vegetales. Por otro lado, S. xanthium ha sido principalmente registrada en agroecosistemas (Polo-Marcial et al., 2021). Septoglomus mexicanum se ha registrado en asociación con Prosopis laevigata (Humb. y Bonpl. ex Willd.) M.C.Johnst. (Mimosaceae) (Chimal-Sánchez et al., 2020), similar a S. titan BT Goto y GA Silva (Glomeraceae) que se ha registrado en zonas áridas del país (Guardiola-Márquez et al., 2022).
De acuerdo con los registros de las especies de HMA descritas en esta investigación, Septoglomus altomontanum fue la única especie cuya distribución coincidió con la descripción original al ser aislada en sitios con vegetación de coníferas y encinos, a altitudes superiores a 2,000 m, lo cual es similar a lo reportado por Palenzuela et al. (2013), quienes documentaron su presencia en zonas con vegetación similar, localizadas entre 1,800 y 3,100 m de altitud.
Septoglomus altomontanum se diferencia de las especies de HMA descritas hasta la fecha, incluso de las del mismo género, en términos de tamaño, color, estructura, forma e hifas de las esporas. La especie que podría generar algún debate conforme a su morfología es S. furcatum; no obstante, ésta presenta la particularidad de tener una hifa que se adelgaza a medida que se aleja de la base de la espora (Blaszkowski et al., 2013), mientras que S. altomontanum mantiene un grosor uniforme a lo largo de la pared de la espora y la hifa (Palenzuela et al., 2013).
Septoglomus furcatum se destaca por sus esporas grandes de tonalidad oscura que presentan una pared de 3 capas y, con frecuencia, hifas ramificadas, incluso llegando a tener 2 hifas cercanas entre sí, característica que no se encuentra en otras especies del género Septoglomus (Blaszkowski et al., 2013).A primera vista, las esporas de S. furcatum pueden parecer similares a las de S. constrictum (Trappe) Sieverd., GA Silva et Oehl; sin embargo, se diferencian por la estructura de la pared de la espora, ya que S. furcatum tiene 3 capas, mientras que S. constrictum tiene solo 2. Además, la espora de S. constrictum tiende a ser de un tono anaranjado parduzco, mientras que la de S. furcatum es de color marrón oscuro. La característica de S. furcatum de poseer una hifa ramificada, es similar a la de las esporas de G. brohultii Sieverd. y R.A. Herrera (Glomeraceae). Sin embargo, G. brohultii tiene una tonalidad más clara tanto en la pared de la espora como en la hifa, a diferencia de S. furcatum, que presenta una tonalidad oscura uniforme tanto en la pared como en la hifa (Blaszkowski et al., 2013; Oehl et al., 2011).
Septoglomus fuscum es similar a S. xanthium, tanto en características moleculares como en características morfológicas. No obstante, se ha observado que S. fuscum forma racimos sueltos de esporas, mientras que S. xanthium se compone de esporas solitarias que se adhieren y se desarrollan dentro de las raíces (Blaszkowski et al., 2004). Al analizar las capas, se nota que S. xanthium posee una capa adicional permanente que S. fuscum no presenta; sin embargo, S. fuscum tiene un grosor de capa laminada de 2 a 3 veces mayor que el de S. xanthium (Blaszkowski et al., 2013).
Desde una perspectiva filogenética, S. turnauae presenta una estrecha relación con S. fuscum, lo que sugiere un origen común entre ambas especies, a través de análisis ribosomales que las agrupan en un mismo clado. Sin embargo, se destaca que la mayoría de las esporas de S. fuscum se agrupan en racimos sueltos (Blaszkowski et al., 2013), en contraste con las esporas individuales de S. turnauae. Al comparar el número de capas, S. turnauae muestra similitudes con S. mexicanum, ambas compuestas por 4 capas en su estructura, aunque, difieren en el color de las esporas. Mientras que S. mexicanum presenta tonalidades que van desde el rojizo hasta el marrón (Chimal-Sánchez et al., 2020), las esporas de S. turnauae tienen un tono anaranjado parduzco y tonalidades diferentes, conforme empieza otra capa (Blaszkowski et al., 2014).
Previo a esta investigación, se consideraba que la distribución del género Septoglomus era limitada, sin embargo, donde se localiza expresa un comportamiento dominante respecto a los demás géneros de HMA (Guardiola-Márquez et al., 2022). No obstante, la presente investigación, que ha registrado 4 especies pertenecientes a este género, revela una riqueza de HMA previamente desconocida en las comunidades vegetales de México. Además, sugiere que este género no se encuentra restringido a una distribución específica, ya que se ha documentado en 5 comunidades vegetales distintas en el país. El reciente hallazgo de S. altomontanum, S. fuscum, S. furcatum y S. turnauae eleva el número de especies registradas en México a 171, ésto constituye aproximadamente 48% de la riqueza global de HMA y 62% de las especies se han reportado del género Septoglomus en el país.
Agradecimientos
A la Secretaría de Ciencia, Humanidades, Tecnología e Innovación (Secihti) por la beca otorgada (775694) a la primera autora para sus estudios de posgrado.
Referencias
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Received: 18 February 2025; accepted: 26 November 2025
Abstract
The Neovolcanic Belt of central Mexico is a phytogeographically significant region that influenced moss distribution patterns in the Americas. Its alpine moss flora was updated in 1971, but species range information remains fragmentary. This study updates the list and distribution of alpine mosses in the Neovolcanic Belt, and improves our understanding of these ranges by developing species distribution models (SDMs) for 4 mosses. Hypothetically, mosses reached alpine tops by migration. At lower elevations, interchange by corridors across the Belt connected ecologically similar areas and brought other species to alpine elevations. This can be tested using SDMs. SDMs provided high to relatively high prediction accuracy for all modeled species (mAUC = 0.88 ± 0.06; mCBI = 0.72 ± 0.09), and confirmed the corridor hypothesis. Overall, elevation emerged as the most important distribution predictor of target species, showing a positive sigmoidal relationship with environmental suitability. Our models effectively captured an integrated climatic signal via elevation, due to its strong negative correlation with several temperature- and precipitation-related predictors. Out of 120 alpine mosses, some are widespread in central Mexico while others are mainly distributed in eastern or western mountains. Additional fieldwork and ecological research are essential to further clarify their distribution.
Keywords: Bryophyta; Digital mapping; Machine learning; Maxent; Mexican highlands; Predictive modeling; Species distribution models
Resumen
El Eje Neovolcánico ha influido en los patrones de distribución continental de musgos. Desde 1971, no se revisaba el número y la distribución de especies alpinas. Este trabajo actualiza el listado para el Eje Neovolcánico y explica la distribución mediante modelos de distribución de especies (SDM) para 4 casos seleccionados. En teoría, los musgos se distribuyeron por migración entre zonas alpinas. El intercambio mediante corredores entre sitios ecológicamente similares de elevaciones más bajas permitió el ingreso de otras especies. Los SDM ofrecieron predicciones precisas, de alta a relativamente alta, para todas las especies modeladas (mAUC = 0.88 ± 0.06; mCBI = 0.72 ± 0.09) y confirmaron la hipótesis de los corredores. En general, la elevación fue el predictor más importante de distribución de especies, mostrando una relación sigmoidal positiva con la idoneidad ambiental. Tales modelos capturaron de manera efectiva la señal climática integrada a través de la elevación, por su fuerte correlación negativa con varios predictores relacionados con temperatura y precipitación. De 120 taxones de musgos alpinos, unos tienen distribución generalizada, otros se distribuyen principalmente en las montañas del este o del oeste. Trabajo de campo adicional explicaría mejor la distribución.
Except for Bartram (1945, 1949) there is no major reference to alpine mosses (i.e., from above timberline) in the early bryological literature for Mexico. Floristic information frequently refers to highland moss collections with incidental direct or indirect reference to alpine species (e.g., Cardot, 1909a, b, c, 1910a, b, c, d, 1911; Hooker, 1818, 1820; Thériot, 1921, 1931, 1933). In the early 1970, results of fieldwork produced a preliminary evaluation and a list of 84 taxa in alpine habitats of central and northern Mexico (Delgadillo, 1971). Study of additional collections brought the number of mosses to 111 taxa (Delgadillo, 1984, 1987) representing 5 floristic elements (Northern, Meso-American, Southern, Wide-ranging, Endemic) according to their world ranges. These ranges were explained on the basis of hypotheses supported by ecological, geological, and geographical considerations as part of a project on the phytogeographical role of the Neovolcanic Belt of central Mexico (Delgadillo, 1985, 1987, 1988). The species shared among mountain tops indicate that these areas act as stepping-stones for moss migration and that the Mexican highlands have participated in significant floristic exchange in the Americas. Furthermore, it seems that the Neovolcanic Belt mountains also served as an incomplete barrier to moss interchange due to their geographical position and uneven elevation, especially between northern and southern areas on either side of the range. According to Delgadillo (1988, 1992, 1998, 2009) moss distribution through 7 lowland topographic discontinuities suggest that they are pathways (corridors) for migration across the Belt. Corridors in the Neovolcanic Belt occur at elevations of approximately 2,000 m in the northern portion, descending to around 1,500 m in southern areas, with some reaching up to 2,800 m (Delgadillo, 1988, 1998). These corridors contain mixed contingents of high- and lowland moss species.
The high number of species shared among alpine areas seems to support the hypothesis on the presumed interchange along the mountains of the Neovolcanic Belt. In theory, the colonizing species could spread from 1 or several points of arrival and extend their ranges toward other alpine or subalpine habitats. Modern populations are descendants already adapted to high elevations that occupy new microhabitats in the corridors.
The floristic patterns of the moss flora in the highlands are poorly represented because of the low number of samples and data collected from the alpine areas or across elevation gradients. Species distribution models (SDMs) provide useful tools for filling existing knowledge gaps on species ranges in underexplored areas by quantifying the statistical relationships between species observations and environmental conditions from known locations and spatializing these relationships across the landscape (Guillera-Arroita et al., 2015; Mateo et al., 2011). SDMs can thus offer explanations as to how current species distribution patterns became established.
This paper aims to provide a comprehensive updated list of alpine mosses and their known distribution in the Neovolcanic Belt of central Mexico, and improve our understanding of these ranges by predicting the distribution of 4 moss species selected as case studies using SDMs. We hypothesize that in addition to migration among mountain tops, moss interchange across the Neovolcanic Belt occurs via corridors connecting ecologically similar areas, as suggested by the distribution of species along the Belt (Delgadillo, 1988, 1998, 2009). SDMs were built using Maxent machine learning, which is based on the principle of maximum entropy, and known to provide accurate predictions of species distribution using presence-only data (Phillips et al., 2006; Phillips & Dudík, 2008).
Materials and methods
A revised list of alpine mosses (Table 1) in central Mexico was obtained from published records, especially the previous listing (Delgadillo, 1987), and from current herbarium holdings at MEXU; updates came from fieldwork or unreported specimens. The TROPICOS database (https://www.tropicos.org/home), the Bryophyte Nomenclator (https://www.bryonames.org), and the International Plant Names Index (https://www.ipni.org/?) were consulted for floristic and taxonomic information.
Known distribution ranges of alpine mosses
Herbarium information and data from a revised digital LATMOSS (Delgadillo et al., 1995) were then compiled to obtain the altitudinal range for each alpine moss cited in Table 1. Several species such as Leptodontium viticulosoides, Orthotrichum pycnophyllum, and Zygodon ehrenbergii frequently grow as epiphytes on phorophytes living above timberline in protected habitats; epiphytic mosses may still be labelled as alpine. Also, mosses growing in sites close to timberline, but slightly below its average altitude, may still be considered as alpine. This situation applies to various specimens whose stated altitudinal range does not reach 4,000 m. Timberline elevation varies in central Mexico; in such volcanoes as Iztaccíhuatl and Popocatépetl the mean elevation value is 4,020 m and 3,911 m, respectively, as shown by Beaman (1962). Specimens of Astomiopsis amblyocalyx and A. exserta were reported as alpine (Bartram, 1949), but since no other collections at MEXU are truly alpine, they are only listed for 2 mountains in this report. Old specimens and literature records without habitat or elevation, were not included in the original list for the alpine flora.
Table 1 distinguishes 5 groups of species. Each group includes species common to 1 or more alpine areas as represented by specimens collected there. The groups provide preliminary information on the potential distribution of the alpine moss flora in the mountains of central Mexico. Most species are distributed elsewhere, and their known altitudinal range may be an indication of their local vertical potential. Information on life-form describing the ecological response of mosses is also cited as this may offer insights on their adaptation to life in the highland environment.
Table 1
Revised list of alpine taxa and their distribution in the Neovolcanic Belt of central Mexico, known altitudinal range (Alt-rge), local distribution groups, and life-form. Abbrev.: N-COL = Nevado de Colima, IZTA = Iztaccíhuatl, POPO = Popocatépetl, TOL = Nevado de Toluca, MAL = La Malinche, P-ORIZ = Pico de Orizaba, C-PER = Cofre de Perote. C = Inland-mountain distribution, G = generalized, C-E = inland- eastern mountains, W-C = western-inland mountains, E = eastern mountains.
Taxa
N-COL
IZTA
POPO
TOL
MAL
P-ORIZ
C-PER
Alt-rge (m asl)
Group
Life-form
Aligrimmia peruviana R.S. Williams
1
4,150
C
short tufts
Aloinella catenula Cardot
1
1
1
1
1
1
1
2,500-4,020
G
tufts
Amphidium tortuosum (Hornsch.) Cufod.
1
1
1
1
1
2,000-4,550
G
tufts or cushions
Anacolia laevisphaera (Taylor) Flowers
1
1
1
1,800-4,400
C-E
loose tufts
Andreaea rupestris Hedw.
1
1
1
1
1
1
1
2,950-4,420
G
tufts or mats
Anoectangium aestivum (Hedw.) Spruce
1
1
1
96-4,400
C
tufts
Anomobryum julaceum (Schrad. ex G. Gaertn., B. Mey. & Scherb.) Schimp.
1
1
1
1
200-4,570
W-C
tufts
Anomobryum prostratum (Müll. Hal.) Besch.
1
1
1
1
1
1
1
1,700-4,700
G
tufts
Table 1. Continued
Taxa
N-COL
IZTA
POPO
TOL
MAL
P-ORIZ
C-PER
Alt-rge (m asl)
Group
Life-form
Aongstroemia julacea (Hook.) Mitt.
1
1
1
1
1
2,900-4,500
G
loose tufts
Aongstroemia orientalis Mitt.
1
1
1
1
1
1
1
1,700-4,350
G
loose tufts
Astomiopsis amblyocalyx Müll. Hal.
1
1
3,370-3,600
C
tufts
Astomiopsis exserta (E. B. Bartram) Snider
1
3,370-3,600
C
tufts
Bartramia brevifolia Brid.
1
1
1
1
1
1
1,300-4,000
G
loose or dense tufts
Bartramia ithyphylla Brid.
1
1
1
3,000-4,180
C-E
loose or dense tufts
Bartramia microstoma Mitt.
1
1
1
1
1
1
2,636-4,350
G
loose or dense tufts
Bartramia potosica Mont.
1
1
1
1
1
1
1
2,636-4,350
G
loose or dense tufts
Brachymenium systylium (Müll. Hal.) A. Jaeger
1
1
1
1,060-3,375
G
dense tufts
Brachythecium frigidum (Müll. Hal.) Besch.
1
1
1
1
1
2,652-4,175
C-E
mats or tufts
Brachythecium occidentale (Hampe) A. Jaeger
1
1
1
1
2,700-4,230
C-E
mats or tufts
Brachythecium plumosum (Hedw.) Schimp.
1
1
1
1,450-4,200
C
mats or tufts
Brachythecium ruderale (Brid.) W. R. Buck
1
1
1
1
1
1
1
1,150-4,230
G
mats or tufts
Brachythecium salebrosum (Hoffm. ex F. Weber & D. Mohr) Schimp.
1
1
2,350-3,962
C-E
mats or tufts
Braunia imberbis (Sm.) N. Dalton & D.G. Long
1
1
1
1
1
2,300-3,950
G
mats or tufts
Breutelia subarcuata (Müll. Hal.) Schimp.
1
1
1
1,800-alpine
W-C
dense tufts
Bryoerythrophyllum bolivianum (Müll. Hal.) R. H. Zander
1
3,580-3,900
E
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum calcareum (Thér.) R. H. Zander
1
2,600-3,750
C
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum campylocarpum (Müll. Hal.) H. A. Crum
1
1
2,030-4,100
C
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum ferruginascens (Stirt.) Giac.
1
1
1
2,500-4,000
C
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum jamesonii (Taylor) H. A. Crum
1
1
1,400-4,300
C
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum recurvirostrum (Hedw.) Chen var. aeneum (Müll. Hal.) R. H. Zander
1
1
1,700-3,910
C-E
loose or dense tufts
Bryoerythrophyllum recurvirostrum (Hedw.) Chen var. recurvirostrum
1
1
1
1
1,070-3,970
G
loose or dense tufts
Bryomanginia saint-pierrei Thér.
1
1
3,600-4,350
C
tufts
Bryoxiphium norvegicum (Brid.) Mitt. var. mexicanum (Besch.) Sharp
Species distribution modeling of case study mosses
Herbarium and literature sources are sometimes insufficient to obtain reliable data for analysis. Various species, including Grimmia pulla, Orthotrichum pycnophyllum, and Zygodon ehrenbergii were evaluated for their distribution as corridor or alpine species. Specimens of these 3 taxa were few in number, rarely alpine and thus not entirely useful to test our hypothesis; 4 other species were selected because their habitat and elevation were well-known from various alpine localities and substrates in the Neovolcanic Belt. MEXU holds sufficient number of georeferenced specimens of Brachythecium occidentale and B. plumosum, 2 of the few pleurcarpous mosses that grow mainly on soil or rocks. Grimmia longirostris and G.trichophylla are broadly represented in our records, they are acrocarpous rupicolous species, and sometimes the latter also occurs on soil and trunks. Information for Grimmia was further complemented with specimen data from other international herbaria consulted in a recent review of the genus (Delgadillo, 2015). Besides habitat, the species selected are known for their broad altitudinal ranges, from the alpine areas to 2,000 m or more below timberline. Actual distribution records were expected to show their presence in the lowland corridors between the high peaks and on the southern slopes of Neovolcanic Belt mountains. The Neovolcanic Belt delimitation was based on the Neovolcánico map “Provincias biogeográficas de México” (Scale 1:4 000 000; Conabio, 1997), which was subsequently used to compute our environmental predictors and as the calibration and prediction area for our models.
To prevent inflated predictive accuracy and biases in distribution range estimates, we evaluated and removed spatial autocorrelation from the records of each species prior to model construction, using R v.4.3.2 (R Development Core Team, 2023). Initially, we performed a Moran’s I test with 999 permutations using the moran.mc() function from the spdep package v.1.3-3 (Bivand & Wong, 2018), which detected the presence of spatial autocorrelation for the 4 target species (mean Moran’s I = 0.170 ± 116, p-values < 0.05). Two spatial filtering distances were then tested to remove autocorrelation, 1 km and 10 km, with only the 10-km filter successfully removing autocorrelation, as confirmed by a second Moran’s I test (mean Moran’s I = -0.004 ± 0.001, p-values > 0.05). Spatial filtering was carried out using the thin() function of the spThin package v.0.2.0 (Aiello-Lammens et al., 2015). The final number of occurrences available for modeling in this region was 37, 25, 50, and 29 for B. occidentale, B. plumosum, G. longirostris, and G. trichophylla, respectively (Supplementary material: Table 1).
Environmental predictor selection and modeling approach
Climatic and topographic predictors were preselected according to their known influence on bryophyte distribution and diversity (Cerrejón et al., 2020, 2022). Bioclimatic predictors included the 19 variables provided by WorldClim 2.1, which were acquired at ~ 1 km spatial resolution using the worldclim_country() function of the geodata package v.0.6-2 (Hijmans et al., 2024) in R v.4.3.2 (R Development Core Team, 2023). To develop our topographic predictors, the digital elevation model of the Shuttle Radar Topography Mission (SRTM) was obtained from Google Earth Engine (Gorelick et al., 2017) at 1 km spatial resolution to match that of the bioclimatic predictors. Topographic predictors comprised elevation, slope, Topographic Position Index (TPI) and Beer’s aspect. TPI refers to the relative elevation at each cell compared to its surrounding environment (here calculated using a circle neighborhood of 1 cell), while Beer’s aspect is a measure of incident solar radiation (Vanderpuye et al., 2002). All predictors were standardized (mean = 0, sd = 1).
Predictor multicollinearity was tested using a set of 10,000 random background points and the collinear() function of the collinear R package v.1.1.1 (Benito, 2023). This function automatically removed highly correlated predictors (here, |Spearman r|) > 0.7; Dormann et al., 2012) and those that are linear combinations of other predictors (Variance inflation factor > 10; Kutner et al., 2005). To avoid model overfitting, we further limited the inclusion of predictors for each species based on their number of available observations, maintaining a predictor-to-observation ratio of 1:10 (Harrell et al., 1996; Peduzzi et al., 1996). For this predictor selection step, we performed preliminary Maxent models by species to identify and keep the most important predictors in each case that ensured the 1:10 ratio. More specifically, permutation importance and percent contribution were used to assess the relative importance of environmental predictors in each preliminary model (Supplementary material: Table 2). Predictors with both permutation importance and percent contribution equal to zero were removed. Aside from the number and identity of predictors used, these preliminary models were computed using the same parameterization and configuration as the final models described in the following paragraph. This resulted in a set of 4 non-collinear predictors, comprising 2 bioclimatic and 2 topographic variables (Table 2). Since presence-only data were used, 10,000 background points were randomly generated across the study area to define the available environment for all species and run the models.
Maxent models were then computed using the final set of predictors selected for each species, which ranged from 3 to 4 predictors, and included BIO2, BIO3, elevation and slope (Table 2). Models were run through the ENMevaluate() function of the ENMeval R package v.2.0.5.2 (Kass et al., 2021) using the maxent.jar implementation of the Maxent algorithm. Occurrence and background data were partitioned using the “randomkfold” method (5 folds). A range of feature class combinations (linear [L], linear + quadratic [LQ], linear + quadratic + hinge [LQH], and hinge [H]) and regularization multipliers (1 to 5) were tested (Phillips et al., 2006; Phillips & Dudík, 2008), resulting in a total of 20 candidate models with different configurations per species. We then identified the best-performing model per species based on the (lowest) AICc values obtained across their candidate models (Burnham & Anderson, 2004; Warren & Seifert, 2011). AICc is a comprehensive suitable metric for model selection that balances goodness-of-fit with model complexity (i.e., number of parameters), allowing us to identify the most parsimonious model and reduce the risk of overfitting. The predictive performance of each best-performing model was assessed via 5-fold cross-validation using 2 threshold-independent metrics, namely the area under the receiver operating characteristic curve (AUC; Fielding & Bell, 1997), and the continuous Boyce Index (CBI; Boyce et al., 2002; Hirzel et al., 2006). AUC ranges from 0 for an inverse model, to 0.5 for a random model to 1 for a perfect model, while the CBI varies from 1 for an inverse model, to 0 for a random model to 1 for a perfect model. The best-performing models were subsequently used to generate spatial predictions of environmental suitability (continuous values, 0-1) per species at 1 km resolution across the study area using the “cloglog” transformation (Phillips et al., 2017). In addition, we generated binary models (presence/absence) using the maximum training sensitivity plus specificity threshold, which is a robust method in species distribution modeling due to its insensitivity to species prevalence and its effectiveness in balancing omission and commission errors (Freeman & Moisen, 2008; Jiménez-Valverde & Lobo, 2007; Liu et al., 2013). Variable importance for predicting species distribution was evaluated via jackknife test, while the effects of these predictor variables were evaluated through species response curves.
To test our hypothesis, corridors were spatially defined at elevations between 1,800 m and 2,700 m in the Neovolcanic Belt. The lower limit of 1,800 m was chosen as a compromise between the higher lower-elevation limit in the northern portion (~ 2,000 m) and the lower limit in the southern portion (~ 1,500 m) of the region (Delgadillo, 1988, 1998). We then assessed the predicted presence of our species within corridors by overlaying their binary predictions with the corridor classification map.
Results
There are 120 specific and infraspecific taxa in the known alpine moss flora of the Neovolcanic Belt in central Mexico (Table 1). This table shows records from the western-most mountain (Nevado de Colima in Jalisco) eastwards to those near the Gulf of Mexico coastline (Pico de Orizaba and Cofre de Perote) in Veracruz. The number of taxa per mountain may reflect an uneven sampling due to the size and ease of access. La Malinche and Nevado de Colima, with the lowest known numbers of alpine mosses (44 and 48, respectively), seem to have been visited by few professional bryologists; the highest values correspond to the mountains near Mexico City and Toluca. There are other mountains along the Belt that reach 4,000 m in elevation, but there are few or no bryophyte collections are available from them.
Species in Table 1 may be divided in various groups according to their mountain distribution. Group G includes 43 species recorded from all or most of the mountains studied. Group C comprises 32 taxa known from the inland mountains studied, i.e., recorded from the mountains further away from coastal areas; their distribution may be similar to those in the G group, but have remained undetected in other areas because they may be somewhat inconspicuous or inhabit poorly collected mountains. Species in Group C-E (33) and E (6) are similar in distribution but are shared with eastern elevations, i.e., Pico de Orizaba and/or Cofre de Perote. A small group labelled W-C seem to be absent from the alpine areas of the eastern mountains.
Table 2
Description of selected environmental predictors by category used to model and map the distribution of Brachythecium occidentale (BOCC), Brachythecium plumosum (BPLU), Grimmia longirostris (GLONG), and Grimmia trichophylla (GTRI).
Predictors
Description
Category
BOCC
BPLU
GLONG
GTRI
BIO2
Mean Diurnal Range (Mean of monthly max temp – min temp) (°C)
Bioclimate
x
x
x
BIO3
Isothermality (BIO2/BIO7) (×100) (%)
Bioclimate
x
Elevation
Continuous topographic elevation surface through the cells (m)
Topography
x
x
x
x
Slope
Maximum rate of change in value from one cell to its immediate neighbors (degrees)
Topography
x
AUC and CBI metrics showed high to relatively high predictive accuracy across all candidate Maxent models evaluated per species resulting from different configurations of feature classes and regularization multipliers (Fig. 1). While B. plumosum, G. longirostris, and G. trichophylla were best predicted using a LQ model, a more complex LQH model performed best for B. occidentale; regularization multipliers varied between 1 and 2 across species (Table 3). The best performing models for each species showed validation AUC and CBI values ranging from 0.83 to 0.94 and from 0.61 to 0.82 (Table 3), indicating, respectively, high predictive accuracy and generally strong agreement between observed and predicted suitability.
The predictive mapping shows that all modeled species are expected to occur in alpine and adjacent highland areas of the Neovolcanic Belt, as well as in corridors, although to varying extents (Fig. 2). These distribution patterns are clearly visible in our binary predictions (Fig. 2D, F, H, J), where dark and light green colors correspond to the predicted presence of the species outside and within corridors, respectively. Specifically, B.occidentale, G. longirostris, and, to a lesser extent, G. trichophylla are expected to occur in corridors acrosscentral and eastern sites of the Neovolcanic Belt, while B. plumosum only is restricted to corridors in the easternmost portion of this region. Brachythecium and a few other pleurocarpous mosses in the alpine areas of central Mexico form mats and tufts (Table 1). Tufts or cushions seem to characterize most acrocarpous mosses including several species of Grimmia at these high elevations that seem to have a wider distribution there. Maps show the areas of occurrence where herbarium specimens record actual findings; G. longirostris was recently collected in other sites outside the Neovolcanic Belt. Most new findings occur in comparatively lower localities in drier areas.
Figure 1. Predictive performance across all candidate Maxent models (n = 20) generated for Brachythecium occidentale (A), B. plumosum (B), Grimmia longirostris (C), and G. trichophylla (D) according to the area under the receiver operating characteristic curve (AUC) and the continuous Boyce Index (CBI).
Table 3
Configuration of the best-performing Maxent model for each target species, along with the performance metrics from 5-fold cross-validation, including the area under the receiver operating characteristic curve (AUC) and the continuous Boyce Index (CBI). Feature class abbrev.: LQ, linear + quadratic; LQH, linear + quadratic + hinge.
Species
Feature class
Regularization multiplier
AUC
CBI
Brachythecium occidentale
LQH
2
0.83
0.82
Brachythecium plumosum
LQ
1
0.92
0.61
Grimmia longirostris
LQ
2
0.84
0.72
Grimmia trichophylla
LQ
1
0.94
0.73
Final models for all 4 species consistently included elevation, which emerged as the most influential predictor of the distribution of B. occidentale, G. longirostris, and G. trichophylla, yielding the highest gain in performance when used in isolation and causing the greatest drop when excluded from the model(Fig. 3). In contrast, B. plumosum was best predicted by BIO2 (Mean Diurnal Range), as evidenced by the greatest decrease in model performance when this predictor was omitted, with elevation playing a secondary but still relevant role. The remaining predictors retained in the final models showed only marginal contributions, including BIO2 and BIO3 (Isothermality) for B. occidentale, and slope and BIO2 for G. longirostris and G. trichophylla, respectively (Fig. 3). Regarding species response curves, elevation exhibited a positive sigmoidal relationship with environmental suitability across the 4 target species, with suitability values increasing with elevation (Supplementary material: Fig. 1). More specifically, all species showed an increase in predicted environmental suitability from intermediate values (0.5) at elevations between 2,000 m and 2,300 m to high suitability values (≥ 0.8) at elevations equal to or exceeding approximately 2,700 m, with their environmental optimum (asymptote) reached at elevations equal to or exceeding 2,600 m for both Brachythecium species and 3,200 m for the Grimmia species (Supplementary material: Fig. 1). On the other hand, BIO2 showed a reversed sigmoidal relationship with environmental suitability for B. plumosum, with suitability values decreasing as BIO2 values increased (Supplementary material: Fig. 1). Specifically, high environmental suitability values (≥ 0.8) were associated with BIO2 values of approximately ≤ 13 °C, with the environmental optimum (asymptote) occurring at BIO2 values ≤ 12.5 °C; environmental suitability for B. plumosum decreased to intermediate values (0.5) at BIO2 values equal to 14.5 °C (Supplementary material: Fig. 1).
Discussion
This contribution is based on previous proposals related to Mexican alpine mosses. The first concerns the degree of floristic similarity among mountain tops along the Neovolcanic Belt. The second is related to mosses distributed along lower sites or pathways that overcome, to some degree, the barrier effect of the mountain range.
Delgadillo (1971) and Mastretta-Yanes et al. (2015) introduced hypothetical considerations of the role of geological events on plant occupancy of highland areas. The sum effect of historical events and the ecological response of mosses are responsible for their distribution. Previous work proposed interchange and migration as the explanation for the floristic similarity across latitudes in the alpine areas of the Neovolcanic Belt (Delgadillo, 1971, 1987). In the revised list (Table 1), species common to mountain tops indicate certain degree of floristic similarity. Specifically, the Sørensen dissimilarity Index brings together Nevado de Colima and La Malinche (Supplementary material: Fig. 2), 2 distant areas with poor collecting records; Nevado de Toluca and Cofre de Perote are also geographically distant but their floristic similarity groups them together. A geographical similarity trend may not be demonstrated because alpine areas differ in size, collecting effort, and number of specimens available for comparison. By groups, however, the distribution of species in group G, groups C and C-E complement to cover the entire Belt. In group E, Bryoerythrophyllum bolivianum, Funaria orizabensis, Grimmia ovalis, Lepyrodon tomentosus, Rhytidium rugosum, and Syntrichia obtusissima are mainly known from the eastern mountains. In group W-C, Bryum pallescens and Orthodontium gracile are mainly distributed in western localities. The distribution gaps may fill out through additional field work, but if the pattern persists, it may indicate that interchange and migration have a directional trend.
Alpine moss species in central Mexico are found around 4,000 m in elevation (Table 1), but their range may exhibit a broad altitudinal interval (1,500- 2,000 m). Extreme low elevations are known for certain species (e.g., Anomobryum spp.), while others may be found as far high as 4,600-4,700 m (Grimmia montana). Most species in the alpine flora are acrocarpous and grow in tufts, cushions or mats inhabiting soil, humus or rocks. Among the frequent occupants of extreme habitats are species of Grimmia whose distribution may extend downwards in naturally open or disturbed spaces. Few pleurocarpous mosses occur in the alpine areas (Brachythecium, Leptodictyum, Leptopterigynandrum, and Sanionia) where they grow in mats (or tufts), on rocks or soil. By definition, epiphytism is an exceptional condition for mosses in the alpine environment and thus, contributes little to floristic similarity of extreme mountain tops; in protected enclaves, some trees or shrubs may still harbor species of Orthotrichum and Zygodon.
Figure 2. Elevation (A), spatial distribution of corridors (B) and predictive mapping of environmental suitability, in both continuous (0-1) and binary formats (presence/absence), for the species Brachythecium occidentale (C, D), B. plumosum (E, F), Grimmia longirostris (G, H), and G. trichophylla (I, J), generated at 1 km spatial resolution using the best-performing model for each species. In the binary maps (D, F, H, J), predicted presence is distinguished by location within (light green) or outside (dark green) corridors. Feature classes (linear + quadratic [LQ], linear + quadratic + hinge [LQH]) and regularization multipliers of the best-performing model are indicated. White points indicate the occurrence records used for modelling each species. Note that a hillshade layer was added beneath each map to enhance visualization.Figure 3. Maxent jackknife tests of the importance the environmental predictors included in the final models for predicting the distribution of Brachythecium occidentale (A), B. plumosum (B), Grimmia longirostris (C), and G. trichophylla (D). Light blue, dark blue and red indicate the regularized training gain of the Maxent model without the variable, with only variable, and with all variables, respectively. See Table 2 for description of predictors.
The barrier effect of the Neovolcanic Belt is not complete. Herbarium records indicate that there are alpine species present on either side of the mountain range that are also part of the flora in lower elevations. Results from SDMs show that Brachythecium and Grimmia are capable of inhabiting corridor elevations, mainly in central and eastern sites, with B. plumosum restricted to the easternmost corridor areas of the region (Fig. 2). These results confirm our corridor hypothesis and indicate that both acrocarpous and pleurocarpous mosses can move across mountain ranges; both are also known from lower dry habitats in northern states (Delgadillo-Moya & Peña-Retes, 2017; Sharp et al., 1994). Overall, elevation emerged as the dominant predictor of distribution of the 4 modeled alpine moss species, with a consistent sigmoidal increase of habitat suitability toward high elevations. Because elevation was strongly (negatively) correlated with multiple temperature-related bioclimatic variables (BIO1, BIO5, BIO6, BIO8–BIO11) and with Precipitation of Wettest Month (BIO13), our models effectively captured an integrated climatic signal via elevation. This pattern is expected along mountain altitude gradients where elevation systematically influences temperature and moisture regimes via orographic lifting (Franklin, 2010). Beyond elevation, the particular importance of BIO2 for predicting the distribution of B. plumosum, along with its negative sigmoidal relationship with predicted habitat suitability, suggests that this species may be particularly sensitive to fine-scale thermal fluctuations. The identification of these key predictors highlights the relevance of thermal and moisture constraints in shaping habitat suitability for the target mosses. Ecophysiological studies on the mechanisms underlying the effect of elevation on moss occurrence, for example through their photosynthetic responses are, however, still scarce and context-dependent (Wang et al., 2022).
In order to offset the barrier effect, displacement from other altitudes would require mosses to overcome ecological hindrances related to high insolation, temperature fluctuation, and water deficit that prevent successful occupation of exposed habitats in the highlands.
Acrocarpous moss growth has solved difficulties in the occupation and spread in alpine and highland areas. Since light for photosynthesis is not a limiting factor in the open habitats, water economy becomes critical for moss plants. It may move by capillary systems involving leaf arrangement and structure, and leaf papillae (cf. Proctor, 1979). These structures and stem aggregation, tomentum, and other structures present in cushions, compact turfs, and mats seem to reduce water loss. In the presence of hair points solar radiation and evaporation can be reduced by 20% or more in species of Tortula and Grimmia (Proctor, 1984). Pleurocarpous mosses such as Brachythecium, by comparison, occupy larger soil surfaces, and do not seem to cover large patches in the alpine area unless near a water source; exposed substrates in corridor areas may limit the spread of mosses that dry out rapidly.
Dispersal is a complex mechanism that seldomly cited for highland mosses. Numerous references may be consulted on the subject, with special reference to spores and other propagules that disperse mosses (for summaries, see Delgadillo & Pérez-Bandín, 1982; Richardson, 1981; Wyatt & Anderson, 1984). In general, the sporophytes in both acrocarpous and pleurocarpous taxa, whether apical or lateral, leave capsules exposed to wind for spore release. Spores liberated in air currents travel variable distances depending on atmospheric conditions, wind speed, spore size, survival, etc. Cleistocarpic species (Delgadillo, 1992) depend on other agents for spore liberation; spores may be released when capsule wall breaks down or is fractured during transportation by cattle hoofs.
Knowledge of the bryofloristic composition of the alpine environment of Mexico has improved, but deserves a finer evaluation; incidental fieldwork in the highlands still leads to discovery of new records (Cárdenas, 1989; Delgadillo, 2020; Greven, 1999; Yip, 2002). Current data offer a significant improvement of our understanding of this alpine moss flora and its distribution patterns, and highlight the usefulness of SDMs for hypothesis-driven ecological research. Specifically, SDMs allowed us to validate our hypothesis on corridor-based species interchange across mountain environments (Delgadillo, 1988, 1998), as well as in identifying key environmental variables shaping species distributions. Enhanced field exploration and ecological modelling research, both in alpine mountain tops and adjacent subalpine areas, could further improve our understanding of the actual distribution ranges of alpine mosses, as well as the mechanisms underpinning them.
Acknowledgements
Thanks are extended to two anonymous reviewers for criticism of a previous version of this article.
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In vitro propagation and adaptation of plants to ex vitro conditions of Kroenleinia grusonii (Cactaceae)
Dolores Adilene García-González, Juan Pedro Flores-Margez y Pedro Osuna-Ávila *
Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Instituto de Ciencias Biomédicas, Av. Benjamín Franklin Núm. 4650, Zona Pronaf Condominio La Plata, 32310 Ciudad Juárez, Chihuahua, México
*Autor para correspondencia: posuna@uacj.mx (P. Osuna-Ávila)
Recibido: 23 mayo 2025; aceptado: 14 octubre 2025
Resumen
Kroenleinia grusonii (Hildm.) Lodé, es una cactácea endémica del centro de México que enfrenta riesgos como la colecta ilegal o la modificación de su hábitat natural y se encuentra catalogada como en peligro de extinción. El objetivo de este trabajo fue evaluar concentraciones de 6-bencilaminopurina (BAP) sola o combinada con ácido indolacético (AIA) en la formación de brotes de K. grusonii e inducir la formación de raíces para valorar la adaptación de plantas a condiciones ex vitro. La inducción de brotes fue con BAP (0, 1.0, 2.0 y 3.0 mg/L), AIA (0.5 mg/L) y BAP (0, 1.0, 2.0 y 3.0 mg/L) + AIA (0.5 mg/L). Se aplicó AIA 0, 1.0, 2.0 y 3.0 mg/L para enraizamiento y la adaptación ex vitro de las plantas fue con musgo de turba y con una mezcla de musgo de turba y suelo natural (1:1). El mejor tratamiento fue BAP 3.0 mg/L con 5.13 ± 0.9150 brotes por explante. Se obtuvo 89 ± 0.03% de brotes enraizados y la sobrevivencia ex vitro fue de 68.75% en musgo de turba con suelo natural (1:1). Se estableció un protocolo para la propagación clonal de K. grusonii, lo cual representa una contribución para su conservación ex situ.
Kroenleinia grusonii (Hildm.) Lodé, is a cactus endemic to central Mexico, that faces risks such as illegal collection or modification of its natural habitat and is listed as endangered. The objective of this work was to evaluate different concentrations of 6-benzylaminopurine (BAP) alone or combined with indoleacetic acid (IAA) in K. grusonii and to induce root formation to assess plant adaptation to ex vitro conditions. Shoot induction was with BAP (0, 1.0, 2.0 and 3.0 mg/L), IAA (0.5 mg/L) and BAP (0, 1.0, 2.0 and 3.0 mg/L) + IAA (0.5 mg/L). AIA 0, 1.0, 2.0 and 3.0 mg/L was applied for rooting and the ex-vitro adaptation of the plants was with peat moss and a mix with peat moss with natural soil (1:1). The best treatment was BAP 3.0 mg/L with 5.13 ± 0.9150 shoots per explant. 89 ± 0.03% of rooted shoots were obtained and the ex-vitro survival was 68.75% in peat moss substrate with natural soil (1:1). A protocol for the clonal propagation of K. grusonii was established, which represents a contribution to its ex-situ conservation.
Kroenleinia grusonii (Hildm.) Lodé (Cactaceae), también conocida como la biznaga barril de oro, es una especie que se utiliza con fines ornamentales, gastronómicos y agropecuarios (Rodríguez et al., 2021). La especie se distribuye principalmente en el centro de México en los estados de Guanajuato, Querétaro, Hidalgo, San Luis Potosí y Zacatecas (Lodé, 2014). Se encuentra en riesgo de desaparecer debido a la destrucción de su hábitat natural, ya que sus poblaciones se encuentran en deterioro por la colecta ilegal, el desarrollo urbano y la construcción de carreteras, entre otros factores (Pérez-Molphe-Balch et al., 2015; Villavicencio-Gutiérrez et al., 2023). Kroenleinia grusonii es un taxón endémico y debido a las adversidades que enfrenta, se encuentra enlistado en la NOM-059-SEMARNAT-2010 bajo la categoría en peligro de extinción (Semarnat, 2019). La UICN (Unión Internacional para Conservación de la Naturaleza) la cataloga como especie en peligro (Guadalupe-Martínez et al., 2013). En consecuencia, es necesario implementar estrategias que permitan la propagación de esta especie para su conservación y protección sin afectar a las poblaciones naturales.
La propagación de las cactáceas se realiza, principalmente, mediante semillas; sin embargo, es necesario buscar otras formas (Manzo et al., 2022), en particular, cuando las especies se encuentran bajo algún estatus de riesgo y no es posible obtener suficientes semillas para iniciar protocolos de propagación (Pérez-Molphe-Balch et al., 2015). Una alternativa es el uso de herramientas biotecnológicas, como el cultivo de tejidos vegetales. Con esta técnica es posible la propagación clonal manteniendo la estabilidad genética clonal y obtener un gran número de plantas con fines de conservación ex situ (Torres-Silva et al., 2021).
Esta herramienta ofrece obtener una rápida multiplicación vegetativa comparado con la propagación tradicional (Mabrouk et al., 2021). Con esta técnica biotecnológica se reduciría el impacto que se ha creado en las cactáceas debido a la sobrecolecta (López-Granero et al., 2021). La técnica se basa en la totipotencia celular que incluye la expresión total del genoma presente en la célula, que permite la multiplicación aumentando el número de individuos (Almeida et al., 2021). Esta cualidad se ve incrementada por la adición de reguladores de crecimiento en el medio de cultivo, especialmente las citoquininas y auxinas, que favorecen el desarrollo de nuevos brotes (Civatti et al., 2017). El potencial regenerativo de las plantas puede variar dependiendo de diversos factores, como el genotipo, el explante utilizado y los reguladores de crecimiento (Torres-Silva et al., 2018).
En cactáceas se ha realizado la propagación in vitro utilizando diferentes explantes como lo son plantas adultas de Opuntia ficus-indica (L.) Mil. (Khalafalla et al., 2007), activación de areolas en Turbinicarpus pseudomacrochele subsp. lausseri (Diers et G. Framk) Glass (de la Rosa-Carrillo et al., 2012), secciones transversales o longitudinales de plántulas de Melocactus glaucescens Buining et Brederoo (Torres-Silva et al., 2018) o brotes como en Echinocactus parryi Engelm. (García-González et al., 2020). Un paso fundamental en el proceso de propagación in vitro es la formación de raíces en los brotes obtenidos (Ivannikov et al., 2022). La inducción de raíces se logra con el uso de auxinas o en ocasiones, sin la necesidad de aplicarlas (Martínez et al., 2016). Por ejemplo, en la cactácea Cereus peruvianus (L.) Mill. los brotes regenerados obtuvieron 100% de enraizamiento en medio de cultivo MS (Murashige y Skoog, 1962) al 25% sin auxinas (Sawsan et al., 2004). Los brotes enraizados son transferidos a condiciones de invernadero, que es la última etapa de la propagación in vitro (Jagiello-Kubiec et al., 2021). El objetivo de la presente investigación fue evaluar diferentes concentraciones de 6-bencilaminopurina (BAP), sola o combinada con ácido indolacético (AIA) en la formación de nuevos brotes de K. grusonii; así como inducir en los brotes la formación de raíces y evaluar 2 sustratos para su adaptación a condiciones ex vitro.
Materiales y métodos
Para la inducción de brotes, se utilizaron plántulas de 90 días de cultivo in vitro de Kroenleinia grusonii como fuente de explantes, que se obtuvieron de experimentos de germinación in vitro de semillas (Osuna-Ávila et al., 2025). A las plántulas se les eliminó la raíz y se utilizaron los ápices completos, los cuales se colocaron en medio de cultivo MS a una concentración de 100% de macro y micronutrientes. El medio de cultivo se suplementó con 30g/L de sacarosa, 7 g/L de agar tipo 1 y el pH se ajustó a 5.7 ± 0.1. Posteriormente, se adicionaron diferentes concentraciones de BAP, AIA y AIA + BAP. Los tratamientos utilizados fueron 8 y consistieron en lo siguiente: control, BAP 1.0, 2.0 y 3.0 mg/L, combinada con o sin AIA. La unidad experimental fue un frasco de 100 ml conteniendo de 20-25 ml del medio de cultivo con 3 repeticiones, se colocaron 5 explantes en cada frasco con 15 explantes por tratamiento y un total de 120 unidades experimentales. Los explantes fueron subcultivados 2 veces en las mismas condiciones cada 60 días. El número total de brotes por cada explante fue registrado después de 120 días de cultivo in vitro.
Los brotes obtenidos de la propagación clonal fueron separados de los explantes utilizando pinzas y se colocaron en medio de cultivo MS al 100% adicionado con diferentes concentraciones de AIA. Los tratamientos fueron 4 y consistieron en lo siguiente: control, AIA 1.0, 2.0 y 3.0 mg/l. La unidad experimental fue el frasco de 100 ml conteniendo 20-25 ml de medio de cultivo con 8 repeticiones, se colocaron aleatoriamente 10 brotes en cada frasco para un total de 80 brotes en cada tratamiento y 320 unidades experimentales. El porcentaje de formación de raíces se evaluó después de 90 días de cultivo in vitro.
Para la adaptación de las nuevas plantas a condiciones ex vitro, se procedió a retirarlas del medio de cultivo utilizando los dedos para ablandar el agar y posteriormente enjuagando las raíces con agua de la llave. A los brotes que formaron raíces, se les midió la longitud de la raíz primaria utilizando un vernier digital y se contaron el número de raíces que se formaron en la base del brote. Se utilizaron 2 sustratos, el primero fue musgo de turba y el segundo fue una mezcla de musgo de turba y suelo natural regosol con textura franco arcillosa, pH de 8 y conductividad eléctrica de 0.45 dS m-1 (IUSS-WRB, 2015) (proporción 1:1). Cada sustrato fue colocado en una charola de 54 cm × 27 cm con 128 cavidades, en donde se colocaron los brotes que formaron raíces. Las plantas se regaron cada 24 h con agua de la llave a capacidad de campo, manteniendo humedad constante del sustrato. Después de 30 días en condiciones ex vitro se evaluó el porcentaje de sobrevivencia.
El análisis de datos fue realizado con el programa estadístico SPSS versión 24.0 (IBM. 2017). Se aplicó la prueba de Kruskal-Wallis no paramétrica para muestras independientes (prueba X²), ya que se trataba de variables discretas (número de brotes y raíces) y de una variable continua (longitud de raíz). La comparación múltiple de promedios se llevó a cabo con la prueba de Bonferroni con un nivel de significancia de 0.05 y los estadísticos descriptivos fueron obtenidos.
Resultados
El número de brotes por explante fue significativamente diferente entre los tratamientos aplicados (p < 0.05). Los mejores resultados de brotación fueron con BAP 3.0 mg/L (fig. 1A), seguido por BAP 1.0 mg/L + AIA 0.5 mg/L (fig. 1B) con un promedio de brotes de 5.13 por explante en cada uno después de 120 días de cultivo in vitro. Cuando el BAP 3.0 mg/L se combinó con AIA 0.5 mg/L, el número de brotes se redujo a 3.6 ± 0.914 (tabla 1). Los resultados no fueron significativos en el grupo control con un promedio de 0.07 ± 0.067 brotes por explante y el AIA 0.5 mg/L con 0.40 ± 0.400 brotes por explante. Los tratamientos de BAP 1.0 mg/L, BAP 2.0 mg/L, AIA 0.5 mg/l + BAP 2.0 mg/L y AIA 0.5 mg/L + BAP 3.0 mg/L, formaron brotes; sin embargo, no fueron significativos con promedios desde 2.8 hasta 3.6 brotes por explante (tabla 1). Los nuevos brotes obtenidos, presentaron diferentes tamaños desde 5 hasta 18 mm de diámetro (fig. 1C).
Tabla 1
Número de brotes obtenidos en la propagación clonal de Kroenleinia grusonii a los 120 días de cultivo in vitro (n = 15).
BAP mg/L
AIA mg/L
Número de brotes
0 (control)
0
0.07 ± 0.067 b
1.0
0
3.20 ± 0.890 ab
2.0
0
3.13 ± 2.109 ab
3.0
0
5.13 ± 0.9150 a
0
0.5
0.40 ± 0.400 b
1.0
0.5
5.13 ± 1.055 a
2.0
0.5
2.80 ± 1.010 ab
3.0
0.5
3.60 ± 0.914 ab
Medias ± el error estándar, letras iguales no son estadísticamente diferentes (n = 80).
Tabla 2
Porcentaje de enraizamiento de brotes, número de raíces por brote y longitud de la raíz principal a los 90 días de cultivo in vitro de Kroenleinia grusonii.
AIA mg/L
% de enraizamiento
Número de raíces
Longitud de raíces (mm)
Control
66 ± 0.05 b
3.21 ± 0.385 b
21.86 ± 1.764 a
1.0
77 ± 0.04 ab
2.89 ± 0.255 b
19.98 ± 1.631 a
2.0
89 ± 0.03 a
4.68 ± 0.407 a
22.36 ± 1.583 a
3.0
84 ±0.04 a
3.18 ± 0.293 b
22.24 ± 1.688 a
Medias ± el error estándar, letras iguales no son estadísticamente diferentes (n = 80).
La tabla 2 indica que hubo diferencias entre los tratamientos para el porcentaje de inducción de raíces en los brotes cultivados in vitro por 90 días. Para el porcentaje de enraizamiento, se observó que el adicionar AIA al medio de cultivo MS promueve significativamente la formación de raíces en los brotes. Particularmente, con el tratamiento de AIA 2.0 mg/L que resultó ser el mejor con 89 ± 0.03 % de enraizamiento, en comparación con el tratamiento control que mostró 66 ± 0.05 % de brotes enraizados (tabla 2). Por tales motivos, el aplicar AIA 2.0 mg/L resulta ser, aproximadamente, 20% más efectivo para la inducción de raíces que el resto de los tratamientos.
Figura 1. Brotes de 120 días de cultivo in vitro de Kroenleinia grusonii. A, Regeneración de brotes con el tratamiento de BAP 3.0 mgL; B, regeneración de brotes con el tratamiento de BAP 1.0 mg/L + AIA 0.5 mg/L; C, tamaño de los brotes obtenidos con los diferentes tratamientos de propagación. La barra = 5 mm.
El número de raíces por explante fue significativamente diferente entre tratamientos (p < 0.05). La comparación de promedios muestra que el AIA 2.0 mg/L presentó el mayor promedio de número de raíces con aproximadamente 5 (4.68 ± 0.407) en cada brote. Mientras que el AIA 1.0 mg/L, AIA 2.0 mg/L y el control desarrollaron, en promedio, menos de 3.2 raíces por explante (tabla 2; fig. 2).
Figura 2. Brotes enraizados de Kroenleinia grusonii, a los 90 días de cultivo in vitro. A, Tratamiento de control; B, brote con raíz del tratamiento AIA 1.0 mg/L; C, brote con raíz del tratamiento AIA 2.0 mg/L; D, brote con raíz del tratamiento AIA 3.0 mg/L. La barra = 5 mm.Figura 3. Plantas de Kroenleinia grusonii adaptadas a condiciones ex vitro después de 60 días. A, Sustrato de turba de musgo; B, sustrato de turba de musgo y suelo natural (1:1). La barra = 5 mm.
En relación con la variable largo de raíz, no se detectó efecto significativo (p = 0.604). El intervalo observado entre los tratamientos fue de 2.38 mm en promedio, es decir, la variable mostró poca variación. Sin embargo, por los resultados obtenidos con AIA 2.0 mg/L, se muestra un promedio ligeramente por arriba que el resto de los tratamientos con 22.36 ± 1.583 mm (tabla 2). Después de 60 días en condiciones ex vitro, el mejor sustrato para promover la aclimatización de las plantas fue el de suelo de turba y suelo natural (1:1). El porcentaje de sobrevivencia que presentó este sustrato fue de 68.75% después de 60 días. Mientras que el sustrato de suelo de turba mostró un porcentaje de sobrevivencia inferior, de 60.93% después de 60 días (fig. 3).
Discusión
La conservación ex situ de cactáceas a través de la propagación clonal es una alternativa viable para las especies que se encuentran en alguna situación de riesgo (Torres-Silva et al., 2021). Con el uso de citoquininas, en algunas cactáceas que no forman brotes laterales, se rompe la dominancia apical y se promueve la formación de nuevos brotes (Lema-Ruminska y Kulus, 2014). Particularmente, con los resultados observados, el uso de BAP 3.0 mg/l promovió la misma cantidad de brotes que la combinación de BAP 1.0 mg/l y AIA 0.5 mg/l, lo cual indica que para obtener resultados significativos no sería necesaria la adición de auxinas al medio de cultivo. Ramírez y Salazar (2016) reportan que la cinetina 10 mg/l es más eficiente en la formación de brotes en los explantes que al combinarla con auxina en Mammillaria petterssonii Hildm. y Coryphanta radians (D. C). Britton et Rose. El resultado es similar en Stenocereus stellatus al utilizar BAP 4.0 mg/L y obtener un promedio de 8 brotes por explante (Martínez et al., 2011). Por el contrario, existen especies que han sido propagadas y que para obtener mayor formación de brotes sí requieren una combinación de citoquinina y auxina. Por ejemplo, en M. geminispina Haw. con cinetina 10 mg/l + AIA 4.0 mg/l obtuvieron 6 brotes por explante (Ramírez y Salazar, 2016). Melocactus glaucescens Buining et Brederoo con BAP 4.0 mg/l + ácido 1-naftalenacético (ANA) 0.25 mg/l presentó 2.5 brotes por explante y sin ANA, un promedio de 0.6 (Torres-Silva et al., 2018). En Echinocactus parryi reportan que es más efectiva la combinación de BAP 2.0 mg/l + AIA 0.5 mg/l al regenerar 2.9 brotes por explante, a diferencia de los tratamientos sin AIA en los que el número de brotes no fue significativo (García-González et al., 2020).
Una consideración importante en Kroenleinia grusonii es que el número de brotes se redujo de 5.13 ± 0.9150 obtenidos con BAP 3 mg/l a 3.6 ± 0.914 al combinar el BAP 3.0 mg/l + AIA 0.5 mg/l. Resultados similares se reportaron para Coryphantha retusa (Pfeiff.) Birtton et Rose, ya que al aplicar BAP 2.0 mg/l el promedio de brotes fue de 8.8 por explante y al combinar BAP 2.0 mg/l + ANA 1.0 mg/l el número de brotes se redujo a 4.2 (Ruvalcaba-Ruíz et al., 2010). Lo mismo sucedió con Pachycereus pringlei (S. Watson) Britton et Rose, con BAP 2.0 mg/l el número de brotes fue de 3.8 ± 0.3 y se redujo a 0.6 ± 0.1 al combinarlo con ANA 0.5 mg/l (Pérez-Molphe-Balch et al., 2002). Los resultados que se obtengan en la propagación clonal dependen del genotipo y de los reguladores de crecimiento utilizados (Montiel-Frausto et al., 2016).
Es de gran importancia establecer un sistema de micropropagación específico para cada especie, no obstante, la respuesta a la formación de raíces y la aclimatización ex vitro puede variar debido a las condiciones de cultivo (Elias et al., 2015). Con los resultados obtenidos en K. grusonii, el tratamiento control mostró una respuesta favorable a la formación de raíces en los brotes. Sin embargo, al utilizar AIA 2.0 mg/l, se logra 30% más de enraizamiento, lo cual significa que se pueden obtener 70 plantas completas. El porcentaje de enraizamiento en K. grusonii se podría considerar alto con la aplicación de AIA debido a que se han reportado porcentajes inferiores de enraizamiento en diferentes especies de cactáceas. Algunos ejemplos son Cereus jamacaru DC. con 70% (Monostori et al., 2012) o Mammillaria vetula subsp. gracilis (Pfeiff.) D. R. Hunt con 20% de enraizamiento (López-Granero et al., 2021). El uso de auxinas como el ácido indolbutírico (AIB) 0.1 mg/l en Hylocereus monacanthus (Hort. ex Lem.) Britton et Rose donde el porcentaje fue mayor que en K. grusonii con 100% de enraizamiento (Montiel-Frausto et al., 2016). En contraste, para diferentes especies y con medios de cultivo sin auxinas, se ha logrado obtener hasta 95% de enraizamiento en C. retusa (Ruvalcaba-Ruíz et al., 2010), Micranthocereus flaviflorus Buining et Brederoo con 98% (Civatti et al., 2017), Mammillaria hernandezii Glass et R. A. Foster con 98.4% de enraizamiento y Mammillaria dixanthocentron Beckeb. ex Mottram con 94% (Lázaro-Castellanos et al., 2018) comparados con los reportados en la presente investigación para K. grusonii.
El uso de AIA 2.0 mg/l es la mejor opción para obtener el mayor número y longitud de raíces en K. grusonii. Resultados similares han sido reportados para H. monacanthus, donde el número de raíces obtenidas en los brotes presentó un promedio de 4.2 por planta, aunque la longitud de la raíz fue aproximadamente 6 veces menor a la de K. grusonii con 3.6 mm (Montiel-Frausto et al., 2016). También Turbinicarpus × mombergeri Říha presentó raíces de menor longitud que las de K. grusonii con 13 mm (Santos-Díaz et al., 2021). En cuanto al porcentaje de sobrevivencia de las plantas aclimatizadas, es importante resaltar que es necesario implementar métodos más eficientes para lograr aumentar el porcentaje de sobrevivencia de las plantas. Ejemplo de ello fue el trabajo realizado por Santos-Díaz et al. (2021), en donde la sobrevivencia de plantas de Turbinicarpus × mombergeri fue de 85% después de 1 año. Otro ejemplo sobresaliente fue lo mostrado por Cortés-Olmos et al. (2023), al reportar 100% de sobrevivencia en plantas de Gymnocalycium cv Fancy. De acuerdo con los resultados obtenidos y con base en literatura consultada, se infiere que las respuestas entre especies pueden llegar a ser muy diferentes, por lo cual se confirma que es necesario establecer protocolos específicos para cada especie y poder aprovechar al máximo el potencial regenerativo de cada una.
Se ha establecido un protocolo de la propagación clonal de Kroenleinia grusonii que inicia con la inducción de brotes, posteriormente el enraizamiento y finaliza con la aclimatización ex vitro. Con los resultados obtenidos en K. grusonii se logró la formación de hasta 5 brotes más con el uso de BAP 3.0 mg/l. Al inducir la formación de raíces en los brotes regenerados, es viable obtener aproximadamente 3 plantas nuevas por cada explante utilizado en la fase de inducción de brotes. Esta información representa un avance para continuar implementando técnicas de propagación in vitro en K. grusonii y que en futuras investigaciones se pueda promover un mayor número de plantas. Los resultados de este estudio, podrían contribuir a los programas de conservación ex situ e in situ de K. grusonii.
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